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Was ist diese gelbe klebrige Ausscheidung einer Motte? Details in Fotos

Was ist diese gelbe klebrige Ausscheidung einer Motte? Details in Fotos


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Habe diese Motte neulich im Gras gesehen und ein paar schlechte Telefonfotos gemacht. Ich würde gerne wissen, was die gelbe Ausscheidung ist. Ich glaube, es ist eine Ausscheidung der Motte (im Gegensatz zu beispielsweise einem Kaugummi, der auf den Boden gefallen ist), weil er am Schwanzende der Motte befestigt war, anstatt am ganzen Körper. Ich habe versucht, die Bilder so gut wie möglich zu beschriften, Sie müssen möglicherweise genau hinschauen. Auf dem ersten Bild unten ist nur ein winziger Teil des Mottenflügels zu sehen.

Das gelbe Ding war ziemlich klebrig, aber nicht so hart wie Kaugummi, da es die Motte am Wegfliegen hinderte. Es schlug hektisch mit den Flügeln, um einigen Ameisen zu entkommen, die von dem gelben Ding sehr angezogen zu sein schienen. Zuerst dachte ich, der Ameisenschwarm würde die tote Motte fressen, aber die Motte lebte und die Ameisen interessierten sich mehr für das gelbe klebrige Ding. Ich nahm einen dünnen Stock und zog etwas von dem klebrigen Zeug weg, und die Motte war frei genug, um wegzukriechen, das gelbe klebrige Ding mitzunehmen und eine dünne Spur zurückzulassen, wie wenn man Kaugummi ausstreckt. Es schien an der Motte und meinem Stock sehr klebrig zu sein und sehr dehnbar, denn im Gegensatz zu einem Spinnennetz konnte ich es mehr herausziehen, wenn ich versuchte, es von der Motte zu lösen, um es zu befreien.

Ich bin so neugierig, was es sein könnte. Ich glaube nicht, dass es von Ameisen gemacht wurde, weil es anscheinend an der eigentlichen Motte befestigt war oder von ihr stammte, obwohl die Ameisen nicht daran haften schienen.

Bitte fügen Sie "Motten" zu den Tags hinzu, wenn Sie über genügend "Reputationsgrad" verfügen.
Dankeschön


Manche Motten scheiden bei Bedrohung eine gelbe Lymphe aus.

https://www.nature.com/articles/219747a0

Das Foto ist nicht sehr klar, es ist schwierig, die Mottenart zu erkennen. Was hat die Motte danach gemacht? ist es weggeflogen? Wenn die Motte krank aussah, könnte es sein, dass sie einen Parasiten hatte.

https://www.insidescience.org/news/meet-moth-produces-both-bird-and-ant-repellants


Wie man Schädlinge bekämpft

Weinender, triefender, nasser, verfärbter Walnussstamm mit bräunlichem Frassexsudat von Zimmermannswurmlarven.

Ausgewachsener Zimmermannswurm, Prionoxystus robiniae, Larve in seiner Baumgalerie.

Schäden am Stamm durch Zimmermannswurmfraß.

Zimmermannswurm-Männchen mit ausgebreiteten Flügeln, um orange, braune und weiße Hinterflügel zu zeigen.

Die weiblichen Flügel des Zimmermannswurms breiten sich aus, um graue und weiße Hinterflügel zu zeigen.

Zimmermannswurm, Prionoxystus robiniae, ist ein häufig vorkommendes holzbohrendes Insekt, das bei mehreren Arten von Zier- und Obstbäumen erheblichen Schaden anrichten kann. Zu den Bäumen, die Zimmermannswürmer am wahrscheinlichsten befallen, gehören Aprikose, Esche, Birke, Pappel, amerikanische Ulme, Robinie, Ahorn, Eiche, Fruchtbirne, Zierbirne und Weide. Standorte in der Nähe von Ufergebieten sind anfälliger für einen Befall.

IDENTIFIKATION

Das Larvenstadium des Zimmermanns ist eine große, holzbohrende Raupe, die sich von der inneren Rinde eines Baumes auf dem Splintholz ernährt. Die ersten Anzeichen eines Befalls sind dunkle Saftflecken am Baumstamm. Wenn sich die Larven im Splintholz ernähren, stoßen sie Frass (Exkremente) und Sägemehl aus dem Eingangsloch der Galerie aus. Dieses Material ist an befallenen Baumstämmen gut zu beobachten.

Wenn die Larven wachsen, erweitern sie die Galerien. Wenn die Larven ausgewachsen sind, haben die Galerien einen Durchmesser von etwa 1/2 Zoll und eine Länge von 6 bis 10 Zoll. Der größte Teil der Galerie ist vertikal, mit Ausnahme des Eingangsbereichs. Galerieeingänge finden sich häufig in Baumschritten oder in Ritzen und Spalten in der Rinde. Erwachsene Weibchen legen ihre Eier häufig in bereits befallenen Bereichen des Baumes ab, und es können mehrere Galerien in derselben Gegend entstehen, die zu einer großflächigen Vernarbung des Korkrindengewebes führen.

Wenn sie ausgewachsen sind, können die Larven einen Durchmesser von bis zu 1/2 Zoll und eine Länge von 2 bis 3 Zoll erreichen. Sie sind normalerweise grünlich-weiß mit einem dunkelbraunen Kopf. Sie haben auch markante Haare an ihrem Körper, ausgeprägte Bauchvorsprünge und scharfe, hakenförmige Beine an ihrem Brustkorb.

Der erwachsene Zimmermannswurm ist ein großer, robuster Falter mit einer Flügelfläche von etwa 3 Zoll. Die Vorderflügel sind schwarz-grau gesprenkelt, wodurch die Falter schwer zu erkennen sind, wenn sie auf einem Baumstamm ruhen. Das Männchen ist etwas kleiner als das Weibchen und seine Hinterflügel sind orange und braun, während die des Weibchens cremefarben sind.

LEBENSZYKLUS

Erwachsene weibliche Falter legen zwischen 3 und 6 Eier in einer klebrigen Masse auf der äußeren Rinde eines geeigneten Wirtsbaums ab. Die Weibchen legen die Eier normalerweise in Rindenrissen und -spalten oder in der Nähe vorhandener Galerieeingänge und anderer verwundeter Rindenoberflächen ab. Weibliche Zimmermannsmotten können nicht weit fliegen, daher neigen sie dazu, Eier auf Bäume in der Nähe des Baumes zu legen, aus dem sie geschlüpft sind.

Wenn die Eier schlüpfen, beginnen die Larven sofort, sich in das Splintholz zu bohren. Die Larven bleiben bis zur Reife im Splintholz und bohren sich dann in das Kernholz. Das Eingangsloch, das die frisch geschlüpfte Raupe erzeugt, beginnt als kleine, rechteckige Öffnung, wird aber mit der Zeit größer. Wenn die Larven wachsen, benutzen sie die Eintrittslöcher, um periodisch Gras und Sägemehl auszustoßen. Es gibt zwischen 8 und 31 Stadien (Mäuselungen), und eine Larve braucht 2 bis 4 Jahre, um ihre Entwicklung in Kalifornien abzuschließen. Die ausgewachsene Puppe wackelt an die Oberfläche des Eingangslochs der Galerie. Erwachsene schlüpfen aus den hervorstehenden Puppenhüllen und paaren sich bald. Das Auftauchen der Motten ist unregelmäßig, tritt jedoch typischerweise von Mai bis Juli auf, wobei die Paarung kurz nach dem Auflaufen erfolgt.

SCHADEN

Die extensive Fütterung von Zimmermanns- und Scheunenwürmern in großen Ästen kann dazu führen, dass Äste bei starkem Wind schwächen und brechen. Das Herunterfallen von Gliedmaßen ist in städtischen Umgebungen eine große Gefahr. Auch das Gürten von Ästen durch Zimmermanns- und Scheunenwürmer, ein Prozess, der den Nährstoff- und Wasserfluss eines Baumes stört, kann zum Absterben von Ästen führen.

ÜBERWACHUNG

Suchen Sie bei der Überwachung auf Zimmermannswürmer nach dunklen Saftflecken auf Baumstämmen, großen Mengen von Gras und Sägemehl, die aus Galerien ausgestoßen werden, oder nach vernarbter Rinde. Bei älterem Befall können Puppenhüllen zu etwa zwei Dritteln aus der Baumrinde herausragen. Verfärbte oder austretende Rinde und das Absterben von Gliedmaßen können andere Ursachen haben, darunter unangemessene Kulturpraktiken, Krankheitserreger und andere Arten von holzbohrenden Insekten, einschließlich Borkenkäfer (Familie Scolytidae), Clearwing-Motten (Sesiidae), Flachkopfbohrer (Bupre­stidae) und Langhorn Bohrer (Cerambycidae). Da jeder dieser Schädlinge unterschiedliche Managementpraktiken erfordert, vermeiden Sie ineffektive Kontrollbemühungen, indem Sie die Ursache für ungesunde Bäume genau identifizieren, bevor Sie Maßnahmen ergreifen. Weitere Informationen finden Sie unter Schädlingsnotizen: Borkenkäfer, Schädlingsnotizen: Clearwing Motten, und Schädlinge von Landschaftsbäumen und -sträuchern.

