Welche Art ist dieser blau-weiße Vogel?

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Ich möchte wissen, was für eine Art dieser Vogel ist

Der Vogel auf dem Foto scheint eine weißgesichtige "Sorte" von Lovebird - Gattung Agapornis - zu sein, die hauptsächlich dadurch identifiziert wird, dass Schnabel und Nasenlöcher nicht sichtbar sind (Gehirnhaut und Nasenlöcher nicht sichtbar). Die genaue Art ist aufgrund der einfachen Hybridisierung zwischen den Arten und der Verfügbarkeit vieler Farbvarietäten ungewiss. Die untenstehenden Links können Ihnen weiterhelfen.

https://en.wikipedia.org/wiki/Lovebird#Species

https://www.agapornidenclub.be/eng/?page_id=2

Schutz unserer nistenden Nachbarn

Am Smithsonian Conservation Biology Institute (SCBI) in Front Royal, Virginia, sind die Frühlings- und Sommermonate ein Chor von Singvogelrufen und -liedern. Das laute „Pipi-a-weeee!“ des östlichen Waldpewee und der krächzende Ruf des Gelbschnabelkuckucks ertönen über das Gelände. Einige Vögel leben hier das ganze Jahr über, während andere Tausende von Kilometern von ihren wärmeren Winterlebensräumen entfernt sind, um zu brüten. Im Laufe des Sommers werden sie Partner finden, um Grundstücke konkurrieren, Nester bauen, Eier ausbrüten und Küken pflegen.

Zu Beginn der Brutsaison bereiten unsere Mitarbeiter der Abteilung für Tierprogramme Nistkästen für Höhlenbrüter vor – Vögel, die in geschützten Löchern nisten. Einige kleinere Höhlenbrüter, darunter Drosseln und Baumschwalben, können keine eigenen Löcher schaffen. Stattdessen nisten sie in Räumen, die sie finden, wie Löcher in toten Bäumen oder denen, die von Spechten gebaut wurden. Aber mit zunehmender Erschließung des Landes verschwinden diese natürlichen Nisthöhlen. Einheimische Vögel sind auch der Konkurrenz durch invasive Arten wie Haussperlinge und europäische Stare ausgesetzt. Infolgedessen gehen viele höhlenbrütende Vogelpopulationen zurück. Die Forschung legt nahe, dass das Aufstellen künstlicher Nistkästen in Gebieten mit gutem Lebensraum dazu beitragen kann, dass sich Drosseln und andere Arten wieder erholen.

Ein künstlicher Nistkasten am Smithsonian Conservation Biology Institute. Ein an der Stange angebrachter Raubtierschutz aus Netzgewebe schützt die Bewohner der Box vor Schlangen, Waschbären und anderen Raubtieren.

Im Februar und März haben wir neue Nistkästen installiert, Raubtierschutze repariert und vorhandene Nistkästen gereinigt und repariert, um sie für Vögel vorzubereiten. Die Boxen sind über den 3.200 Hektar großen Campus des SCBI in verschiedenen Lebensräumen verteilt, in denen Vögel nisten könnten: entlang ländlicher Straßenränder, auf Weiden und sogar auf unserem zentralen Campus näher an den Menschen.

Der Biologe Eugene Morton begann kurz nach dem Erwerb dieses Landes durch die Smithsonian im Jahr 1975 mit der Installation von Nistkästen. Er wollte mehr über das Verhalten der einheimischen Vögel, die Fortpflanzung und die Populationstrends erfahren. Seitdem sind unsere Nistkastenwege auf 70 Kästen angewachsen, Tendenz steigend!

Nistkästen können verschiedene Singvögel anlocken, darunter Meisen, Büschelmeise, Zaunkönig und Schwalben. Eine der häufigsten und bekanntesten Arten in dieser Gegend ist die östliche Drossel (Sialia sialis). Bluebirds sind das ganze Jahr über in einem Großteil ihres Verbreitungsgebietes zu finden, aber sie gelten als Teilmigranten, da einige Populationen für den Winter von Kanada und den nördlichen USA nach Süden fliegen.

Eine der häufigsten und bekanntesten Arten in dieser Gegend ist die östliche Drossel (Sialia sialis). Dieses Weibchen brütet ihre Eier in einem Nistkasten am SCBI aus.

Wenn Sie im Osten Nordamerikas leben, haben Sie wahrscheinlich eine östliche Drossel gesehen! Männchen und Weibchen haben beide einen blauen Kopf, Rücken und Flügel mit einer orangefarbenen Brust, obwohl die Weibchen eine etwas dunklere Farbe haben. Sie sitzen oft auf Telefonkabeln, Zaunpfählen und Nistkästen. Im Gegensatz zu Drosseln, Baumschwalben (Tachycineta zweifarbig) weite Strecken wandern. Sie überwintern im Süden der USA, in Mexiko und im nördlichen Mittelamerika und brüten im gesamten mittleren und nördlichen Nordamerika. Nistkästen haben dazu beigetragen, ihr großes Brutgebiet bis nach Nordgeorgien zu erweitern.

Biologen lösen das Geheimnis der blaugrünen Vogeleier

Blaugrüne Eier der Ostdrossel (Sialia sialis). Bildnachweis: Eastern Kentucky University.

Die Autoren testeten die Hypothese, dass die Pigmentierung einem Ei helfen könnte, ein Gleichgewicht zwischen zwei gegensätzlichen und potenziell schädlichen Wirkungen der Sonne herzustellen: Lichtübertragung in helle Eier und Aufheizen von dunklen Eiern.

„Wir testen vier Komponenten dieser Hypothese quantitativ“, schrieben sie in einem Papier, das in der Mai-Ausgabe von . veröffentlicht wurde Der amerikanische Naturforscher, „auf verschiedenfarbigen Eiern des Dorfwebers (Ploceus cucullatus) in einer kontrollierten Lichtumgebung:

(i) schädliche ultraviolette (UV) Strahlung kann durch Vogeleierschalen übertragen werden

(ii) Infrarotstrahlung (IR) mit natürlicher Intensität kann das Innere von Eiern erhitzen

(iii) eine intensivere Eifärbung verringert die Lichtdurchlässigkeit (Pigment als Sonnenschirm)

(iv) eine intensivere Eifärbung erhöht die Lichtabsorption durch die Eierschale und erwärmt das Eiinnere (dunkler Autoeffekt).“

Wie vorhergesagt, schirmten intensiver blaue Eierschalen den Innenraum vor Licht, einschließlich gefährlicher UV-Strahlung, ab.

Aber eine intensivere Farbe führte auch dazu, dass Eier mehr Licht absorbieren und sich erhitzen, was in helleren Umgebungen noch gefährlicher sein kann.

Diese Muster, kombiniert mit dem Wissen über das Nistverhalten und die Lebensräume von Vögeln, können zu Vorhersagen führen, warum die Eier einiger Vögel zwischen den Arten von blau bis weiß variieren.

Dunklere Eier werden bei mäßigem Licht vorhergesagt, um den Embryo zu schützen, aber in helleren Nestern sagen die Gefahren der Eiererwärmung hellere Eier voraus.

Während die Tarnung vor Raubtieren wahrscheinlich immer noch der wichtigste Faktor für die Entwicklung von matten und fleckigen Eierfarben ist, weisen die biophysikalischen Beweise für die helleren Farben auf die Sonne hin.

David C. Lahti und Daniel R. Ardia. 2016. Vogelei-Farbe beleuchten: Pigment als Sonnenschirm und der Dark-Car-Effekt. Der amerikanische Naturforscher 187 (5): 547-563 doi: 10.1086/685780

"Ich wünsche Ihnen Bluebirds"

Bluebirds sind schillernde Kreaturen. Diese Website wurde als Ressource für Menschen entwickelt, die daran interessiert sind, Drosseln und anderen einheimischen Höhlenbrütern zu helfen, zu überleben und zu gedeihen. Eine alphabetische Liste der behandelten Themen finden Sie in der Site Map (Index) oder im Pulldown-Menü (Sprung).


Eine Ostdrossel, die ihre Eier ausbrütet. Foto von Bet Zimmermann. Siehe größere Version.

Hinweis: Diese Website ist nach dem Eastern Bluebird benannt, Sialia sialis, ausgesprochen cee-AL-ee-a cee-AL-iss.)