VERWALTUNG

Kulturelle und mechanische Kontrolle

Versorgen Sie Bäume mit der richtigen Kulturpflege und schützen Sie sie vor Verletzungen. Eine entsprechende Bewässerung ist besonders wichtig. Bäume vertragen ein paar Zimmermannswürmer besser, wenn sie kräftig gehalten werden.

Bei Verdacht auf einen starken Zimmermannswurmbefall lassen Sie die Bäume von einem qualifizierten Baumpfleger untersuchen. Wegen der starken Möglichkeit eines Gliedmaßenbruchs durch die Fraß des Zimmermanns sollten stark befallene Äste bis zum Ansatzpunkt entfernt werden. In einigen Fällen kann die Entfernung von Bäumen die beste Option sein.

Es ist möglich, die Larven zu töten, indem man einen langen, spitzen Draht in die einzelnen Galerien sticht, da eine Larve ihre Galerie nach außen offen hält. Diese Methode ist am praktischsten, wenn der Befall gering ist. Es ist jedoch schwer zu sagen, ob der Draht weit genug eingedrungen ist, um die Larve abzutöten. Um zu sehen, ob es nach dem Versuch, die Larve zu töten, weitere Larvenaktivität gibt, entfernen Sie jegliches Gras- und Sägemehlmaterial und markieren Sie die Galeriestelle mit einem Farbklecks. Überprüfen Sie die Website wöchentlich, um zu sehen, ob neues Fressmaterial ausgestoßen wurde. Wenn ja, ist die Larve noch am Leben.

Biologische und chemische Kontrolle

Eine sehr erfolgreiche Biokontrolloption ist die einmalige Behandlung der nützlichen Nematoden Steinernema Filziae oder S. carpocapsae. Während die Verwendung von Nematoden möglicherweise eine zusätzliche Überwachung und möglicherweise eine erneute Behandlung erfordert, können sie bei der Bekämpfung des Zimmermannswurmbefalls sehr wirksam sein.

Mit Ausnahme von Nematoden sind die verfügbaren Insektizide gegen Larven unter Rinde nicht wirksam. Alle anderen Sprays müssen auf Erwachsene gerichtet sein, und eine erfolgreiche Kontrolle ist schwer zu erreichen. Beobachten Sie die Baumrinde ab dem Spätwinter mindestens einmal pro Woche sorgfältig und besprühen Sie die Rinde dann umgehend mit einem Insektizid, das für die Stamm- und Rindenbehandlung gekennzeichnet ist, wenn die ersten neuen Puppenfälle erscheinen. Es gibt nur sehr wenige Pestizide, die für Zimmermannswürmer gekennzeichnet sind. Eigenheimbesitzer-Produkte, die eine Formulierung aus Carbaryl oder Permethrin enthalten, sind erhältlich und könnten eine gewisse Kontrolle der schlüpfenden und eierlegenden Erwachsenen bieten, wenn das Material in Gegenwart anfälliger Insekten angewendet wird. Aufgrund des verlängerten Lebenszyklus und der unterschiedlichen Entwicklungsraten der einzelnen Zimmermannswürmer ist es jedoch erforderlich, die Rinde und das erneute Besprühen in Abständen über einen Zeitraum von etwa 4 Jahren oder länger wiederholt zu untersuchen.

Besprühen Sie keine Bäume, es sei denn, umfassende Ressourcen, einschließlich verbesserter Kulturpflege und einer verbesserten Wachstumsumgebung, können langfristig bereitgestellt werden, um die Wahrscheinlichkeit eines erneuten Befalls mit Zimmermannswürmern zu verringern.

Nematodenanwendung

Tragen Sie Nematoden mit einem Quetschflaschen-Applikator oder einer 20-Unzen-Ölkanne in einer Konzentration von 1 Million oder mehr Nematoden pro Unze destilliertes Wasser auf. Zuerst den Tunneleingang von Gras befreien, dann die Auftragsdüse so weit wie möglich in jeden Stollen einführen. Injizieren Sie die Suspension, bis die Galerie gefüllt ist oder Flüssigkeit aus einem anderen Loch herausläuft, dann verschließen Sie die Eingänge mit Seilkitt oder Pfropfwachs. Rühren Sie den Applikator häufig, um die Nematoden in der Flüssigkeit suspendiert zu halten. Durch Zugabe von 2% rotem oder orangem Latexpigment können Sie behandelte Galerien markieren. Das gründliche Durchnässen der Rinde mit einem Nematodenspray ist bequemer als das Injizieren von Tunneln, aber das Sprühen ist wahrscheinlich weniger effektiv, da Nematoden auf trockenen Oberflächen sterben.

Nehmen Sie Nematodenanwendungen bei warmem Wetter (mindestens 60°F) im Frühjahr oder Herbst vor, wenn die Larven des Zimmermannswurms aktiv fressen. Anwendungen sind am effektivsten, wenn die Larvenöffnungen relativ groß und feucht sind. Da Licht und Hitze Nematoden abtöten, machen Sie Anwendungen am Abend, besonders in heißen Gegenden und sonnigen Standorten. Mit Nematoden infizierte Larven können etwa eine Woche lang weiter fressen und Frass aus ihren Tunneln verdrängen, bevor sie sterben.

Eine zweite Anwendung 1 bis 2 Wochen nach der ersten kann die Wahrscheinlichkeit erhöhen, dass sich die Zimmermannswurmlarven infizieren. Um die Wirksamkeit der Behandlung zu überprüfen, überprüfen Sie eine Woche nach der Anwendung, ob die Öffnung jeder Galerie noch verschlossen ist. Verschließen Sie alle geöffneten Öffnungen wieder und sprühen Sie die verstopften Öffnungen mit heller Farbe ein. Warten Sie eine weitere Woche und prüfen Sie, ob diese Stecker intakt sind. Wenn die Galerieöffnung nicht mehr mit Farbe bedeckt ist, ist die Larve nicht gestorben. Behandeln Sie die Galerie erneut.

Nematoden sind in Gartenversorgungszentren nicht allgemein erhältlich und müssen normalerweise per Post bestellt werden. Sie sind verderblich, also lagern Sie sie wie auf dem Etikett angegeben. Lieferanten und weitere Details zur Verwendung von Nematoden finden Sie unter http://oardc.osu.edu/nematodes/. Weitere Informationen zu Nematoden und deren Anwendung finden Sie auch in Schädlingsnotizen: Clearwing Motten.

VERWEISE

Dreistadt, S.H. 2004. Schädlinge von Landschaftsbäumen und -sträuchern, ein Leitfaden zum integrierten Schädlingsmanagement. 2. Aufl. Oakland: Univ. Kalif. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 3359.

Dreistadt, S.H. und E.J. Perry. April 2004. Schädlingsnotizen: Clearwing Motten. Oakland: Univ. Kalif. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 7477.

Johnson, W.T. und Lyon, H.H. 1991. Insekten, die sich von Bäumen und Sträuchern ernähren. 2. Aufl. Ithaka: Cornell Univ. Drücken Sie.

Seybold, S. J., T. D. Paine und S. H. Dreistadt. Nov. 2008. Schädlingsbefall: Borkenkäfer. Oakland: Univ. Kalif. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 7425.

INFORMATIONEN ZUR VERÖFFENTLICHUNG

Schädlingsnotizen: Zimmermannswurm
UC ANR-Publikation 74105

Autor: P. M. Geisel, Statewide Master Gardener Coordinator, UC Cooperative Extension

Produziert vom UC Statewide IPM Program, University of California, Davis, CA 95616

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Landesweites IPM-Programm, Landwirtschaft und natürliche Ressourcen, University of California
Alle Inhalte urheberrechtlich geschützt und kopiert 2019 The Regents of the University of California. Alle Rechte vorbehalten.


Von der Schönheit zum Biest oder vom hässlichen Entlein bis zum schönen Schwan zeigen Insekten einige erstaunliche Verwandlungen. Unten sind die Larven links neben ihren erwachsenen Formen rechts.

Moskito: Mückenlarven sind aquatisch und können in Teichen mit stillem Wasser und sogar in Pfützen gefunden werden, die sich aus Regen und schmelzendem Schnee bilden. Erwachsene weibliche Mücken haben spezielle Mundwerkzeuge, die verwendet werden, um sich vom Blut von Menschen und anderen Tieren zu ernähren. Sie essen Blut, um die Nährstoffe zu erhalten, die sie vor der Eiablage benötigen. Männliche Mücken ernähren sich von Pflanzen und Nektar anstelle von Blut.

Bienenfalke (Hemaris fuciformis): Wenn sie von Raubtieren angegriffen wird, würgt die scheinbar wehrlose Bienenschwärmerlarve eine klebrige giftige Substanz aus ihrem Darm auf ihren Angreifer. Der erwachsene Bienenschwärmer ist im Flug extrem schnell und wendig. Es ist in der Lage, an Ort und Stelle zu schweben, während es sich von Nektar von Blumen ernährt, und kann auch von einer Seite zur anderen schweben, um Raubtieren zu entkommen.

Libelle: Libellen verbringen den ersten Teil ihres Lebens unter Wasser in Teichen, Seen oder Bächen. Ihre Farben helfen ihnen, sich in die umliegenden Felsen und den Sand einzufügen. Erwachsene hingegen gibt es in vielen leuchtenden Farben wie dem Neon Skimmer (Libellula croceipennis) hier rechts zu sehen. Die Larven verschiedener Libellenarten sehen sich sehr ähnlich und sind oft sehr schwer zu identifizieren. Fotos von Pierre Deviche.

Blasse Büschelmotte (Calliteara pudibunda): Die Raupe der Büschelmotte kommt in zwei Formen vor, rot und gelb (hier abgebildet). Ihre Körper sind mit langen Haaren und weichen Stacheln bedeckt, die giftig sind und bei Berührung Hautausschläge verursachen können.

Marienkäfer: Sowohl Larven als auch ausgewachsene Marienkäfer machen eine Mahlzeit aus Blattläusen und anderen Insekten. Aus diesem Grund werden sie in der Regel von Landwirten begrüßt. Manche Leute züchten sogar Marienkäfer zum Verkauf an Gärtner als eine Form der Schädlingsbekämpfung, um andere Käfer zu fressen, die ihren Pflanzen schaden würden.

Königsmotte ( Citheronia regalis): Die Raupe der Regalmotte ist wegen ihres stacheligen Aussehens und der Hickory-Bäume, von denen sie sich ernährt, auch als Hickory-Hörteufel bekannt. Seine stacheligen Stacheln und sein wildes Aussehen helfen, Raubtiere abzuschrecken, aber es ist eigentlich ziemlich harmlos und beißt oder sticht nicht.

Bockkäfer (Prionus coriarius): Bockkäfer gehören zu einer großen Familie, die über 20.000 Käferarten umfasst, von denen die meisten sehr lange Antennen haben. Viele gelten aufgrund ihrer Ernährung, die aus Holz besteht, als Schädlinge. Ihre Essgewohnheiten können manchmal große Schäden an Bauholz, Häusern und lebenden Bäumen verursachen.

Honigbiene: Honigbienen leben in Kolonien, in denen viele Arbeiterinnen nach Nahrung suchen und sich um den Bienenstock kümmern. Larven wachsen in wabenförmigen Zellen, die von Arbeitsbienen gefüttert werden, und verlassen das Nest erst, wenn sie sich in ihre geflügelte erwachsene Form verwandelt haben.

Großer Tauchkäfer (Dytiscus marginalis): Sowohl die Larve als auch die erwachsene Form des großen Tauchkäfers sind aquatisch. Diese Riesenkäfer haben sehr starke Kiefer, mit denen sie Nahrung wie andere Insekten und manchmal sogar kleine Fische fangen. Erwachsene Tauchkäfer sind flugfähig und benutzen ihre Flügel, um an neue Orte zu gelangen.

Ziegenmotte (Kossus Kossus): Ziegenmottenlarven ernähren sich von Ästen und Holz und bohren beim Fressen mit ihren kräftigen Mundwerkzeugen Tunnel in die Baumstämme. Sie werden oft als Schädlinge angesehen, weil ihr großer Appetit den Obstbäumen, die sie essen, Schaden zufügt. Außerdem geben die Gelenke in ihren Mündern eine extrem stinkende Flüssigkeit ab. Diese Larven können bis zu vier Jahre brauchen, um zu reifen, bevor sie sich in ihre erwachsene Form verwandeln.

Tagpfauenauge (Inachis io): Die Raupe des Tagpfauenauges ist mit langen Stacheln bedeckt, um Raubtiere fernzuhalten. Die Unterseite des erwachsenen Tagpfauenauens ist Tarnbraun, um sich mit seiner Umgebung zu verschmelzen, wenn seine Flügel geschlossen sind. Wenn es bedroht wird, öffnet es seine Flügel, um helle, augenförmige Flecken zu enthüllen, und macht ein raschelndes Geräusch, indem es sie aneinander reibt. Es wird angenommen, dass dies Raubtiere abschrecken oder, wahrscheinlicher, Angriffe vom Hauptkörper ablenken könnte.

Zusätzliche Bilder über Wikimedia Commons. Bild von Clinton & Charles Roberston.


Zucht und Verhalten

Motten, Grillen, Heuschrecken, Fliegen und andere Insekten sind normalerweise die unglücklichen Empfänger unerwünschter Mantis-Aufmerksamkeit. Die Insekten fressen jedoch auch andere ihrer Art. Das bekannteste Beispiel dafür ist das berüchtigte Paarungsverhalten des erwachsenen Weibchens, das manchmal kurz nach oder sogar während der Paarung ihren Partner frisst. Doch dieses Verhalten scheint Männchen nicht von der Fortpflanzung abzuhalten.

Weibchen legen regelmäßig Hunderte von Eiern in eine kleine Kiste, und Nymphen schlüpfen, die wie winzige Versionen ihrer Eltern aussehen.


Wie man Schädlinge bekämpft

Die Uferfliege (rechts) hat einen robusteren Körper und kürzere Antennen als eine Pilzmücke (links).

Glänzende Spuren auf der Bodenoberfläche von Pilzmückenlarven.

Pilzmücken sind kleine Fliegen, die Erde, Blumenerde, andere Behältermedien und andere organische Zersetzungsquellen befallen. Ihre Larven ernähren sich hauptsächlich von Pilzen und organischem Material im Boden, aber auch Kauwurzeln und können in Gewächshäusern, Baumschulen, Topfpflanzen und Innenbepflanzungen zum Problem werden. Erwachsene Pilzmücken können aus Zimmerpflanzen in Innenräumen auftauchen und zu einem Ärgernis werden.

IDENTIFIKATION

Pilzmücken (Orfelia und Bradysie Arten), auch Dunkelflügelmücken (Sciaridae) genannt, sind dunkle, zart aussehende Fliegen, die im Aussehen Mücken ähneln. Erwachsene Pilzmücken haben schlanke Beine mit segmentierten Antennen, die länger als ihr Kopf sind. Ihre langen Fühler unterscheiden sie von den robusteren Uferfliegen, die auch in Gewächshäusern vorkommen, mit Algen und zersetzendem organischem Material in Verbindung gebracht werden, haben aber kurze borstenartige Fühler. Obwohl einige Arten bis zu 1&frasl2 Zoll lang sind, sind Pilzmücken-Erwachsene gewöhnlich etwa 1&frasl16 bis 1&frasl8 Zoll lang.Flügel sind hellgrau bis klar, und die gemeinsamen Bradysie Arten haben eine Y-förmige Flügelader.

Da ausgewachsene Pilzmücken von Licht angezogen werden, bemerken Sie möglicherweise zuerst, dass diese Schädlinge in Innenräumen in der Nähe von Fenstern fliegen. Im Vergleich zu aktiveren Arten wie der Stubenfliege (Musca Domestica), Pilzmücken sind relativ schwache Flieger und bewegen sich normalerweise viel in Innenräumen. Pilzmücken bleiben oft in der Nähe von Topfpflanzen und laufen über (oder ruhen auf) Kultursubstraten, Laub, Kompost und nassen Mulchhaufen.

Weibchen legen winzige Eier in feuchten organischen Abfällen oder Blumenerde. Larven haben einen glänzend schwarzen Kopf und einen länglichen, weißlichen bis klaren, beinlosen Körper. Sie fressen organischen Mulch, Blattschimmel, Grasschnitt, Kompost, Wurzelhaare und Pilze. Wenn die Bedingungen besonders feucht sind und Pilzmücken reichlich vorhanden sind, können Larven Schleimspuren auf der Oberfläche von Medien hinterlassen, die wie Spuren von kleinen Schnecken oder Nacktschnecken aussehen.

SCHADEN

Erwachsene Pilzmücken schädigen Pflanzen oder beißen Menschen, ihre Anwesenheit wird in erster Linie als lästig angesehen. Larven können jedoch, wenn sie in großer Zahl vorhanden sind, die Wurzeln schädigen und das Pflanzenwachstum hemmen, insbesondere bei Sämlingen und jungen Pflanzen. Erhebliche Wurzelschäden und sogar Pflanzensterben wurden in Innenpflanzenlandschaften und bei Zimmerpflanzen beobachtet, wenn hohe Populationen mit feuchtem, organisch-reichem Boden verbunden waren. So kann eine welke Zimmerpflanze nicht auf Wassermangel hinweisen, sondern eher auf Wurzelschäden durch Trauermückenlarven oder (häufiger) andere Ursachen für ungesunde Wurzeln. Viel häufigere Ursachen für welke Pflanzen sind jedoch zu viel oder zu wenig Wasser, Wurzelfäulnispilze und unsachgemäße Bodenbedingungen (z. B. schlechte Drainage oder Staunässe).

In Gewächshäusern, Baumschulen und Rasenfarmen kommt es häufiger zu ernsthaften Schäden durch Pilzmücken. Obwohl sich Larven auch im Freien von Pflanzenwurzeln ernähren, richten sie in der Regel keinen ernsthaften Schaden an.

LEBENSZYKLUS

Pilzmücken entwickeln sich durch vier Stadien, Larve (mit vier Larvenstadien oder -stadien), Puppe und Adult. Die winzigen Eier und länglichen Puppen kommen in feuchten organischen Medien vor, in denen Weibchen Eier legen und Larven fressen. Bei 75 °F schlüpfen die Eier in etwa 3 Tagen, die Larven brauchen etwa 10 Tage, um sich zu Puppen zu entwickeln, und etwa 4 Tage später schlüpfen die Erwachsenen. In etwa 17 Tagen kann je nach Temperatur eine Generation von Trauermücken (von Weibchen zu Weibchen) produziert werden. Je wärmer es ist, desto schneller entwickeln sie sich und desto mehr Generationen werden in einem Jahr produziert.