Allgemeine Informationen: Grundlegende Informationen darüber, wie man nistende Drosseln anlockt, einschließlich der Verhaltensregeln und eines Nistplans. Ein guter Ausgangspunkt für Anfänger.
Ein vierseitiges Handout zum Verteilen mit Nistkästen
Wie und warum überwacht werden, um Drosseln anzuziehen (bewährt und experimentell.) Vogelbäder.
Häufige Mythen über Bluebirding (Biologie) - Links zu Plänen für Boxen, die Sie selbst erstellen können - Vor- und Nachteile (in Arbeit) (Größe, Eingangsloch, Höhe) für verschiedene Höhlenbrüter, nach Höhlenbrüterarten, mit Links zu Brutvogel Vermessungskarten - wie Sie beginnen
Reichweiten: Karten, die den Winter- und Sommerbereich von Eastern Bluebird zeigen. Auch Links zu Brutvogelübersichtskarten für alle anderen Nester mit kleinen Höhlen
Meine Theorien, warum wir von Bluebirds so fasziniert sind. ein Nest bauen und Eier legen (involvierte Faktoren und Zeitpläne) auf Höhlenbrüter, allgemeiner Ausweis, für Kinder, Zeitschriften mit Rezensionen (gut für Newsletter usw.) - die Kehrseite, die man normalerweise auf die harte Tour lernt - gebräuchliche Namen, wissenschaftliche Namen, Unterarten, Artenunterscheidung, Staatsvogelbezeichnungen, Bluebird-Stempel
Ein Glossar mit den wichtigsten Terminologien der Bluebirding und ornithologischen Definitionen im Zusammenhang mit Bluebirds und anderen höhlenbrütenden Vögeln

Ehemalige wissenschaftliche und gebräuchliche Namen. (USA, Kanada, Bermuda). mit Bluebirds verwandt. Songtext zu "I Wish You Love." , einer Geschichte der amerikanischen Ureinwohner
Hommage an Bluebirders: Dave Ahlgren | Jack Finch | Joe Huber | David Magness

Wie man Haussperlinge daran hindert, die Eier von Bluebirds zu zerstören, Nestlinge zu töten und Eltern auszubrüten
Managementmethoden, einschließlich Anweisungen für Spatzen-Spooker, um von Feedern abzuschrecken
Berichte über Angriffe (Warnung: Grafikfotos), Anleitung
Geschichte der Haussperlinge, die KEINE Haussperlinge sind (Fotos und Beschreibung) (Nistverhalten, Timing etc.)
Wie man gefangene Vögel einschlägt
Herunterladbares Handout für Menschen mit Nistkästen, die als Brutstätte für Haussperlinge dienen von Paula Ziebarth.
Ein Essay: Sind HOSP böse? und Lochgrößentests: Fotos von kommerziellen Betrieben mit HOSP-Zucht und/oder Fütterung in ihren Einrichtungen. über die Übernahme eines Nistkastens durch HOSP.
Warum vernichten Hauszaunkönige Haussperlinge nicht? Siehe auch Konkurrenz zwischen den Arten

(nach Art - Bodengröße, Tiefe, Lochgröße, Montagehöhe) (verschieden) (bevorzugter Lebensraum für verschiedene Arten) (für Drosseln und Schwalben) (was sie sind, wie man sie bekommt oder herstellt) und Lochgrößentests (zu Verhindern Sie Raubtiere, indem Sie auf Raubtiere wie Schlangen, Waschbären und Katzen klettern) - siehe auch Conical Baffle (Probleme)

Ausweiskarte mit Hinweisen zu Nest-Inhalten | Eifarbe, Form usw.
Vergleich von Eiergrößen (Tabelle) und Fotos (Fotos) - Teil 1 | Teil 2 Mystery Nester: Testen Sie Ihre ID-Kenntnisse #1, #2, #3#4 #5 #6#7#8#9, um ein Nest zu bauen und Eier zu legen (involvierte Faktoren und Zeitpläne.) - Foto des sezierten HOSP

Bewick's Wren Biologie, Fotos - Biologie, Fotos
Drosseln - Ost | Berg | Western
Carolina Chickadee - Fotos
Carolina Wren - Biologie | Fotos (Cousins von HOSP, nur in MO und IL) - Biologie, Fotos (Great Crested und Ash-Throated). Biologie, ATFL-Fotos, GCFL-Fotos
Flughörnchen - Biologie, Fotos
Hausfink - Biologie | Fotos
Haussperlinge - Biologie, Fotos, Controlling
Hauszaunkönig - Biologie, Fotos, Abschreckung, eine andere Perspektive
Wacholdermeise - Biologie, Fotos - Biologie
Bergdrosseln - Fotos | Biologie
Bergmeise - Biologie, Fotos - Biologie | Fotos von Nestern, Eiern und Jungen
Eichhörnchen, Eichhörnchen Biologie (Europäisch), Biologie, Fotos
Büschelmeise: Biologie, Fotos : Biologie, Fotos, Bild von 2 Nestlingen unterschiedlicher Größe in einem Nest. Baum-Schwalbe-Erwachsenenfotos. Siehe auch Paarung von Nestboxen und Kinney (vier Löcher) TRES Boxdesign. Platzierung des Gitternistkastens. . Interessanter Videoclip mit einer zischenden Meise.
Violettgrüne Schwalben - Biologie | Fotos
Western Bluebirds - Fotos | Biologie - Biologie, Fotos

Cavity Nester Fotoserie (Nester, Eier und Junge) - siehe Liste der anderen Cavity Nester oben
- Siehe auch Eiervergleich.
Baffles und Predator Guards - Wobbling Stovepipe/Kingston, Conical, Noel, Hutchings (Nistkästen und Nestlinge) (Erwachsene oder Nestlinge) in Box
Dummy- oder verlassene Nester und Lochgrößentests: ID, das Problem, aktive und passive Managementoptionen. Siehe auch HOWR Biology, Video of Egg Attack, and Another Perspective. (um das Ausfliegen zu ermöglichen)
(Vorbeugung, Symptome usw.) (bei hoher Baumschwalbenpopulation) während der Überwachung - Vorbeugung

Layout und Ergebnisse für den Chimalis Bluebird Trail l auf einer geschlossenen CT-Deponie
Ein neuer experimenteller "Hill Trail" wurde 2007 gestartet
Ein vierter Trail im Roseland Park wurde 2008 "adoptiert". Ein Golfplatz-Trail auf der anderen Straßenseite wird nur einmal im Jahr kontrolliert.
Trail-Logs zeigen Box-by-Box-Ergebnisse und Trail-Berichte fassen Ergebnisse und gewonnene Erkenntnisse zusammen. Es gibt auch Infos über mich und warum ich Bluebirder bin
2004: Trail-Zusammenfassungsbericht. Chimalis Trail-Protokoll.
2005: Trail-Zusammenfassungsbericht. Chimalis Trail-Protokoll. Deponie Trail Log.
2006: Trail-Zusammenfassungsbericht. Chimalis Trail-Protokoll. Deponie Trail Log. Neuer Hügelweg.
2007: Chimalis Trail Log. Hill Trail Log, Fotos vom Hill Trail, Deponie Trail Log
2008: Trail-Zusammenfassungsbericht. Chimalis Trail-Protokoll. Hill Trail-Protokoll. Deponie Trail Log. Roseland Trail-Protokoll. Taylor Brooke
2009: Roseland Trail Log | Golfplatz Trail Log
2010: Roseland Park | Der Hügel | Hauptweg | Deponie | Taylor Brooke | Taylors Ecke

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Foto in der Kopfzeile von Wendell Long.
© Originalfotos sind urheberrechtlich geschützt und dürfen ohne ausdrückliche Genehmigung des Fotografen nicht verwendet werden. Bitte respektieren Sie deren Urheberrechtsschutz.
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Zuletzt aktualisiert am 8. Januar 2021 . Design von Chimalis.

Welche Art ist dieser blau-weiße Vogel? - Biologie

THRAUPIDAE - die Tanager-Familie

Die Thraupidae sind eine Familie von Singvögeln, die in Amerika vorkommt. Ungefähr 60 % der Tangaren leben in Südamerika und 30 % dieser Arten leben in den Anden. Die meisten Arten sind in einem relativ kleinen Gebiet endemisch. Neben "tanagers" sind Dacnis, Finken, Flowerpiercer, Honeycreeper, Seedeater und viele andere unterschiedlich benannte Arten enthalten Thraupidae. Die Tangara-Gattung umfasst einige der spektakulärsten gefärbten Vögel der Welt.

Tangaren sind Allesfresser und ihre Ernährung variiert von Gattung zu Gattung. Sie wurden beim Essen von Früchten, Samen, Nektar, Blütenteilen und Insekten beobachtet. Viele pflücken Insekten von Ästen. Andere Arten suchen auf den Blattunterseiten nach Insekten. Wieder andere warten auf Ästen, bis sie ein fliegendes Insekt sehen und in der Luft fangen.

Einige Vögel, die Tanager genannt werden, gehören tatsächlich zur Familie der Kardinäle Kardinalidae.

Tanager,_Blue-winged Mountain- Anisognathus somptuosus Gefunden: nördliches Südamerika

Bild von: 1) Tad Boniecki - Ecuador 2) Will George 3) Dick Daniels - National Aviary

Tanager,_Schwarz-und-Gold Bangsia melanochlamys Gefunden: nördliche Anden Kolumbiens

Tanager,_Blau-und-Gold Bangsia arcaei Gefunden: Costa Rica, Panama

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Arco_Huang in Costa Rica 2) Michael_Woodruff

Tanager,_Golden-chested Bangsia rothschildi Gefunden: Kolumbien, Ecuador

Bild von: 1) Nick_Athanas - Ecuador 2) _Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Luke_Seitz in Ecuador

Tanager,_Goldringed Bangsia aureocincta Gefunden: Kolumbien

Tanager,_Moss-backed Bangsia Edwardsi Gefunden: Kolumbien, Ecuador

Gattung Kalochäten - 1 Spezies

Tanager,_Vermilion Calochaetes coccineus Gefunden: Kolumbien, Ecuador, Peru

Tanager,_Eastern_Chat Calyptophilus frugivorus Gefunden: Hispaniola

Bild von: 1) Miguel_Landestoy

Tanager,_Western_Chat Calyptophilus tertius Gefunden: Hispaniola

Tanager,_Glistening-green Chlorochrysa phoenicotis Gefunden: Pazifikhänge von Kolumbien und Nordwest-Ecuador