Pilzmücken haben jedes Jahr viele überlappende Generationen. Im Freien sind sie am häufigsten im Winter und Frühjahr im Landesinneren von Kalifornien zu finden, wenn Wasser besser verfügbar ist und kühlere Temperaturen vorherrschen. Sie können zu jeder Jahreszeit in feuchten Küstenregionen und in Innenräumen auftreten.

VERWALTUNG

Die meiste Zeit des Lebens der Pilzmücken wird als Larve und Puppe in organischem Material oder im Boden verbracht. Daher zielen die wirksamsten Bekämpfungsmethoden auf diese unreifen Stadien ab, anstatt zu versuchen, die mobilen, kurzlebigen Erwachsenen direkt zu kontrollieren. Taktiken des physischen und kulturellen Managements - in erster Linie die Reduzierung von überschüssiger Feuchtigkeit und organischer Ablagerungen - sind der Schlüssel zur Reduzierung von Mückenpilzproblemen. Kommerziell erhältliche und natürlich vorkommende biologische Bekämpfungsmittel können diesen Schädling ebenfalls bekämpfen. Insektizide gelten als wichtige Kontrolloption in einigen kommerziellen Pflanzenproduktionen, werden jedoch im Allgemeinen für die Bekämpfung von Mückenpilzen im und um das Haus herum empfohlen.

Überwachung

Bei Erwachsenen reicht in der Regel eine visuelle Inspektion aus, um festzustellen, ob ein Problem vorliegt. Sie werden Erwachsene sehen, die auf Pflanzen, Erde, Fenstern oder Wänden ruhen, oder Sie sehen sie im Flug. Suchen Sie nicht nur nach Erwachsenen, sondern überprüfen Sie auch Pflanzentöpfe auf übermäßig feuchte Bedingungen und organische Abfälle, an denen sich die Larven ernähren. Gelbe Klebefallen können verwendet werden, um Erwachsene zu fangen. Rohe Kartoffelstücke, die mit der Schnittseite nach unten in Töpfe gelegt werden (nicht die Schalen), werden manchmal zur Überwachung auf Larven verwendet.

Wasser- und Bodenmanagement

Da Trauermücken unter feuchten Bedingungen gedeihen, insbesondere dort, wo es eine Fülle von verrottender Vegetation und Pilzen gibt, vermeiden Sie Überwässerung und sorgen Sie für eine gute Drainage. Lassen Sie die Oberfläche der Behältererde zwischen den Bewässerungen trocknen. Reinigen Sie stehendes Wasser und beseitigen Sie Lecks in Rohrleitungen oder Bewässerungssystemen. Feuchter und verrottender Grasschnitt, Kompost, organischer Dünger und Mulch sind ebenfalls beliebte Brutplätze. Vermeiden Sie die Verwendung von unvollständig kompostiertem organischem Material in Blumenerde, es sei denn, es wird zuerst pasteurisiert, da es oft von Pilzmücken befallen wird. Verbessern Sie die Entwässerung der Vergussmasse (z. B. erhöhen Sie den Anteil an Perlit oder Sand in der Mischung). Minimieren Sie organische Ablagerungen in der Nähe von Gebäuden und Pflanzen. Vermeiden Sie das Düngen mit übermäßigen Mengen an Mist, Blutmehl oder ähnlichen organischen Materialien. Undichte Fenster und Türen abdichten und abdichten, um zu verhindern, dass Schädlinge ins Haus gelangen.

Wenn Sie befallene Pflanzen haben, verschieben Sie sie nicht in neue Bereiche, in denen Fliegen auftauchen können, um andere Töpfe zu befallen. In einigen Fällen möchten Sie möglicherweise stark befallene Pflanzen wegwerfen.

Kaufen und verwenden Sie nur pasteurisierte Behältermischungen oder Blumenerde. Kommerzielle Züchter behandeln Blumenerde oft mit Hitze oder Dampf, bevor sie sie verwenden. Dies tötet Fliegen und die Algen und Mikroorganismen, von denen sie sich ernähren. Hausgärtner können den Boden solarisieren:

  • Befeuchten Sie es.
  • Legen Sie es in eine Tüte aus transparentem Kunststoff oder schwarzem Kunststoff.
  • Machen Sie den Stapel nicht tiefer als etwa 8 Zoll.
  • Legen Sie die eingesackte Erde für etwa 4 bis 6 Wochen auf eine leicht erhöhte Fläche, z. B. eine Palette an einem sonnigen Standort.

Siehe die Schädlingsnotiz: Bodensolarisation für Details. Bewahren Sie pasteurisierte Blumenerde außerhalb des Bodens und in geschlossenen Behältern auf, um einen Befall vor der Verwendung zu verhindern.

Einfangen

In häuslichen Situationen, in denen erwachsene Mückenpilze lästig sind, kann das Problem möglicherweise durch die Verwendung von Klebefallen, die in Baumschulen und Gartencentern erhältlich sind, verringert werden. Gelbe Klebefallen können in kleinere Quadrate geschnitten, an Holzspießen oder Stöcken befestigt und in Töpfe gelegt werden, um Erwachsene zu fangen. Auch rohe Kartoffelstücke, die in den Boden gelegt werden, sind für Pilzmückenlarven sehr attraktiv. Diese können nicht nur verwendet werden, um Töpfe auf Larven zu überprüfen, sondern sie auch von Pflanzenwurzeln fernzuhalten. Nach ein paar Tagen in einem Topf befallene Brocken entfernen, entsorgen und durch frische ersetzen.

Biologische Kontrolle

Zur Bekämpfung von Mückenpilzen in Töpfen oder Containermedien können drei kommerziell erhältliche biologische Bekämpfungsmittel erworben werden (Tabelle 1). Diese beinhalten Steinernema Nematoden, Hypoaspis Raubmilben und das biologische Insektizid Bacillus thuringiensis Unterart israelensis (Bti). Mehrere Bti-Produkte (Mosquito Bits, Gnatrol) sind in Gärtnereien und Gartencentern leicht erhältlich, so dass diese Produkte für Heimgärtner am bequemsten zu verwenden sind. Bti reproduziert oder persistiert in Innenräumen nicht, daher kann ein Befall in Topfmedien wiederholte Anwendungen in etwa fünftägigen Intervallen erfordern, um die Kontrolle zu gewährleisten. Nematoden und Hypoaspis Milben müssen per Post bestellt werden und sind lebende und verderbliche Produkte, die eine sofortige Anwendung erfordern. Nematoden können Pilzmückenlarven relativ langfristig bekämpfen und können sich nach mehreren Impfapplikationen zur Etablierung ihrer Populationen selbst reproduzieren. Steinernema Filziae ist wirksamer gegen Mückenpilze als andere kommerziell erhältliche Nematodenarten. Bti oder Nematoden mit Wasser mischen und als Bodentränkung auftragen oder mit einer Handpumpen-Sprühflasche oder einem anderen Sprühgerät nach den Anweisungen auf dem Etikett auf das Medium sprühen.

Mehrere natürliche Feinde helfen bei der Bekämpfung von Mückenpilzpopulationen in Freilandsystemen wie Landschaften und Gärten und in Innenräumen in Gewächshäusern und Wintergärten, einschließlich der räuberischen Jägerfliegen, Coenosia spp. Diese Fliegen fangen und verzehren erwachsene Pilzmücken in der Luft und jagen Pilzmückenlarven im Boden, während sie sich selbst als Larven entwickeln. Bewahren Sie diese und andere natürliche Feinde, indem Sie Breitband-Insektizidanwendungen vermeiden.

Tabelle 1. Kommerziell erhältliche biologische Pestizide und natürliche Feinde zur Bekämpfung von Pilzmückenlarven.
Biologisch Kommentare
Bacillus thuringiensis Unterart israelensis (Bti) (Gnatrol) Ein natürlich vorkommendes, sporenbildendes Bakterium, das kommerziell durch Fermentation hergestellt wird. Bti, das in den angegebenen Mengen angewendet wird, bietet eine vorübergehende Kontrolle und ist nur für Fliegenlarven wie Mücken, Kriebelmücken und Trauermücken giftig. Zur Langzeitkontrolle sind häufig wiederholte Anwendungen erforderlich. Diese Bt ist eine andere Unterart als die, die auf Laub angewendet wird, um Raupen zu kontrollieren. Für Raupen markiertes Bt ist gegen Fliegenlarven nicht wirksam.
Hypoaspis (=Geolaelaps oder Stratiolaelaps) Meilen Eine hellbraune Raubmilbe, die sich an die Nahrungsaufnahme in den oberen feuchten Bodenschichten angepasst hat. Beutet auf Pilzmückenlarven und -puppen, Thripspuppen, Springschwänze und andere kleine Wirbellose. Kommerzielle Milben werden üblicherweise in einem Schüttelbehälter versandt, der verwendet wird, um sie auszubringen. Empfohlene Raten in kommerziellen Baumschulen sind etwa 1/2 bis mehrere Dutzend Milben pro Behälter oder Quadratmeter Medium. Machen Sie Anwendungen, bevor Schädlinge reichlich vorhanden sind. Hypoaspis wahrscheinlich hat sich sehr gut in einzelnen Zimmerpflanzen bewährt und ist wahrscheinlich keine gute Wahl für den Einsatz in Haushalten.
Steinernema Filziae Dieser Nematode ist wirksam, wenn die Temperaturen zwischen 60 und 90 °F liegen und die Bedingungen feucht sind. Sie können es als Bodentränkung und auf Medien mit herkömmlichen Spritzgeräten auftragen. Nematoden reproduzieren sich und suchen aktiv nach Wirten, sodass sie unter feuchten Bedingungen nach mehreren anfänglichen Anwendungen zur Etablierung von Populationen eine ganzjährige Kontrolle bieten können.
Diese Materialien sind für den Menschen im Wesentlichen ungiftig und für die Anwendung in Kombination verträglich. Bt ist in vielen gut sortierten Gärtnereien und Gartenfachgeschäften erhältlich. Raubmilben, Bti und Nematoden sind im Handel über den Versandhandel von speziellen Lieferanten erhältlich.

Chemische Kontrolle

Insektizide sind selten gerechtfertigt, um diese Fliegen in und um Häuser zu bekämpfen. Wenn Sie jedoch ein Insektizid gegen Trauermücken anwenden, ziehen Sie die Verwendung von Bti oder . in Betracht Steinernema Filziae Nematoden zur Bekämpfung der Larven siehe Abschnitt Biologische Bekämpfung für weitere Informationen.

Wenn Bti oder Nematoden nicht verfügbar sind und hohe Populationen nicht tolerierbar sind, können Pyrethrine oder ein Pyrethroid-Insektizid eine vorübergehende, schnell wirkende Bekämpfung bewirken. Besprühen Sie die Oberfläche von Blumenerde und Pflanzenteilen, wo sich Erwachsene normalerweise ausruhen. Benebeln Sie in Innenräumen nicht aus der Luft und versuchen Sie nicht, erwachsene Mücken im Flug zu besprühen. Stellen Sie sicher, dass das Produkt für Ihre spezielle Verwendung gekennzeichnet ist (z. B. für "Zimmerpflanzen") und lesen und befolgen Sie die Anweisungen des Produkts.

Pyrethrine haben eine geringe Toxizität für Menschen und Haustiere und sind die Wirkstoffe im botanischen Pyrethrum, das aus Blüten bestimmter Chrysanthemen gewonnen wird. Viele Produkte enthalten einen aus Erdöl gewonnenen Synergisten (Piperonylbutoxid oder PBO), um die Wirksamkeit von Pyrethrum zu erhöhen. Pyrethroide (z. B. Bifenthrin, Permethrin) werden aus Erdöl synthetisiert, um den Pyrethrinen chemisch ähnlich zu sein. Sie sind oft wirksamer und beständiger, aber für nützliche Insekten giftiger. Wenn Sie diese Produkte auf Zimmerpflanzen oder Innenbehältern anwenden, bringen Sie Pflanzen zur Behandlung nach Möglichkeit vorsichtshalber ins Freie und warten Sie nach dem Auftragen der Chemikalie etwa einen Tag, bevor Sie sie wieder ins Haus bringen.

Informationen zum Umgang mit Mückenpilzen in kommerziellen Blumen-, Gärtnereien- oder Gewächshausbetrieben finden Sie im UC IPM-Richtlinien zur Schädlingsbekämpfung: Blumenzucht und Zierpflanzenschulen und das buch Integriertes Schädlingsmanagement für Blumenzucht und Baumschulen.

ANGEPASST VON

Dreistadt, S. H. 2001 Schädlingsnotiz: Pilzmücken, Uferfliegen, Mottenfliegen und Märzfliegen. Oakland: Univ. Kalif. Div. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 7448.

VERWEISE

Cloyd, R. A. 2010. Pilzmückenmanagement in Gewächshäusern und Baumschulen (PDF) . Kansas State University Landwirtschaftliche Experimentierstation und kooperativer Erweiterungsdienst. Publikation MF-2937:

Dreistadt, S.H. rev. 1986. Pilzmücken und Märzfliegen. Oakland: Univ. Kalif. Div. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 7051.

Dreistadt, S.H., J.K. Clark und M.L. Flint. 2001. Integriertes Schädlingsmanagement für Blumenzucht und Baumschulen. Oakland: Univ. Kalif. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 3402.

Harris, M. A., R. D. Oetting und W. A. ​​Gardner. 1995. Verwendung entomopathogener Nematoden und eine neue Überwachungstechnik zur Bekämpfung von Mückenpilzen, Bradysia coprophila (Dipt.: Sciaridae), in der Blumenzucht. Biologische Kontrolle 5:412-418.

UC IPM-Richtlinien zur Schädlingsbekämpfung: Blumenzucht und Zierpflanzenschulen. Oakland: Univ. Kalif. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 3392.

Nielsen, G. R. 1997. Pilzmücken. Abteilung für Pflanzen- und Bodenkunde, Erweiterung der Universität von Vermont. Publikation EL 50:

Stapleton, J. J. C. A. Wilen und R. H. Molinar. Schädlingsnotizen: Bodensolarisation. Oakland: Univ. Kalif. Agrar. Nat. Res. Veröffentlichung 7441.

Wright, E.M. und R.J. Chambers. 1994. Die Biologie der Raubmilbe Hypoaspis-Meilen (Acari: Laelapidae), ein potenzielles biologisches Bekämpfungsmittel von Bradysia paupera (Dipt.: Sciaridae). Entomophage 39:225-235.

INFORMATIONEN ZUR VERÖFFENTLICHUNG

Schädlingsnotizen: Pilzmücken

Autoren:
  • J. A. Bethke, UC Cooperative Extension, San Diego Co
  • S. H. Dreistadt, UC Statewide IPM Program, Davis

Produziert vom landesweiten IPM-Programm der University of California

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Landesweites IPM-Programm, Landwirtschaft und natürliche Ressourcen, University of California
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Ergänzende Referenzen

Albajes, R., M. L. Gullino, J. C. van Lenteren und Y. Elad [Hrsg.]. 1999. Integriertes Schädlings- und Krankheitsmanagement in Gewächshauskulturen. Kluwer Academic Publishers, Niederlande.

Cloyd, R.A. 2016. Schädlingsbekämpfung im Gewächshaus. CRC-Presse. 198 Seiten

Cranshaw, W und D. Shetlar. 2018. Garteninsekten in Nordamerika: der ultimative Leitfaden für Hinterhofwanzen. Princeton University Press. 2. Auflage. 704 S.

Dreistadt, S.H. 2001. Integrierte Schädlingsbekämpfung für Zierpflanzen und Baumschulen. University of California, landesweites integriertes Schädlingsbekämpfungsprojekt, Abteilung für Landwirtschaft und natürliche Ressourcen. Veröffentlichung 3402.

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Gewächshaus Scout&Trade Cornell University (ITunes)
Fasst Informationen zur biologischen Bekämpfung von häufigen Gewächshausinsektenschädlingen und eine interaktive Schnittstelle zum Sammeln, Organisieren und Präsentieren von Erkundungsdaten und Produktanwendungen für das Insektenmanagement zusammen.

Thomas, C. 2005. Gewächshaus-IPM mit Schwerpunkt auf Biokontrollen. Veröffentlichungsnummer AGRS-96. Pennsylvania Integrated Pest Management Program, Pennsylvania Department of Agriculture, und Pennsylvania State University, University Park, PA. Online bestellen unter: https://extension.psu.edu/greenhouse-ipm-with-an-emphasis-on-biocontrols

Tabelle B4: Pestizidregistrierung und Toxizität

Diese Tabelle enthält EPA-Registrierungsnummern für die in Neuengland am häufigsten vermarkteten Pestizide. Nicht alle Produkte der Hersteller sind aufgeführt. Etiketteninformationen können sich ändern. Wenn Sie ein Pestizid anwenden, überprüfen Sie das Produktetikett für die EPA-Registrierungsnummer für Ihre Aufzeichnungen und für die Pflanzenregistrierung, das Wiedereintrittsintervall und die empfohlenen Raten.

z Nummer und Buchstabe des Insecticide Resistance Action Committee (IRAC) weisen darauf hin, dass Produkte mit derselben Nummer und demselben Buchstaben (auch bekannt als Resistenzgruppe) einen gemeinsamen Wirkmechanismus haben. Diese Klassifizierung basiert auf den Richtlinien unter https://irac-online.org/ . Wählen Sie für mehrere Anwendungen auf eine Kultur Produkte aus verschiedenen resistenten Gruppen aus. Weitere Informationen zu IRAC-Gruppen finden Sie in Tabelle B-5 (Klassifizierung der Wirkungsweise (MoA)). Produkte ohne Resistenzgruppencode wurden vom IRAC nicht klassifiziert.

y Toxizität: C= Vorsicht W=Warnung D=Gefahr

w Dieses Produkt ist für die Anwendung auf essbaren Pflanzen oder biologisch zertifizierter Produktion gekennzeichnet. Siehe Etiketten oder ergänzende Etiketten für eine spezifische Liste von Kulturen und Anwendungen.

v REI = Wiedereintrittsintervall in Stunden. Siehe Etiketten für Details.