Bild von: 1) Francesco_Veronesi - Kolumbien 2) Nick Athanas - Ecuador

Tanager,_Orange-ohrig Chlorochrysa calliparaea Gefunden: Bolivien, Kolumbien, Ecuador, Peru, Venezuela

Gattung Chlorornis - 1 Spezies

Tanager,_Grass-grün Chlorornis riefferii Gefunden: Anden von Kolumbien, Ecuador, Bolivien, Peru

Bild von: 1) Nick_Athanas - Ecuador 2) Michael_Woodruff - Ecuador

Tanager,_Schwarz-und-Gelb Chrysothlypis chrysomelas Gefunden: Costa Rica, Panama

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Lauren_Harter 2) Don_Faulkner Tom_Benson - Costa Rica
1) weiblich 2, 3) männlich

Tanager,_Scharlachrot-weiß Chrysothlypis salmoni Gefunden: Kolumbien, Ecuador

Bild von: 1, 2) Nick Athanas - Ecuador 3) Andres_Cuervo
1) weiblich 2, 3) männlich

Gattung Cissopis - 1 Spezies

Tanager,_Magpie Cissopis Leverianus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Francesco_Veronesi - Peru 2) Claudio_Timm - Brasilien 3) Nick_Athanas - Brasilien

Gattung Knemoskop - 1 Spezies

Tanager,_Gray-hooded Bush- Cnemoscopus rubrirostris Gefunden: Südamerika

Gattung Kompsothraupis - 1 Spezies

Tanager,_Scarlet-throated Compsothraupis loricata Gefunden: Nordosten Brasiliens

Tanager,_Schwarz-Weiß Conothraupis speculigera Gefunden: Bolivien, Brasilien (Bundesstaat Acre), Ecuador, Peru

Bild von: 1) Joe_Tobias 2) Nick_Athanas - Ecuador
1) Jugendlicher Rüde 2) Rüde

Tanager,_Cone-billed Conothraupis mesoleuca Gefunden: Brasilien

Gattung Creurgops
Dies sind schwere Tangaren der südamerikanischen Anden.

Tanager,_Rufous-crested Creurgops Verticalis Gefunden: Anden in Kolumbien, Ecuador, Peru, Venezuela

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online -Fabrice Schmitt in Peru, Roger_Ahlman in Ecuador

Tanager,_Slaty Creurgops dentatus Gefunden: Bolivien, Peru

Bild von: 1) Tony_Castro - Peru
1) weiblich 2) männlich

Gattung Cyanikterus - 1 Spezies

Tanager,_Blue-backed Cyanicterus cyanicterus Gefunden: hauptsächlich Nordost-Brasilien auch Südost-Venezuela

Gattung Cypsnagra - 1 Spezies

Tanager,_White-rumped Cypsnagra Hirundinacea Gefunden: hauptsächlich in Brasilien

Finch, große Pampa- Embernagra Platensis Gefunden: Südamerika

Gattung Eucometis - 1 Spezies

Tanager,_Gray-headed Eucometis penicillata Gefunden: Mexiko, Mittelamerika, nördliches Südamerika

Tanager,_Guira Hemithraupis guira Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Luke_Seitz in Ecuador 2) Dario Sanches - Brasilien 3) Nick Athanas - Ecuador
1) weiblich 2. 3) männlich

Tanager,_Rufous-köpfig Hemithraupis ruficapilla Gefunden: Brasilien
Bild von: 1) Cláudio Timm - Rio Grande do Sul, Brasilien 2) Gustavo Magnago
1) weiblich 2) männlich

Tanager,_Gelbrücken Hemithraupis flavicollis Gefunden: äußerster Osten Panamas, nördliches Südamerika

Bild von: 1) Hector_Bottai - Brasilien 2) Nick Athanas - Brazi 3) Claudio Timm

Gattung Heterospingus
Gefunden: Südamerika

Tanager,_Scarlet-browed Heterospingus xanthopygius Gefunden: Kolumbien, Ecuador

Bild von: 1, 2) Ron_Knight - Columbia 3) Nick Athanas - Columbia
1) Paar 2, 3) Männlich

Tanager,_Schwefel-rumped Heterospingus rubrifrons Gefunden: Costa Rica, Panama

Bild von: 1) HarmonyonPlanetEarth 2) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - David_McDonald in Panama

Gattung Iridosornis
Gefunden: Südamerika
Alle iridosonis haben blaue Oberteile und etwas leuchtendes Gelb/Gold auf dem Kopf.

Tanager,_Goldener Kragen Iridosornis jelskii Gefunden: Bolivien, Peru

Tanager,_Golden-gekrönt Iridosornis rufivertex Gefunden: Kolumbien, Ecuador, Peru

Bild von: 1) Nick Athanas - Ecuador 2) Michael_Woodruff - Ecuador

Tanager,_Purple-Mantled Iridosornis porphyrocephalus Gefunden: Kolumbien, Ecuador

Bild von: 1) Nick Athanas - Ecuador 2, 3) Francesco_Veronesi - Kolumbien

Tanager,_Gelb-Schal Iridosornis reinhardti Gefunden: Peru

Tanager,_Gelbkehlig Iridosornis analis Gefunden: Kolumbien, Ecuador, Peru

Bild von: 1) David_Cook - Peru 2) Christopher_Canaday - Ecuador 3) Francisco_Enríquez - Ecuador

Gattung Lamprospiza - 1 Spezies

Tanager,_Red-billed_Pied Lamprospiza melanoleuca Gefunden: hauptsächlich Brasilien auch Bolivien, Französisch-Guayana, Guyana, Peru, Suriname

Tanager,_Dusky-faced Mitrospingus cassinii Gefunden: Costa Rica, Panama, Kolumbien, Ecuador, Venezuela

Tanager,_Olive-backed Mitrospingus oleagineus Gefunden: Brasilien, Guyana, Venezuela
Bild von: 1) Brendan_Ryan - Venezuela

Tanager,_Cherry-throated Nemosia rourei Gefunden: Brasilien

Tanager,_Hooded Nemosia Pileata Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 3) Cláudio Timm - Grenze des Paraná-Flusses, Argentinien 2) gjofili 4) Nick_Athanas - Brasilien
1) weiblich 2, 3, 4) männlich

Gattung Neothraupis - 1 Spezies

Tanager,_White-banded Auch Würger-ähnlicher Tanager Neothraupis fasciata Gefunden: zentrales Südamerika - hauptsächlich Brasilien

Bild von: 1) Nick_Athanas - Brasilien 2) Carlos_Henrique 3) Hector_Bottai - Brasilien

Gattung Nesospingus - 1 Spezies

Tanager_Puerto_Rican Nesospingus speculiferus Gefunden: Puerto Rico

Gattung Orchester - 1 Spezies

Tanager,_Brown Orchesticus abeille Gefunden: Südostbrasilien

Bild von: 1) Francesco_Veronesi 2) Nick_Athanas 3) Brendan_Ryan

Gattung Orthogonien - 1 Spezies

Tanager,_Olivgrün Orthogonys chloricterus Gefunden: Brasilien

Gattung Parkerthraustes - 1 Spezies

Kernbeißer,_Yellow-shouldered Parkerthraustes humeralis Gefunden: Bolivien, Brasilien, Kolumbien, Ecuador, Peru

Bild von: 1) Tony_Castro - Ecuador 2) Nick Athanas - Ecuador

Gattung Paroaria
Diese Mitglieder der Familie Thraupidae werden Kardinäle genannt und haben eine schwarze Oberseite, eine weiße Unterseite und einige rote am Kopf.

Kardinal,_Crimson-fronted Paroaria bäric Gefunden: Brasilien

Kardinal,_Masked Paroaria nigrogenis Gefunden: Nordost-Kolumbien, Trinidad, Nord-Venezuela

Kardinal,_Rotkappen Paroaria gularis Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 3) Dick Daniels – der Zoo von North Carolina 2) Sandy Cole – der Zoo von North Carolina 4) Dick – der Zoo von San Diego

Tanager,_Rothauben Paroaria dominicana Gefunden: Ostbrasilien

Kardinal,_Rothauben Auch Brasilianischer Kardinal Paroaria coronata Gefunden: Nordamerika (Flüchtling), Südamerika, Hawaii

Bild von: 1, 2, 3, 4) Dick Daniels - Hawaii 5) Cristiano Crolle - Esteros del Iberà, Argentinien

Cardinal,_Yellow-billed Paroaria capitata Gefunden: Südamerika, Hawaii

Bild von: 1) Dick Daniels - Hawaii 2) Gustavo_Duran - Argentinien 3) Cristiano Crolle - Argentinien 4) Nick_Athanas - Brasilien 5) Charles_J_Sharp - Brasilien

Gattung Phaenicophilus

Tanager,_Black-crowned_Palm Phaenicophilus palmarum Gefunden: Hispaniola und nahe gelegene Inseln.

Tanager,_Gray-crowned_Palm Phaenicophilus poliocephalus Gefunden: Haiti

Tanager,_Blau-und-Gelb Pipraeidea bonariensis Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 2, 4) Cláudio Timm - Rio Grande do Sul, Brasilien 3, 5) Dario Sanches - Brasilien
1) weiblich 2) jugendlich männlich 3, 4, 5) männlich

Tanager,_Fawn-breasted Pipraeidea melanonota Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Nicolas_LeJeune 2, 3) Dario Sanches – Brasilien 4) Nick Athanas – Argentinien
1) weiblich 2, 3, 4) männlich

Gattung Ramphozelus
Gefunden: Mittelamerika und Südamerika
Die Ramphcoelus-Tanager haben silbrige Rechnungen. Die Männchen sind hauptsächlich schwarz-rot.

Tanager,_Schwarzbauch Ramphocelus melanogaster Gefunden: Peru

Tanager,_Brasilianer Ramphocelus bresilius Gefunden: Brasilien

Bild von: 1, 4, 6) Dario Sanches - Brasilien 2, 5) Cláudio Timm 3) Nick_Athanas
1, 2, 3) weiblich 4) Jugendlicher männlich 5, 6) männlich

Tanager,_Cherrie's Ramphocelus costaricensis Gefunden: Costa Rica, Panama

Bild von: 1) Nomdeploom - Costa Rica 2, 4) Francesco_Veronesi - Costa Rica 3) Becky_Matsubara - Costa Rica 5) Bryan Guarente - Costa Rica
1 - 3) weiblich 4, 5) männlich

Tanager,_Crimson-backed Ramphocelus dimidiatus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Francesco Veronesi - El Valle, Panama 2) barloventomagico 3) Dominic Sherony - Fuerte Claiton, Panama 4. 5) Nick_Athanas - Panama

Tanager,_Crimson-collared Ramphocelus sanguinolentus Gefunden: Mexiko, Mittelamerika

und Bild von: 1) Nick_Athanas - Costa Rica 2) Jerry_Oldenettel - Costa Rica 3) John_Norton - Belize 4) Andy_Morffew - Costa Rica

Tanager,_Flame-rumped Ramphocelus flammigerus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Julian Londono 2) Alejandro_Tamayo 4) Dominic Sherony 3, 5) Nick_Athanas - Ecuador
1, 2, 3) weiblich 4, 5) männlich

Tanager,_Masked_Crimson Ramphocelus nigrogularis Gefunden: Bolivien, Brasilien, Kolumbien, Ecuador, Peru

Tanager,_Passerini's Auch Scharlachroter Tanager Ramphocelus passerinii Gefunden: Mittelamerika

Bild von: 1, 4) Dominic Sherony 2, 3) Jerry Oldenettel - Selva Verde Lodge, Costa Rica 3, 6) Nick_Athanas - Costa Rica
1, 2, 3) weiblich 4, 5, 6) männlich

Tanager,_Silberschnabel Ramphocelus carbo Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Cláudio Timm – Amazonas, Brasilien 2) Dominic Sherony 3) Nick_Athanas – Ecuador 4) Dick Daniels – Woodland Park Zoo, Seattle 5) Dario Sanches – Brasilien 6, 7) Dick – Ecuador
1, 2, 3) weiblich 3 - 7) männlich

Kernbeißer,_Schwarzkehlchen Saltator fuliginosus Gefunden: Argentinien, Brasilien, Paraguay

Kernbeißer, schieferfarben Saltator grossus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 5) Nick Athanas - Ecuador 2) Dominic Sherony 3) José Loaizam - Ecuador 4) Jerry Oldenettel - Flores, Costa Rica
1, 2, 3) weiblich 4, 5) männlich

Saltator,_Black-Cowled Saltator nigriceps Gefunden: Ecuador, Peru

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Jorge_Eduardo_Zarate_Cueva in Ecuador 2) Nick_Athanas

Saltator,_Schwarzköpfig Saltator atriceps Gefunden: Mittelamerika

Bild von: 1) Steve Garvie - in der Nähe von Arenal, Costa Rica 2) Dominic Sherony 3, 4, 5) Dick Daniels - Boquette, Panama

Saltator,_Schwarzkehlchen Saltator atricollis Auch Saltatricula atricollis Gefunden: hauptsächlich Brasilien auch Bolivien, Paraguay

Bild von: 1, 2) Bernard_Dupont – Brasilien 3) Hector_Bottai 4) Nick Athanas – Brasilien

Saltator,_Schwarzflügel Saltator atripennis Gefunden: Kolumbien, Ecuador

Bild von: 1) Julian_Londono - Kolumbien 2) Francesco_Veronesi - Ecuador 3, 4) Nick Athanas -Ecuador

Saltator,_Buff-throated Saltator maximus Gefunden: Südost-Mexiko bis West-Ecuador und Nordost-Brasilien

Bild von: 1) Jerry_Oldenettel - Costa Rica 2) Kathy_and_Sam - Costa Rica 3, 4) Nick Athanas - Ecuador, Costa Rica

Saltator,_Golden-billed Saltator aurantiirostris Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 2) Cláudio Timm – Rio Grande do Sul, Brasilien 3) Lip Kee – Argentinien 4) Cristiano Crolle – El Palmar, Argentinien 5) Amy McAndrews – Peru 6) Nick Athanas – Argentinien
1, 2) weiblich 3, 4, 5, 6) männlich

Saltator,_Grayish Saltator Coerulescens Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 2) Cláudio Timm - Grenze des Paraná-Flusses, Argentinien 3, 4) Nick Athanas - Argentinien

Saltator,_Grünflügel Saltator-Similis Gefunden: Südamerika

Saltator,_Lesser_Antillean Saltator Albicollis Gefunden: Kleine Antillen

Saltator,_Masked Saltator cinctus Gefunden: Kolumbien, Ecuador, Peru

Saltator,_Orinoco Saltator-Orenozensis Gefunden: Venezuela

Saltator,_Rufous-bellied Saltator rufiventris Gefunden: Südbrasilien extremer Norden Argentiniens

Bild von: 1) Orbigny 2) Ron_Knight - Argentinien

Saltator,_Streaked Saltator striatipektus Gefunden: Kolumbien, Costa Rica, Ecuador, Guadeloupe, Panama, Peru, Venezuela

Bild von: 1) Julian_Londono - Kolumbien 2) Andres_Hernandez - Panama

Saltator,_Dickschnabel Saltator maxillosus Gefunden: Südostbrasilien, Paraguay

Tanager,_Schwarzgesichtig Schistochlamys melanopis Gefunden: Südamerika

Tanager,_Zimt Schistochlamys ruficapillus Gefunden: Argentinien, Brasilien, Paraguay

Gattung Serikossyphen - 1 Spezies

Tanager,_White-capped Sericossypha albocristata Gefunden: Kolumbien, Venezuela, Ecuador, Peru

Bild von: 1) Dave_Curtis - Columbia 2) Nick_Athanas 3) Francesco_Veronesi - Columbai
1) weiblich 2, 3) männlich

Gattung Stephanophorus - 1 Spezies

Tanager,_Diademed Stephanophorus diadematus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Andrebaptista - Südostbrasilien 2, 3) Cláudio Timm - Rio Grande do Sul, Brasilien 4) Nick_Athanas - Brasilien

Tanager,_Flame-crested Tachyphonus cristatus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1) Hector_Bottai - Brasilien 2) Nick_Athanas - Brasilien 3) Dario_Sanches - Brasilien
1) weiblich 2, 3) männlich

Tanager,_Fulvous-crested Tachyphonus surinamus Gefunden: nördliches Südamerika

Bild von: 1) Neotropical_Birds_Online - Maxime Dechelle 2) Nick_Athanas - Columbia
1) weiblich 2) männlich

Tanager,_Rotschultert Tachyphonus phoenicius Gefunden: nördliches Südamerika

Bild von: 1, 2) Barloventomagico 3) Fernando Flores
1) weiblich 2, 3) männlich

Tanager,_Ruby-gekrönt Tachyphonus coronatus Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 6) Cláudio Timm - Rio Grande do Sul, Brasilien 2, 3, 4, 5) Dario Sanches - Brasilien
1, 2, 3) weiblich 4, 5, 6) männlich

Tanager,_Tawny-creasted Tachyphonus delatrii Gefunden: Mittelamerika, Kolumbien, Ecuador

Tanager,_weiß gesäumt Tachyphonus rufus Gefunden: Mittel- und Südamerika

Bild von: 1) Shriram Rajagopalan - Trinidad 2, 4) Doug Janson 3) Dominic Sherony 5) Steve Garvie - Oberes Arima-Tal von Trinidad 6) Cristiano Crolle - El Palmar, Argentinien 7) Nick_Athanas - Venezuela
1) Paar 2) Weiblich 3 - 6) Männlich

Tanager,_White-Shouldered Tachyphonus luctuosus Gefunden: Hondoros südliches bis nördliches Südamerika

Bild von: 1, 2, 3) Nick_Athanas - Ecuador, Ecuador, Panama
1) T. l. panamensis 2) T. l. lutuosus 3) T. l. panamensis

Tanager,_Yellow-crested Tachyphonus rufiventer Gefunden: Bolivien, Nordost-Brasilien, Peru

Bild von: 1) Francisco_Piedrahita - Peru 2) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - John_McKean - Peru

Gattung Tersina - 1 Spezies

Tanager,_Swallow Tersina viridis Gefunden: Panama bis Nordargentinien

Bild von: 1) Carlos_Henrique 2, 3, 4, 5) Dario Sanches - Brasilien 6) Sandy Cole - San Diego Zoo
1, 2, 3) weiblich 4, 5, 6) männlich

Tanager,_Buff-bellied Thlypopsis inornata Gefunden: hauptsächlich in Peru, auch im äußersten Süden Ecuadors

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Ian_Davis in Peru 2) Nick_Athanas - Peru
1) weiblich 2) männlich

Tanager,_Kastanienköpfig Thlypopsis-Pyrrhokom Gefunden: ne Argentinien, se Brasilien, Ost-Paraguay