Generische Pestizide: Die Liste der Produkte in dieser Tabelle ist keine vollständige Liste und enthält möglicherweise nicht alle generischen Pestizide oder andere zur Verwendung im Gewächshaus verfügbare. Generische Pestizide sind im Allgemeinen patentfreie Versionen eines Marken-Pestizids. Züchter werden viel mehr Produkte auf dem Markt sehen, wenn Pestizidpatente auslaufen, was die Auswahl eines Pestizids sehr verwirrend machen kann. Teilweise existieren viele Produkte mit den gleichen Wirkstoffen wie Insektizide und Mitizide, die Imidacloprid, Abamectin, Bifenthrin, Permethrin und Acephat enthalten. Lesen Sie die Etiketten sorgfältig durch, da es ähnlich benannte Produkte gibt, die möglicherweise nicht im Gewächshaus verwendet werden oder die im Vergleich zum Markenprodukt leicht unterschiedliche Wirkstoffkonzentrationen aufweisen.

Tabelle B&ndash5: Einstufung des Wirkungsmechanismus (MoA)

Wirkungsweise* IRAC
**
Materialien zur Schädlingsbekämpfung
Handelsname (gebräuchlicher Name)
Typ
***
Schädlingsaktivität (basierend auf dem Etikett)****
APH KATZE FG LM MB SF SM NS WF
Acetylcholin-Esterase-Hemmer 1A Mesurol (Methiocarb) C x x x
Acetylcholin-Esterase-Hemmer 1B Orthen (Acephat) C, S, T x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A Talstar (Bifenthrin) C x x x x x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A Zehnkampf (Cyfluthrin) C x x x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A Zahm (Fenpropathrin) C x x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A Mavrik (Tau-Fluvalinat) C x x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A Krummsäbel (Lambda-Cyhalothrin) C x x x x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A Astro (Permethrin) C x x x x x x
Verlängern Sie die Öffnung von Natriumkanälen 3A PyGanic (Pyrethrine) C x x x x x x x x x
Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Modulatoren 4A TriStar (Acetamiprid) C, S, T x x x x x x x
Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Modulatoren 4A Safari (Dinotefuran) C, S, T x x x x x x
Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Modulatoren 4A Marathon (Imidacloprid) C, S, T x x x x x x
Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Modulatoren 4A Flaggschiff (Thiamethoxam) C, S, T x x x x x x
Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Modulatoren 4D Altus (Flupyradifuron) C, S, T x x x x x
Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Disruptor-Agonisten und GABA-Chlorid-Kanal-Aktivator 5 Konservieren (Spinosad) C, ich, T x x x x
GABA-Chloridkanal-Aktivatoren 6 Avid (Abamectin) C, T x x x x x
Nachahmung des Jugendhormons 7A Enstar AQ (Kinoprene) C x x x x x
Nachahmung des Jugendhormons 7C Distanz/Drehpunkt (Pyriproxyfen) C, T x x x x x x
Blocker der selektiven Ernährung/TRPV-Kanalmodulatoren für Chordotonalorgane 9B Bemühen (Pymetrozin) C, ich, T x x
Blocker der selektiven Ernährung/TRPV-Kanalmodulatoren für Chordotonalorgane 9B Rycar (Pyrifluquinazon) C, ich, T x x x
Blocker der selektiven Ernährung/TRPV-Kanalmodulatoren für Chordotonalorgane 9D Ventigra (Afidopropen) C, ich, T x
wth und Embryogenese-Hemmer 10 A Novato (Clofentezin) C x
wth und Embryogenese-Hemmer 10 A Hexygon (Hexythiazox) C x
wth und Embryogenese-Hemmer 10B TetraSan (Etoxazol) C, T x
Disruptoren der Mitteldarmmembranen von Insekten 11A Gnatrol (Bacillus thuringiensis subsp. israelensis) ich x
Disruptoren der Mitteldarmmembranen von Insekten 11A Dipel (Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki) ich x
Oxidative Phosphorylierungsentkoppler 13 Pylon (Chlorfenapyr) C, T x x x x
Chitinsynthesehemmer 15 Adept (Diflubenzuron) C x x x x x
Chitinsynthesehemmer 15 Sockel (Novaluron) C, T x x x x
Chitinsynthesehemmer 16 Talus (Buprofezin) C x x
Chitinsynthesehemmer 17 Zitat (Cyromazin) C x x x
Ecdyson-Agonisten 18 Intrepid 2F (Methoxyfenozid) ich x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 20B Shuttle O (Acequinocyl) C x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 20D Floramite SC (Bifenazat) C x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 21A Magus (Fenazaquin) C x x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 21A Akari (Fenpyroximat) C x x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 21A Sanmite SC (Pyridaben) C x x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 21A Hachi-Hachi SC (Tolfenpyrad) C x x x x x
Mitochondriale Elektronentransportinhibitoren 25 Sultan (Cyflumetofen) C x
Lipidbiosynthesehemmer 23 Savate (spiromesifen) C, T x x
Hemmstoffe der Lipidbiosynthese 23 Kontos (Spirotetramat) C, S, T x x x x x
Selektive Aktivierung von Ryanodin-Rezeptoren 28 Zugfeder GNL (Cyantranilprol) C, S, T x x x x x
Selektive Aktivierung von Ryanodinrezeptoren 28 Acelepryn (Chlorantraniliprol) C, S, T x
Selektive Aktivierung von Ryanodinrezeptoren 28 Sarisa (Cyclaniliprol) C, S, T x x x x x x
Selektiver Ernährungsblocker/Chordotonaler Organmodulator 29 Arie (Flonicamid) C, S, T x x x x
Exsikkatoren oder Membrandisruptoren M-Pede (Kaliumsalze von Fettsäuren) C x x x x x
Exsikkatoren oder Membrandisruptoren Triact (geklärter hydrophober Extrakt aus Neemöl) C x x x x
Exsikkatoren oder Membrandisruptoren Ultra-Pure Oil/SuffOil-X (Mineralöl) C x x x x x x x
Nicht klassifiziert von IRAC Ancora (Isaria fumosoroseus) C x x x x x x
Nicht klassifiziert von IRAC Azatin/Molt X (Azadirachtin) C x x x x x x x x
Nicht klassifiziert von IRAC BotaniGard ES/Mycotrol ESO (Beauveria bassiana) C x x x x x
Nicht klassifiziert von IRAC Grandevo (Chromobacterium subtsugae) C x x x x x
Nicht klassifiziert von IRAC Erfüllt 52 (Metarhizium brunneum) C x x x
Nicht klassifiziert von IRAC Ouvertüre (Pyridalyl) C, ich, T x x
Nicht klassifiziert von IRAC Verehren (Burkholderia spp. Stamm A396) C, ich x x x x x
Mehrere Aktionsmodi 5 + 4C XXpire (Spinetoram + Sulfoxaflor) C,S,T x x x x x x
Mehrere Aktionsmodi 28 + 29 Pradia (Cyclaniliprol + Flonicamid) C,S,T x x x x x x

* Wirkungsweisen. Weitere Informationen finden Sie auf der IRAC-Website: www.irac-online.org

Gruppe 1 (Acetylcholin-Esterase-Hemmer): Hemmt das Enzym Cholinesterase (ChE) daran, den Acetylcholin (ACh)-Transmitter zu löschen. Dies verhindert die Beendigung der Nervenimpulsübertragung und führt zu einer Ansammlung von Acetylcholin, die zu Hyperaktivität, Atemversagen, Erschöpfung der Stoffwechselenergie und Tod führt.

Gruppe 3 (Natriumkanalblocker): Destabilisieren die Nervenzellmembranen, indem sie an den Natriumkanälen im peripheren und zentralen Nervensystem arbeiten, die den Verschluss verlangsamen oder verhindern. Dies führt dazu, dass die Nervenzellen stimuliert werden, sich wiederholende Entladungen zu produzieren, was schließlich zu Lähmung und Tod führt.

Gruppe 4 (Nikotinische Acetylcholinrezeptor-Disruptoren): Wirken auf das Zentralnervensystem und verursachen eine irreversible Blockierung der postsynaptischen nikotinergen Acetylcholinrezeptoren, was zu einer Unterbrechung der Nervenübertragung und unkontrollierten Nervenfeuern führt. Dies führt zu schnellen Pulsen durch einen stetigen Natriumzufluss, was zu Übererregung, Krämpfen, Lähmung und Tod führt.

Gruppe 5 (Nikotinsäure-Acetylcholin-Rezeptor-Agonisten): Unterbrechen die Bindung von Acetylcholin an nikotinergen Acetylcholin-Rezeptoren, die sich an den postsynaptischen Zellverbindungen befinden, und wirken sich negativ auf die Gamma-Aminobuttersäure (GABA)-gesteuerten Ionenkanäle aus.

Gruppe 6 (GABA Chloride Channel Activators): Beeinflussen die von Gamma-Aminobuttersäure (GABA) abhängigen Chloridionenkanäle, indem sie die Membranpermeabilität für Chloridionen erhöhen, was zu einer Hemmung der Nervenübertragung, Lähmung und Tod führt.

Gruppe 7 (Juvenile Hormone Mimics): Hemmt die Entwicklung, indem Insekten in einem jungen oder unreifen Stadium verbleiben, hauptsächlich durch Hemmung der Metamorphose oder Formänderung. Dadurch können Insekten ihren Lebenszyklus nicht abschließen.