Bild von: 1) Nick_Athanas - Brasilien 2) JQuental

Tanager,_Fulvous-köpfig Thlypopsis fulviceps Gefunden: Kolumbien, Veneauela

Tanager,_Orange-headed Thlypopsis sordida Gefunden: Südamerika

Tanager,_Rufous-chested Thlypopsis ornata Gefunden: Kolumbien, Ecuador, Peru
Bild von: 1) Nick_Athanas - Ecuador 2) Amy_McAndrews - Peru

Tanager,_Rost-und-Gelb Thlypopsis ruficeps Gefunden: Argentinien, Bolivien, Peru

Bild von: 1) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Fabrice Schmitt 2) Nick_Athanas - Peru
1 Paar

Tanager,_Azure-Schultert Thraupis cyanoptera Gefunden: in der Nähe der Küste von Brasilien, Paraguay

Bild von: 1) Dario Sanches - Brasilien 2) Nick_Athanas - Brasilien 3) Aaron_Maizlish - Brasilien

Tanager,_Schwarzköpfig Tangara cyanoptera Gefunden: Brasilien, Kolumbien, Guyana, Venezuela

Bild von: 1, 2) Tony_Morris - Venezuela 3) Barloventomagico - Venezuela
1) weiblich 2, 3) männlich

Tanager,_Blue-capped Thraupis cyanocephala Gefunden: nördliches Südamerika

Bild von: 1) Francesco_Veronesi - Kolumbien 2) Fernando Flores 3) Nick_Athanas - Ecuador 4) Fernando Flores - Venezuela

Tanager,_Blau-Grau Thraupis episcopus Gefunden: Mexiko bis Nordbrasilien

Bild von: 1) Dick Daniels - Washington National Zoo 2) Dominic Sherony - Cusco, Peru 3) Dick - Boquette, Panama 4, 5, 6) Dick - Nationale Voliere 7) Charlie Westerinen - Equitos Peru 8) Dick - Ecuador
2) Thraupis e. Urubambae

Tanager,_Glaucous Thraupis glaucocolpa Gefunden: Kolumbien, Venezuela

Bild von: 1) Nick_Athanas - Venezuela 2, 3) Barloventomagico - Venezuela

Tanager,_Golden-Chevroned Thraupis ornata Gefunden: Brasilien

Bild von: 1, 4) Nick Athanas - Brasilien 2) Dario Sanches - Brasilien 3) Carlos_Henrique - Brasilien
1) weiblich 4) männlich

Tanager,_Golden-Nacken Tangara Ruficervix Gefunden: Bolivien, Kolumbien, Ecuador, Peru

Bild von: 1) Doug_Janson 2) Francesco_Veronesi - Ecuador 3) Carlos_Henrique - Ecuador

Tanager,_Palm Thraupis palmarum Gefunden: Mittel- und Südamerika

Bild von: 1, 2) Dario Sanches – Brasilien 3) Dominic Sherony 4) Dick Daniels – Ecuador 5, 6) Dick – Panama 7) Nick Athanas – Ecuador

Tanager, Sayaca Thraupis sayaca Gefunden: Südamerika (Brasilien liegt am nördlichsten)

Bild von: 1, 2) Dario Sanches - Brasilien 3) Cláudio Timm - Brasilien 4) Gustavo_Duran - Argentinien

Tanager,_Gelbflügel Thraupis abbas Gefunden: Mexiko, Mittelamerika

Gattung Trichothraupis - 1 Spezies

Tanager,_Black-goggled Trichothraupis melanops Gefunden: Südamerika

Bild von: 1, 2, 3) Dario Sanches - Brasilien 5) Cláudio Timm - Rio Grande do Sul, Brasilien 4, 6) Nick_Athanas - Brasilien
1 - 4) weiblich 5, 6) männlich

Gattung Wetmorethraupis - 1 Spezies

Tanager,_Orange-throated Wetmorethraupis sterrhopteron Gefunden: Südost-Ecuador, Nord-Peru

Gattung Rhodinocichla - 1 Spezies

Tanager,_Rosy_Thrush- Rhodinocichla rosea Gefunden: Kolumbien, Costa Rica, Mexiko, Panama, Venezuela

Spindalis,_Hispaniolan Spindalis dominicensis Gefunden: Hiapaniola

Spindalis, Jamaika Spindalis nigricephala Gefunden: Jamaika
Bild von: 1, 2, 3, 4) Dick Daniels - Jamaika 5) Cornell_Univ's_Neotropical_Birds_Online - Sam_Woods
1, 2) weiblich 3, 4, 5) männlich

Spindalis, Puerto Rican Auch Puertoricanischer gestreifter Tanager Spindalis portoricensis Endemisch in Puerto Rico

Bild von: 1, 2) New Jersey Birds
1) weiblich 2) männlich

Spindalis, Western Spindalis zena Gefunden: Mexiko, Florida (Landstreicher), Karibik

Bild von: 1, 5) Laura Gooch 2) Blake Maybank - Kuba 3) Allan_Hopkins - Kuba 4) Dawn Scranton
1) Jugendlicher männlich 2, 3) weiblich 4, 5) männlich

Nördliche Sägezahn-Eule

Keine Liste süßer Vögel ist ohne eine Eule vollständig, und die nördlichen Sägezahn-Eulen (Aegolius acadicus) gehören wohl zu den süßesten aller Eulenarten. Nördliche Sägezahn-Eulen sind kleine Eulen, die eine runde Gesichtsscheibe und große goldene Augen haben. Wie viele Eulen sind die nördlichen Sägezahnkauz heimliche, nachtaktive Vögel, die kleine Säugetiere wie Hirschmäuse und Weißfußmäuse jagen. Nördliche Sägezahneulen besetzen ein Verbreitungsgebiet, das sich von Küste zu Küste in Nordamerika erstreckt. Sie brüten in den borealen Wäldern und nördlichen Laubwäldern von Alaska, British Columbia, dem pazifischen Nordwesten und den Rocky Mountain-Staaten.

MATERIALEN UND METHODEN

Tiere

Gesunde gefärbte Wildtyp-Vögel wurden von lokalen Züchtern erworben und mit geeigneten Samenmischungen gefüttert, die mit Vitaminen, Mineralstoffen, Obst und Gemüse ergänzt wurden. Während der Versuchstage erhielten die Vögel in den Verhaltensexperimenten ihr gesamtes Futter mit Ausnahme einer kleinen Futterportion am Ende eines jeden Tages. Die Tiere wurden unter Bedingungen gehalten, die den ethischen Richtlinien des schwedischen Landwirtschaftsamtes entsprachen, und alle Versuche wurden vom Vorstand genehmigt (M18-07, M206-07).

Versuchskäfig

Die Vögel wurden in einem rechteckigen Käfig von 500 mm x 960 mm x 740 mm (Breite, Länge, Höhe) in einem vollständig dunklen Raum getestet. Vier einstellbare Leuchtstoffröhren (Biolux L18W/965 Osram, München, Deutschland) und 30 einstellbare Leuchtdioden (weiß, 5 mm, 20 cd Kjell &Company, Malmö, Schweden) über dem Käfig erzeugten ein homogenes Licht von 252–11,5 cd m –2 (Leuchtstoffröhren und LEDs) und 3,12–0,0156 cd m –2 (LEDs Abb. 1), gemessen als das Licht, das von einem am Boden des Käfigs positionierten Weißstandard reflektiert wird. Eine der kurzen Stirnwände des Käfigs bestand aus einer schwarzen Tafel mit zwei horizontal ausgerichteten Fenstern 55 mm × 55 mm (313 mm Abstand) zur Reizpräsentation. Diese Fenster konnten durch eine abnehmbare schwarze Abdeckung geschlossen werden. Die Vögel beobachteten die Reize von einem Startplatz in 827 mm Entfernung, von dem aus jeder Reiz 3,8° des Gesichtsfeldes der Vögel bedeckte. Unter jedem Stimulusfenster wurden Kästen mit Luken und Futterstangen platziert und diese wurden mit Samen aus den Futtermischungen der Vögel gefüllt.

Verhaltenstestverfahren

Die Vögel wurden darauf trainiert, zwischen positiven grünen und negativen blauen Reizen zu wählen, die gleichzeitig präsentiert wurden. Die Tests begannen mit einem zweifarbigen Hörsignal, wonach die schwarze Abdeckung vor den Reizen entfernt wurde. Zunächst wurde die Futterbox des positiven Reizes direkt nach Sichtbarwerden der Reize geöffnet und der Vogel konnte frei fressen. Nach einigen Tagen mussten sich die Vögel dem positiven Reiz nähern, um die Belohnung zu erhalten und schließlich löste nur der Kontakt mit dem richtigen Futterbarsch die Belohnung aus. Die Belohnung bestand in einem 4–6 s langen Zugang zum Futter, danach wurde die Futterbox geschlossen und die Reize abgedeckt. Der Vogel musste zum Startplatz zurückkehren, um eine neue Präsentation einzuleiten. Falsche Entscheidungen wurden nicht bestraft, sondern es folgte nur die Rückgabe der Reizhülle. Nachdem die Vögel das Verfahren gelernt hatten, wurden sie bei hellem Licht mit Testsätzen von jeweils 20 Präsentationen trainiert, bis sie in zwei aufeinanderfolgenden Sätzen 75% der richtigen Entscheidungen erreichten oder überschritten.

Die Tests starteten mit der höchsten Leuchtdichte (252 cd m –2 ). Vor jeder Sitzung durften sich die Vögel 10–15 Minuten lang an die Leuchtdichte dieses Tests anpassen. Nach Abschluss eines Test-Sets wurde das Licht gedimmt und nach dem Adaptionsintervall eine neue Sitzung gestartet. Jeder Vogel absolvierte 60 Auswahlmöglichkeiten bei jeder der sechs bis neun Leuchtdichtestufen und die Intensitätsschwelle des Farbsehens wurde durch Berechnung (durch Interpolation der Wahlhäufigkeitskurven) der Leuchtdichtestufe bestimmt, bei der die Vögel 65 % richtige Entscheidungen trafen (Binominaltest, n=60, P<0,05).

Spektren des Umgebungslichts und der Reize in den Experimenten. (A) Die Lichtquellen des Aufbaus (LEDs) erzeugen bei Wellenlängen unter 425 nm nur vernachlässigbare Lichtmengen. Die Daten werden mit einem 11-stufigen laufenden Durchschnitt geglättet, um das Rauschen zu reduzieren. a.u., beliebige Einheiten. (B) Die Reflexionsspektren der Stimuli (im Vergleich zu einem Weißstandard) werden entsprechend ihrem Aussehen für das menschliche Auge (grün und blau) markiert und für Wellenlängen zwischen 400 und 700 nm dargestellt. Die Werte bei Wellenlängen kleiner 400 nm können wegen des Spektralbereichs der Lichtquelle (A) in den Experimenten vernachlässigt werden. (C) Ein Chromatizitätsdiagramm, das den Rezeptorraum der kurzwellig-empfindlichen (S), der mittleren Wellenlängen-empfindlichen (M) und der langwellig-empfindlichen (L) Kegel darstellt. Der ultraviolettempfindliche Kegel wird ignoriert, da seine Empfindlichkeit für die von den Stimuli reflektierten Spektren (A,B) sehr gering ist. Die Stimuli sind wie in B gekennzeichnet und Farborte innerhalb des Diagramms zeigen relative Zapfenreaktionen an. Die graue Linie zeigt monochromatische Loci zwischen 450 und 650 nm mit schwarzen Balken und Markierungen in Abständen von 50 nm an.

Spektren des Umgebungslichts und der Reize in den Experimenten. (A) Die Lichtquellen des Aufbaus (LEDs) erzeugen bei Wellenlängen unter 425 nm nur vernachlässigbare Lichtmengen. Die Daten werden mit einem 11-stufigen laufenden Durchschnitt geglättet, um das Rauschen zu reduzieren. a.u., beliebige Einheiten. (B) Die Reflexionsspektren der Stimuli (im Vergleich zu einem Weißstandard) werden entsprechend ihrem Aussehen für das menschliche Auge (grün und blau) markiert und für Wellenlängen zwischen 400 und 700 nm dargestellt. Die Werte bei Wellenlängen kleiner 400 nm können wegen des Spektralbereichs der Lichtquelle (A) in den Experimenten vernachlässigt werden. (C) Ein Chromatizitätsdiagramm, das den Rezeptorraum der kurzwellig-empfindlichen (S), der mittleren Wellenlängen-empfindlichen (M) und der langwellig-empfindlichen (L) Kegel darstellt. Der ultraviolett-empfindliche Kegel wird ignoriert, da seine Empfindlichkeit für die von den Stimuli reflektierten Spektren (A, B) sehr gering ist. Die Stimuli sind wie in B gekennzeichnet und Farborte innerhalb des Diagramms zeigen relative Zapfenreaktionen an. Die graue Linie zeigt monochromatische Loci zwischen 450 und 650 nm mit schwarzen Balken und Markierungen in Abständen von 50 nm an.

Impulse

Die Stimuli wurden mit einem Tintenstrahldrucker (PIXMA pro9000 Canon, Tokio, Japan) auf weißes Munken Pure Copy Papier (Artic Paper Munkedals AB, Uddevalla, Schweden) gedruckt. Die Strahldichte der Stimuli wurde mit einem Spektroradiometer (RSP900-R International Light, Peabody, MA, USA) gemessen. Wir gehen davon aus, dass die Papageien vier Arten von Einzelkegeln (den UV-empfindlichen, den kurzwelligen-empfindlichen, den mittleren Wellenlängen-empfindlichen und den langwelligen-empfindlichen Kegel) für das Farbsehen verwenden und Doppelkegel und -Stäbchen das räumliche Sehen vermitteln ( Maier und Bowmaker, 1993) (für eine Übersicht siehe Osorio und Vorobyev, 2005). Die spektralen Empfindlichkeiten der Wellensittich-Photorezeptoren wurden unter Verwendung von Absorptionsdaten der Sehpigmente, der Öltröpfchen und der Augenmedien (Bowmaker et al., 1997 Lind und Kelber, 2009) zusammen mit einer Sehpigmentvorlage (Govardovskii et al., 2000 .) modelliert ) und ein Öltröpfchenmodell (Hart und Vorobyev, 2005). Die Photorezeptoren von Bourkes Papageien sind wahrscheinlich wie die des Wellensittichs abgestimmt, da die Photorezeptor-Empfindlichkeiten von Vögeln innerhalb von Familien sehr ähnlich sind (Hart, 2001). Der Quantenfang der Photorezeptoren und die Farborte im Rezeptorraum (Abb. 1) wurden wie an anderer Stelle beschrieben berechnet (Balkenius und Kelber, 2004, Roth et al., 2008).

Unter Verwendung des Quantenfangs von Doppelkegeln und -stäben konstruierten wir vier Helligkeitsversionen des grünen und fünf Versionen des blauen Reizes (Abb. 1). Diese Reize wurden in 10 Paaren angeordnet und die grüne Farbe war für die Vögel in fünf der Paare heller. Jedes Stimuluspaar wurde zweimal in einer pseudozufälligen Reihenfolge verwendet, was zu einem Testsatz mit 20 Auswahlmöglichkeiten führte. Dieses Set wurde mit zufälligem Wechsel in Präsentationsreihenfolge (Stimulipaare 1,2.20 oder 20,19.1) und Präsentationsseite (links, rechts) verwendet. Durch dieses Verfahren stellten wir sicher, dass alle Stimuli unterschieden werden konnten, dass die positiven Stimuli gleich oft links und rechts präsentiert wurden und dass Entscheidungen basierend auf der Stimulushelligkeit zu 50% richtigen Entscheidungen führten.

Schülerdynamik

Die Steady-State-Pupillendynamik von drei Wellensittichen und drei Bourke-Papageien wurde in demselben Versuchskäfig gemessen, der in den Verhaltensexperimenten verwendet wurde. Zwei Leuchtstoffröhren (Repti Glo 2.0 Compact, 26W Exo Terra, Holm, Deutschland) wurden hinzugefügt, um den Leuchtdichtebereich auf 455 cd m –2 zu erweitern. Die Vögel wurden auf eine Plastikstange mit Skalenmarkierungen gesetzt und 30 s bei jeder Lichtstärke mit einer Videokamera (DCR-TRV 730E Sony, Tokio, Japan) gefilmt, die mit Infrarotlicht emittierenden Dioden (LEDs) ausgestattet war. Die Vögel wurden vor den Aufnahmen für 15 min an jede Lichtstärke angepasst. Drei Bilder, in denen die Vögel direkt in die Kamera schauten, wurden mit der Software Adobe Premier Pro (Adobe Systems Mountain View, CA, USA) extrahiert.

Abmessungen des Photorezeptors

Zwei Bourke-Papageien und zwei Wellensittiche wurden mit Kohlendioxid betäubt und enthauptet. Von jedem der Vögel wurde ein Auge herausgeschnitten und für die Untersuchungen der Netzhaut verwendet. Kleine kreisförmige Anteile der Netzhaut vom hinteren Augenpol wurden ausgeschnitten und über Nacht in 2,5 % Glutaraldehyd und 0,15 mol l –1 Kakodylatpuffer fixiert. Anschließend wurden die Proben schrittweise mit Ethanol entwässert und in Epon eingebettet. Drei Schnitte von jeder Probe (1–2 µm Dicke, 50 µm Intervalle) wurden auf Objektträger montiert, mit Azur II-Methylenblau gefärbt und zusammen mit einer Skala unter einem Lichtmikroskop fotografiert. Die Abmessungen der Photorezeptoren in den mikroskopischen Aufnahmen wurden mit einem kostenlosen Softwareprogramm, ImageJ v.1.41 (Rasband, 2008), gemessen.

In der Netzhaut wurden Doppelzapfen, Einzelzapfen und Stäbchen identifiziert. Die Abmessungen der einzelnen Kegel wurden für die optischen Empfindlichkeiten der Farbsichtsysteme verwendet. Die Stababmessungen wurden verwendet, um die Empfindlichkeit der Augen unter skotopischen Bedingungen zu bestimmen. Die Doppelkegel wurden nur in die Abschätzung der Kegel-Stab-Verhältnisse einbezogen und jeder Doppelkegel wurde als einer gezählt.