Gruppe 9 (Selective Feeding Blockers): Hemmen das Fressverhalten von Insekten, indem sie die neuronale Regulation der Flüssigkeitsaufnahme in den Mundwerkzeugen stören.

Gruppe 10 (Wachstums- und Embryogenese-Hemmer): Unterbrechen die Bildung des Embryos während der Entwicklung oder hemmen die Larvenreifung. Die spezifische Wirkungsweise und der Zielort der Wirkung sind jedoch noch nicht bekannt.

Gruppe 11 (Disruptoren der Mitteldarmmembranen von Insekten): Binden an spezifische Rezeptorstellen auf dem Darmepithel, was zum Abbau der Darmschleimhaut und schließlich zum Verhungern des Insekts führt. Kristalle setzen Proteintoxine (Endotoxine) frei, die an die Rezeptorstellen der Mitteldarmmembran binden und Poren oder Kanäle bilden. Dies lähmt das Verdauungssystem und reißt die Zellwände des Mitteldarms auf, wodurch Ionen durch die Poren fließen können, wodurch das Kalium- und pH-Gleichgewicht gestört wird. Infolgedessen gelangt der alkalische Inhalt des Darms ins Blut, was zu Darmlähmung und zum Tod führt.

Gruppe 13 (Oxidative Phosphorylierungsentkoppler): Hemmen die oxidative Phosphorylierung an der Stelle der Dinitrophenol-Entkopplung, die die Bildung oder Synthese von Adenosintriphosphat (ATP) stört.

Gruppen 15, 16 und 17 (Chitinsynthesehemmer): Hemmen die Bildung von Chitin, einem wesentlichen Bestandteil des Exoskeletts von Insekten, das die Festigkeit und Elastizität der Nagelhaut beeinflusst. Insekten sterben während der Häutung von einem Lebensstadium zum nächsten.

Gruppe 18 (Ecdyson-Rezeptor): Starke Beweise zeigen, dass die Wirkung dieses Hormons für die insektizide Wirkung verantwortlich ist.

Gruppen 20, 21 und 25 (Mitochondrien-Elektronentransport-Inhibitoren): Hemmen den Elektronentransport von Komplex (Stelle) I oder wirken auf die NADH-CoQ-Reduktase-Stelle oder binden an das Qo-Zentrum von Komplex III in den Mitochondrien, wodurch die Energieproduktion reduziert wird, indem die Synthese von Adenosintriphosphat (ATP) verhindert wird. .

Gruppe 23 (Lipid-Biosynthese-Inhibitoren): Blockieren die Produktion von Lipiden, einer Gruppe von Verbindungen aus Kohlenstoff und Wasserstoff, einschließlich Fettsäuren, Ölen und Wachsen. Unterbricht Zellmembranstrukturen und reduziert Energiequellen.

Gruppe 28 (Ryanodin-Rezeptor-Modulatoren): Unterbrechen die Nerven- und Muskeltätigkeit.

Gruppe 29 (Chordotonale Organmodulatoren): Unterbrechen Sie die Nerventätigkeit.

Austrocknung oder Membrandisruptoren: Beschädigen Sie die wachsartige Schicht des Exoskeletts von Insekten und Milben mit weichem Körper, indem Sie das Chitin so verändern, dass es keine Flüssigkeiten aufnehmen kann, die zur Austrocknung führen, oder Insekten ersticken, indem Sie ihre Atemporen (Spirakeln) abdecken.

** IRAC-Bezeichnung (Insecticide Resistance Action Committee), die auf vielen Produktetiketten erscheint.


Inhalt

Mitglieder der Collembola sind normalerweise weniger als 6 mm (0,24 Zoll) lang, haben sechs oder weniger Bauchsegmente und besitzen ein röhrenförmiges Anhängsel (das Kollophor oder die ventrale Röhre) mit reversiblen, klebrigen Bläschen, die ventral aus dem ersten Bauchsegment herausragen. [10] Es wird angenommen, dass es mit der Flüssigkeitsaufnahme und dem Gleichgewicht, der Ausscheidung und der Orientierung des Organismus selbst verbunden ist. [11] Die meisten Arten haben einen abdominalen, schwanzartigen Anhängsel, der als Furcula bekannt ist. Es befindet sich auf dem vierten Abdominalsegment der Collembolane und ist unter dem Körper gefaltet und wird von einer kleinen Struktur namens Retinaculum (oder Tenaculum) unter Spannung gehalten. Beim Loslassen schnappt es gegen das Substrat, schleudert den Springschwanz in die Luft und ermöglicht ein schnelles Ausweichen und Wandern. All dies geschieht in nur 18 Millisekunden. [12] [11]

Springschwänze besitzen auch die Fähigkeit, ihre Körpergröße durch nachfolgende Ecdysen (Häutung) um bis zu 30% zu reduzieren, wenn die Temperaturen hoch genug ansteigen. Die Schrumpfung ist genetisch gesteuert. Da wärmere Bedingungen den Stoffwechsel und den Energiebedarf der Organismen erhöhen, ist die Verringerung der Körpergröße vorteilhaft für ihr Überleben. [13]

Poduromorpha und Entomobryomorpha haben einen länglichen Körper, während Symphypleona und Neelipleona einen kugeligen Körper haben. Collembola fehlt ein tracheales Atmungssystem, das sie zwingt, durch eine poröse Kutikula zu atmen, mit der bemerkenswerten Ausnahme der Sminthuridae, die ein rudimentäres, wenn auch voll funktionsfähiges Trachealsystem aufweisen. [10] Die zwischen verschiedenen Arten vorhandene anatomische Varianz hängt teilweise von der Bodenmorphologie und -zusammensetzung ab. Oberflächenbewohner sind im Allgemeinen größer, haben dunklere Pigmente, haben längere Antennen und funktionierende Furcula. Unterirdische Bewohner sind normalerweise unpigmentiert, haben einen verlängerten Körper und eine reduzierte Furcula. Sie können je nach Bodenzusammensetzung und Tiefe in vier Hauptformen eingeteilt werden: atmobiotisch, epädaphisch, hemiedaphisch und euedaphisch. Atmobiotische Arten bewohnen Makrophyten und Streuoberflächen. Sie sind im Allgemeinen 8-10 Millimeter lang, pigmentiert, haben lange Gliedmaßen und einen vollständigen Satz von Ocellen (Photorezeptoren). Epedaphische Arten bewohnen obere Streuschichten und umgestürzte Baumstämme. Sie sind etwas kleiner und haben weniger ausgeprägte Pigmente sowie weniger entwickelte Gliedmaßen und Ocellen als die atmobiotischen Arten. Hemiedaphische Arten bewohnen die unteren Streuschichten des sich zersetzenden organischen Materials. Sie sind 1-2 Millimeter lang, haben eine verteilte Pigmentierung, verkürzte Gliedmaßen und eine reduzierte Anzahl von Ocellen. Euedaphische Arten bewohnen obere Mineralschichten, die als Humushorizont bekannt sind. Sie sind kleiner als hemiedaphische Arten, haben weiche, längliche Körper ohne Pigmentierung und Ocellen und haben eine reduzierte oder fehlende Furca. [14] [15] [16]

Poduromorphs bewohnen die epedaphischen, hemiedaphischen und euedaphischen Schichten und zeichnen sich durch ihre länglichen Körper und auffällige Segmentierung aus – drei Brustsegmente, sechs Bauchsegmente und einen Prothorax. [16]

Der Verdauungstrakt von Collembolan-Arten besteht aus drei Hauptkomponenten: dem Vorderdarm, Mitteldarm und Hinterdarm. Der Mitteldarm ist von einem Muskelnetz umgeben und von einer Monoschicht aus säulenförmigen oder quaderförmigen Zellen ausgekleidet. Seine Funktion besteht darin, Nahrung durch Kontraktion vom Lumen in den Enddarm zu mischen und zu transportieren. Viele Arten von syntrophen Bakterien, Archaeen und Pilzen sind im Lumen vorhanden. Diese verschiedenen Verdauungsregionen haben unterschiedliche pH-Werte, um spezifische enzymatische Aktivitäten und mikrobielle Populationen zu unterstützen. Der vordere Teil des Mitteldarms und des Hinterdarms ist leicht sauer (mit einem pH-Wert von etwa 6,0), während der hintere Mitteldarmteil leicht alkalisch ist (mit einem pH-Wert von etwa 8,0). Zwischen Mitteldarm und Hinterdarm befindet sich ein Verdauungskanal, der als Pylorusregion bezeichnet wird und ein muskulöser Schließmuskel ist. [11]

Traditionell wurden die Springschwänze in die Ordnungen Arthropleona, Symphypleona und gelegentlich auch Neelipleona eingeteilt. Die Arthropleona wurden in zwei Überfamilien unterteilt, die Entomobryoidea und die Poduroidea. Neuere phylogenetische Studien zeigen jedoch, dass Arthropleona paraphyletisch ist. [17] [18] [19] So werden die Arthropleona in modernen Klassifikationen abgeschafft, und ihre Überfamilien werden entsprechend im Rang angehoben, die jetzt Entomobryomorpha und Poduromorpha sind. Technisch gesehen sind die Arthropleona somit ein teilweises Junior-Synonym der Collembola. [20]