Schematische Augen

Je ein Auge von zwei Bourke-Papageien und beide Augen von einem Wellensittich wurden, während sie noch intakt im Schädelinneren waren, direkt nach der Enthauptung bei –80°C schnell eingefroren. Die Augen wurden dann in einen Kryostaten gelegt und horizontal geschnitten. Augenfotos und eine Skala wurden in Abständen von 100 µm aufgenommen, um die größten Augendurchmesser zu erhalten. Die Augenmaße in den Fotografien wurden mit ImageJ (Rasband, 2008) gemessen. Schematische Augen wurden unter Verwendung von mittleren Parametern und dem schematischen Augenmodell von Gullstrand konstruiert, wie von Land und Nilsson (Land und Nilsson, 2002) beschrieben. Für diese Berechnungen setzen wir den Brechungsindex des Kammerwassers und des Glaskörpers auf 1,337, den Wert, der bei anderen Vögeln gefunden wird (Martin, 1982 Martin, 1986 Martin et al., 2001). Wir gehen von emmetropen Schemaaugen aus, was bedeutet, dass die Brechungsindizes der Linsen als einziger einstellbarer Parameter angenähert werden können.

Eine Untersuchung von sieben Tauben (Columba livia) Augen mit derselben Methode ergaben eine mittlere Brennweite von 7,96 mm und eine axiale Länge von 11,96 (O.L., unveröffentlichte Daten). Diese Werte sind denen aus früheren Studien (Brennweite = 7,91, axiale Länge = 11,62) sehr ähnlich, bei denen andere Methoden, einschließlich Brechungsindexmessungen, verwendet wurden (Marshall et al., 1973, Martin und Brooke, 1991).

Optische Empfindlichkeiten

EINLEITUNG

Organismen nutzen Umweltsignale, um Jahreszyklen zu messen, die Zucht zu verfeinern und tägliche Verhaltensentscheidungen zu treffen. Langfristig helfen vorhersagbare Veränderungen der Photoperiode, des Niederschlags und der Temperatur Organismen, die Übergänge in der Lebensgeschichte richtig zu messen, um ihre Fitness zu maximieren. Kurzfristig verwenden Organismen eine breitere Palette von Hinweisen zur Vorhersage des kurzfristigen Wetters. Hier konzentrieren wir uns auf die letztere Klasse und fragen, ob Spatzen den sinkenden Luftdruck als Hinweis verwenden, um sich auf entgegenkommende Stürme vorzubereiten.

Stürme können den Erfolg bei der Nahrungssuche, den Stoffwechselbedarf, die Körperkondition und das Verhalten der Eltern stark beeinflussen. Starke Regenfälle können beispielsweise Nistplätze überfluten und die Möglichkeiten zur Nahrungssuche einschränken, und starke Winde können die Nahrungseffizienz verringern und den Wärmeverlust erhöhen. Stürme können auch niedrige Temperaturen und Schnee umfassen. Kalte Temperaturen können die metabolischen Kosten der Thermoregulation erhöhen und direkt das Überleben bedrohen. Schnee kann die Aktivität einschränken und Nahrungsressourcen bedecken. Gibt es vorhersehbare Komponenten dieser schnellen abiotischen Veränderungen? Im Prinzip könnten Organismen sturmbezogene Hinweise über mehrere Zeitskalen hinweg verwenden. Die nächsten stammen vom Sturm selbst – zunehmende Wolkendecke, starke Winde, fallende Temperaturen und starke Niederschläge. Hinweise vor dem Sturm können jedoch nützlicher sein, da sie den Organismen möglicherweise mehr Zeit geben, sich vorzubereiten, indem sie Physiologie und Verhalten entsprechend ändern.

Ein bekannter Prädiktor für drohende Stürme ist der fallende Luftdruck. Wenn sich schlechtes Wetter nähert, kann der Luftdruck innerhalb von 24 bis 72 Stunden um 2–12 kPa sinken [je nach Schwere des Sturms (Saucier, 2003)]. Dieses Phänomen ist gut dokumentiert und könnte ein zuverlässiger Hinweis auf Wirbeltiere sein. Studien mit einer Vielzahl von Taxa weisen darauf hin, dass Tiere den barometrischen Druck verwenden, um Verhaltensänderungen zeitlich zu steuern. Frösche können mehr rufen, wenn der Luftdruck niedrig ist und Regen wahrscheinlich ist (Brooke et al., 2000, Oseen und Wassersug, 2002) Vögel können Veränderungen des Luftdrucks wahrnehmen (Kreithen und Keeton, 1974, Lehner und Dennis, 1971, Paige, 1995) und können das Zugverhalten ändern, um schlechtes Wetter zu vermeiden (Blokpoel und Richardson, 1978 Cryan und Brown, 2007 Maransky et al., 1997 Matthews und Rodewald, 2010 Panuccio et al., 2010 Pyle et al., 1993 Sapir et al., 2011 Shamoun-Baranes et al., 2006). Die Mehrzahl der Studien untersucht jedoch Korrelationen zwischen Verhaltensmustern und natürlich variierendem Luftdruck. Eine direkte Manipulation des Luftdrucks selbst ist selten.

Wir verstehen auch noch nicht die Mechanismen, durch die Wirbeltiere Druckinformationen in physiologische und Verhaltensreaktionen integrieren. Ein wahrscheinlicher Kandidat ist das endokrine System, insbesondere die Nebennierenrindenachse, die in anderen Zusammenhängen ein bekannter Integrator von Stressinformationen ist. Endokrine Systeme übersetzen häufig Umweltreize in Reaktionen des Organismus, zum Beispiel fördern erhöhte Androgene das Migrationsverhalten als Reaktion auf längere Tage. Glukokortikoide werden von der Nebenniere sezerniert und sollen die Physiologie und das Verhalten so umlenken, dass Tiere mit sich verschlechternden oder unvorhersehbaren Situationen fertig werden können (Wingfield und Sapolsky, 2003). Aus der Perspektive der Lebensgeschichte wird angenommen, dass Glukokortikoide den Energieverbrauch von der Fortpflanzung auf die Selbsterhaltung umlenken, wodurch die Überlebenswahrscheinlichkeit unter suboptimalen Bedingungen erhöht wird (Breuner et al., 2008 Wingfield et al., 1998). Mehrere Beweislinien deuten darauf hin, dass Corticosteron (CORT, das primäre aviäre Glukokortikoid) die Verhaltensreaktionen auf Stürme reguliert. Tiere, die während Schnee und Regenstürmen gefangen wurden, können einen erhöhten CORT aufweisen (Astheimer et al., 1995 Bize et al., 2010 Rogers et al., 1993 Smith et al., 1994 Wingfield et al., 1983). Extreme Temperaturen können das zirkulierende CORT erhöhen (Bize et al., 2010 de Bruijn und Romero, 2011 Dunlap und Wingfield, 1995 Tyrrell und Cree, 1998). Glukokortikoide können die Aktivität sowohl im Labor als auch im Freiland steigern und es wurde gezeigt, dass sie die Nahrungsaufnahme bei mehreren Wirbeltieren erhöhen (z. B. Arvaniti et al., 1998 Astheimer et al., 1992 Breuner et al., 1998 Breuner und Hahn, 2003 Crespi et al ., 2004 Nasir et al., 1999). Und schließlich verändern Glukokortikoid-Implantate bei Weißkronensperlingen die Reaktion auf schlechtes Wetter (Breuner und Hahn, 2003). Insgesamt deuten diese Studien darauf hin, dass die Glukokortikoide mit Luftdruckänderungen und Stürmen erhöht werden könnten und dass steigende Glukokortikoide Veränderungen in der Physiologie und im Verhalten verursachen, die es den Tieren ermöglichen, sich verschlechternden Bedingungen standzuhalten.

Hier untersuchen wir die Beziehungen zwischen Luftdruck, Physiologie und Verhalten bei freilebenden und in Gefangenschaft gehaltenen Weißkronensperlingen. In einer Feldstudie an wilden Spatzen haben wir einen 7-Jahres-Datensatz verwendet, um sowohl zu bewerten, wie stark der Luftdruck vor Schneestürmen abnimmt, als auch die Beziehungen zwischen Druck und CORT-Physiologie. In einer Laborstudie setzten wir Vögel experimentell einem sinkenden Luftdruck aus und bewerteten Veränderungen ihres Stoffwechsels, ihres Nahrungssucheverhaltens, ihrer Aktivität und ihrer Stressphysiologie.

Atlantic Flyway Bald Eagle Band Kontaktlinsen nach Bandfarbe

Willkommen Adler-Enthusiasten! Wenn Sie einen Weißkopfseeadler mit einem farbigen Beinband entdeckt haben, ist dies die Website für Sie! Beachten Sie, dass diese Bandfarben nur für Adler gelten, die im östlichen Teil von Nordamerika (östlich der Appalachen) zu sehen sind.

In der Tabelle der Farbbänder unten finden Sie die Kontaktinformationen für den entsprechenden Adlerbander (einige Staaten haben mehr als einen Bander, wenden Sie sich also bitte an beide). Diese Liste gilt nur für Adler, die östlich der Appalachen und im Osten Kanadas gebändert sind. Diese Adlerbander verlassen sich auf SIE, das Vogelbeobachtungspublikum, um Sichtungen von Bandadlern zu erkennen und zu melden. Diese Sichtungen werden in der Adlerforschung verwendet, um Adlerbewegungen zu verfolgen, Überlebensraten und Todesursachen zu überwachen.

Geben Sie in Ihrer E-Mail an den/die Bander Ihre Kontaktdaten, den genauen Standort des Adlers, die Bandfarbe, den Bandcode und, falls möglich, ein Foto des Adlers an. Wenn ein Code auf dem Band sichtbar war, melden Sie den Code und die Farbe des Bandes bitte dem USGS Bird Banding Lab unter reportband.gov.

Band Farbe	Bundesland/Provinz	Bander/E-Mail	Bandinfos
SCHWARZ	NH	Christian Martin (NH Audubon)
SCHWARZ	AN	Jody Allair (Vogelforschung Kanada)	2-3 Zeichen, #s & Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
BLAU	NY	Scott Crocoll (NYSDEC)	2-3 Zeichen, #s & Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
BLAU	FL	Brian Millsap (USFWS-NM)	3 Zeichen, beginnend mit C oder H gefolgt von einer 2-stelligen Zahl
GOLD	MA	Andrew Vitz & Jennifer Longsdorf (MassWildlife)	Verwendet von 1987-2006 – Das erste Zeichen war immer „W“, gefolgt von einem Buchstaben und einer Zahl, vertikal, 3x um das Band herum wiederholt
GRÜN	NJ	Kathy Clark (NJDEP)	2 Zeichen, #s & Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
GRÜN SCHWARZ	FL	Brian Mealey, (Institut für Wildtierwissenschaften)	Grün über Schwarz, 2 Zeichen, #s und Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
ORANGE	QU	Jérôme Lemaître, (Québec MFFP)
ORANGE	MA	Andrew Vitz & Jennifer Longsdorf (MassWildlife)	Gebraucht 2007-heute. 2 Zeichen, #s & Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
VIOLETT	VA	Bryan Watts (CCB)	2 Zeichen, #s & Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
VIOLETT	MD	Bryan Watts (CCB)	2 Zeichen, #s & Buchstaben, vertikal, 3x um Band wiederholt
ROT	MICH	Charlie Todd (MDIFW) Chris DeSorbo (BRI)	Horizontale und vertikale Zeichen werden 3x um das Band herum wiederholt
ROT SCHWARZ	NY	Katherine Yard (NYSDEC)	Rotes “A” über schwarzer 2-stelliger Zahl

Hinweis: Lila Bänder, die in Staaten des Mittleren Westens zu sehen sind, sollten sich an Michele McNulty (USFWS-KY), (785) 539-3474 X106 wenden.

Korrelationen von Vogelkollisionen mit Gebäuden in drei nordamerikanischen Ländern

Abteilung für Ökologie und Management natürlicher Ressourcen, Oklahoma State University, 008C Ag Hall, Stillwater, OK, 74078 USA

Fachbereich Biologie, Augustana College, Rock Island, IL, 61201 USA

Department of Biology, Hobart and William Smith Colleges, Genf, NY, 14456 USA

Abteilung für Ökologie und Management natürlicher Ressourcen, Oklahoma State University, 008C Ag Hall, Stillwater, OK, 74078 USA

Aktuelle Adresse: Department of Biology, Salt Lake Community College, 4600 South Redwood Road, Salt Lake City, Utah, 84123 USA

Department of Biology, The University of Montana Western, 710 S. Atlantic St., Dillon, MT, 59725 U.S.A.

Worcester Polytechnic Institute, Goddard Hall 128, 100 Institute Road, Worcester, MA, 01609 USA

Department of Biological Sciences, Arkansas State University, State University, PO Box 599, Jonesboro, AR, 72467 USA

Acopian Engineering Center 320, Lafayette College, Easton, 18042 PA, USA

Shaw University, 118 E. South Street, Raleigh, NC, 27601 USA

Abteilung für Biologie, Lafayette College, 213 Kunkel Hall, Easton, 18042 PA, USA

Duke University, BOX 90328, 9 Circuit Drive, Durham, NC, 27708 USA

Iniciativa para la Conservación de las Aves de América del Norte-México (NABCI-México), Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad (CONABIO), Liga Periférico-Insurgentes Sur, Nr. 4903, Col. Parques del Pedregalregal, Dele Tlalpan, Distrito Federal, 14010 Mexiko

Aktuelle Adresse: Av. La Garita und. 17 #22 Casa 3 Col. Narciso Mendoza Villa Coapa, C.P., Ciudad de México, 14390 Mexiko

School of Biological Sciences, Illinois State University, Normal, IL, 61790 USA

University of Washington, Gould Hall Box 355740, Seattle, WA, 98195 USA

Aktuelle Adresse: 3010 Remington Ct, San Jose, CA, 95148 U.S.A.

Wilmington College, 1870 Quaker Way, Wilmington, OH, 45177 USA

Department of Animal, Rangeland und Wildlife Sciences, Texas A&M University-Kingsville, Kingsville, TX, 78363 USA

Biologieabteilung, Washington and Jefferson College, 60 S. Lincoln St., Washington, PA, 15301 USA

Department of Biological Sciences, Arkansas State University, State University, Postfach 599, Jonesboro, AR, 72467 USA

Department of Biological Sciences, Bloomsburg University, 400 E 2nd Street, Bloomsburg, PA, 17815 USA

Fakultät für Biologie, Villanova University, 800 Lancaster Avenue, Villanova, PA, 19085 USA

Biologieabteilung, Macalester College, 1600 Grand Avenue, St. Paul, MN, 55105 USA

University of Washington, Gould Hall Box 355740, Seattle, WA, 98195 USA

Umweltwissenschaften (Biologie), Memorial University of Newfoundland, Grenfell Campus, 20 University Drive, Corner Brook, NL, A2H 5G4 Canada

Principia College, 1 Front Gate Road, Elsah, IL, 62028 USA

Aktuelle Adresse: 1115 N Pitt St., Alexandria, VA, 22314 U.S.A.

Department of Biological Sciences, Old Dominion University, Norfolk, VA, 23529 USA

Department of Biological Sciences, Northern Kentucky University, Highland Heights, KY, 41099 USA

Acopian Center for Ornithology, Muhlenberg College, 2400 Chew St., Allentown, 18104 PA, USA

Department of Biological Sciences, Florida International University, 11200 SW 8th St., Miami, FL, 33199 USA

Department of Biological Sciences, Old Dominion University, Norfolk, VA, 23529 USA

Aktuelle Adresse: 305 Kaler Road, Virginia Beach, VA, 23456 U.S.A.

Umwelt und Klimawandel Kanada, Canadian Wildlife Service, 91780 Alaska Highway, Whitehorse, YT, Y1A 5 × 7 Kanada

Warren Wilson College, 701 Warren Wilson College Rd, Swannanoa, NC, 28778 USA

Aktuelle Adresse: University of Tampa, 401 W Kennedy Blvd., Tampa, FL, 33606 U.S.A.

School of Biological Sciences, Louisiana Tech University, Ruston, LA, 71272 USA

BioEco Forschungs- und Überwachungszentrum, P.O. Box 452, Hampton, IL, 61256 USA

Lake Forest College, 555 N. Sheridan Rd., Lake Forest, IL, 60045 USA

Nicholas School of the Environment, Duke University, 9 Circuit Drive, Durham, NC, 27708 USA

Aktuelle Adresse: Departement Umweltsystemwissenschaften, ETH Zürich, Universitatstrasse 16, Zürich, 8092 Schweiz

Aktuelle Adresse: Grupo de Ecología Evolutiva y Demografía Animal, Departamento de Ecología y Recursos Naturales, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad Universitaria, Distrito Federal, 04510 Mexiko

Department of Biological Sciences, Bloomsburg University, 400 E 2nd Street, Bloomsburg, PA, 17815 USA

Aktuelle Adresse: Environmental Science Program & Biology Department, Trinity College, 300 Summit Street, Hartford, CT, 06106 U.S.A.

Museo de Zoología Alfonso L. Herrera, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), Avenida Universidad 3000, Circuito Exterior S/N, Delegación Coyoacán, C.P. 04510, Ciudad Universitaria, Distrito Federal, Mexiko

Furman University, 3300 Poinsett Highway, Greenville, SC, 29613 USA

School of Forest Resources and Environmental Science, Michigan Technological University, 1400 Townsend Drive, Houghton, MI, 49931 USA

Aktuelle Adresse: University of Maine, 5755 Nutting Hall, Orono, ME, 04469 U.S.A.

University of Wisconsin-Platteville, 1 University Plaza, Platteville, WI, 53818 USA

Wells College, 170 Main Street, Aurora, NY, 13026 USA

University of Minnesota Crookston, 2900 University Ave Crookston, Crookston, MN, 56716 USA

University of Illinois at Chicago, 845 W Taylor St, Chicago, IL, 60607 USA

Biologieabteilung, Colorado State University - Pueblo, 2200 Bonforte Blvd., Pueblo, CO, 81001 U.S.A.

Department of Biological Sciences, Old Dominion University, Norfolk, VA, 23529 USA

Department of Biological Sciences, Northern Kentucky University, Highland Heights, KY, 41099 USA

University of Toronto Scarborough, 1265 Military Trail, Scarborough, Ontario, MIC 1A4 Kanada

Fakultät für Biologie, Hope College, 35 E. 12th Street, Holland, MI, 49423 USA

Centro de Investigaciones Biológicas, Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo, Km 4,5 Auto. Pachuca-Tulancingo s/n, col. Carboneras, Mineral de la Reforma, Hidalgo, C.P. 42184 Mexiko

Umwelt und Klimawandel Kanada, Canadian Wildlife Service, 91780 Alaska Highway, Whitehorse, YT, Y1A 5 × 7 Kanada

Aktuelle Adresse: PO Box 40118, Station Main, Whitehorse, Y1A 6M7 Yukon, Kanada