Der Begriff "Neopleona" ist im Wesentlichen gleichbedeutend mit Symphypleona + Neelipleona. [21] Die Neelipleona wurde ursprünglich als eine besonders fortgeschrittene Linie von Symphypleona gesehen, basierend auf der gemeinsamen globalen Körperform, aber der globale Körper der Neelipleona ist auf eine völlig andere Weise realisiert als bei Symphypleona. Später wurden die Neelipleona als von den Entomobryomorpha abgeleitet betrachtet. Die Analyse von 18S- und 28S-rRNA-Sequenzdaten legt jedoch nahe, dass sie die älteste Abstammungslinie von Springschwänzen bilden, was ihre eigentümlichen Apomorphien erklären würde. [8] Diese phylogenetische Verwandtschaft wurde auch durch eine Phylogenie basierend auf mtDNA [18] und Gesamtgenomdaten bestätigt. [19]

Die neueste Phylogenie des gesamten Genoms, die vier Ordnungen von Collembolen unterstützt: [19]

Springschwänze sind seit dem frühen Devon bezeugt. [22] Das Fossil vor 400 Millionen Jahren, Rhyniella praecursor, ist der älteste terrestrische Arthropode und wurde im berühmten Rhynie Chert of Scotland gefunden. Da ihre Morphologie sehr stark an existierende Arten erinnert, kann die Strahlung der Hexapoda im Silur vor 420 Millionen Jahren oder mehr lokalisiert werden. [23] Zusätzliche Forschungen zu den Koprolithen (versteinerten Fäkalien) der alten Collembolen ermöglichten es den Forschern, ihre Abstammung um etwa 412 Millionen Jahre zurückzuverfolgen. [11]

Fossile Collembolen sind selten. Stattdessen sind die meisten in Bernstein zu finden. [24] Auch diese sind selten und viele Bernsteinvorkommen enthalten nur wenige oder keine Collembolen. Die besten Vorkommen stammen aus dem frühen Eozän Kanadas und Europas, [25] dem Miozän Mittelamerikas [26] und der mittleren Kreide von Burma und Kanada. [27] Sie weisen einige ungeklärte Merkmale auf: Erstens gehören alle Fossilien aus der Kreidezeit bis auf eines zu ausgestorbenen Gattungen, während keines der Exemplare aus dem Eozän oder dem Miozän ausgestorbenen Gattungen ist, zweitens sind die Arten aus Burma ähnlicher die moderne Fauna Kanadas als die Exemplare der kanadischen Kreidezeit.

Es gibt etwa 3.600 verschiedene Arten. [28]

Essverhalten Bearbeiten

Spezifische Fütterungsstrategien und -mechanismen werden eingesetzt, um bestimmten Nischen gerecht zu werden. [29] Pflanzenfressende und detritivoren Arten fragmentieren biologisches Material, das in Boden und Laubstreu vorhanden ist, wodurch die Zersetzung unterstützt und die Verfügbarkeit von Nährstoffen für verschiedene Arten von Mikroben und Pilzen erhöht wird. Fleischfressende Arten unterhalten Populationen von kleinen wirbellosen Tieren wie Nematoden, Rädertierchen und anderen Collembolen-Arten. [11] [14] Springschwänze verbrauchen häufig Pilzhyphen und Sporen, aber es wurde auch festgestellt, dass sie Pflanzenmaterial und Pollen, Tierreste, kolloidale Materialien, Mineralien und Bakterien verbrauchen. [30]

Verteilung Bearbeiten

Springschwänze sind Kryptozoen, die häufig in Laubstreu und anderem verrottendem Material zu finden sind [31], wo sie hauptsächlich Detritivoren und Mikrobivoren sind und eines der wichtigsten biologischen Agenzien, die für die Kontrolle und Verbreitung von Bodenmikroorganismen verantwortlich sind. [32] In einem reifen Laubwald im gemäßigten Klima beherbergen Laubstreu und Vegetation typischerweise 30 bis 40 Arten von Springschwänzen, und in den Tropen kann die Zahl über 100 liegen. [33]

Sie gelten als eines der am häufigsten vorkommenden makroskopischen Tiere, mit Schätzungen von 100.000 Individuen pro Quadratmeter Boden, [34] im Wesentlichen überall auf der Erde, wo Boden und verwandte Lebensräume (Moospolster, umgefallenes Holz, Gras Büschel, Ameisen- und Termitennester) vorkommen. [35] Nur Nematoden, Krebstiere und Milben haben wahrscheinlich globale Populationen von ähnlicher Größe, und jede dieser Gruppen außer Milben ist umfassender: Obwohl der taxonomische Rang nicht für absolute Vergleiche verwendet werden kann, ist bemerkenswert, dass Nematoden ein Stamm sind und Krebstiere ein Unterstamm. Die meisten Springschwänze sind klein und bei zufälliger Beobachtung schwer zu erkennen, aber ein Springschwänze, der sogenannte Schneefloh (Hypogastrura nivicola), ist an warmen Wintertagen leicht zu beobachten, wenn es aktiv ist und seine dunkle Farbe einen scharfen Kontrast zum Schneehintergrund bildet. [36]

Darüber hinaus klettern einige Arten routinemäßig auf Bäume und bilden einen dominanten Bestandteil der Baumkronenfaunen, wo sie durch Schlagen oder Einnebeln von Insektiziden gesammelt werden können. [37] [38] Dies sind in der Regel die größeren (>2 mm) Arten, hauptsächlich in den Gattungen Entomobrya und Orchester, obwohl die Dichten pro Quadratmeter typischerweise 1–2 Größenordnungen niedriger sind als die Bodenpopulationen derselben Art. In gemäßigten Regionen sind einige Arten (z. Anurophorus spp., Entomobrya albocincta, Xenylla xavieri, Hypogastrura arborea) sind fast ausschließlich baumbewohnend. [35] In tropischen Regionen kann ein einziger Quadratmeter Baumkronen-Lebensraum viele Arten von Collembolen beherbergen. [12]

Der wichtigste ökologische Faktor, der die lokale Artenverteilung antreibt, ist die vertikale Schichtung der Umwelt: In Wäldern kann ein kontinuierlicher Wandel der Artengemeinschaften von Baumkronen über Bodenvegetation und dann bis hin zu tieferen Bodenhorizonten beobachtet werden. [35] Dies ist ein komplexer Faktor, der sowohl ernährungsphysiologische als auch physiologische Anforderungen zusammen mit Verhaltenstrends, [39] Ausbreitungsbeschränkungen [40] und wahrscheinlichen Arteninteraktionen umfasst. Bei einigen Arten wurde ein negativer [41] oder positiver [39] Gravitropismus gezeigt, der dieser noch wenig verstandenen vertikalen Segregation eine Verhaltensdimension hinzufügt. Experimente mit umgedrehten Torfproben zeigten zwei Arten von Reaktionen auf die Störung dieses vertikalen Gradienten, die als "Stayer" und "Mover" bezeichnet werden. [42]

Als Gruppe sind Springschwänze aufgrund ihrer tegumentären Atmung sehr empfindlich gegenüber Austrocknung, [43] obwohl gezeigt wurde, dass einige Arten mit dünner, durchlässiger Kutikula schwerer Trockenheit widerstehen, indem sie den osmotischen Druck ihrer Körperflüssigkeit regulieren. [44] Das gesellige Verhalten von Collembola, das hauptsächlich durch die Anziehungskraft der von Erwachsenen ausgeschiedenen Pheromone angetrieben wird, [45] gibt jedem Jugendlichen oder erwachsenen Individuum mehr Chancen, geeignete, besser geschützte Orte zu finden, an denen Austrocknung vermieden und Fortpflanzung und Überleben möglich sind Raten (dadurch Fitness) optimal gehalten werden. [46] Die Trockenheitsempfindlichkeit variiert von Art zu Art [47] und nimmt während der Ekdyse zu. [48] ​​Da sich Springschwänze während ihres gesamten Lebens wiederholt mausern (eine Vorfahrenfigur in Hexapoda), verbringen sie viel Zeit in versteckten Mikrogebieten, wo sie während der Ekdyse Schutz vor Austrocknung und Raub finden können, ein Vorteil, der durch die synchronisierte Mauser verstärkt wird. [49] Die Umgebung mit hoher Luftfeuchtigkeit in vielen Höhlen begünstigt auch Springschwänze und es gibt zahlreiche an Höhlen angepasste Arten, [50] [51] einschließlich einer, Plutomurus ortobalaganensis 1.980 Meter in der Krubera-Höhle leben. [52]

Die horizontale Verbreitung von Springschwanzarten wird durch Umweltfaktoren beeinflusst, die auf Landschaftsebene wirken, wie Bodensäure, Feuchtigkeit und Licht. [35] Die Anforderungen an den pH-Wert können experimentell rekonstruiert werden. [53] Höhenänderungen in der Artenverteilung können zumindest teilweise durch einen erhöhten Säuregehalt in höheren Lagen erklärt werden. [54] Der Feuchtigkeitsbedarf erklärt neben anderen ökologischen und verhaltensbezogenen Faktoren, warum einige Arten nicht oberirdisch leben können [55] oder sich während der Trockenzeit in den Boden zurückziehen, [56] aber auch, warum einige epigäische Springschwänze immer in der Nähe von Teichen zu finden sind und Seen, wie der hygrophile Isotomurus palustris. [57] Adaptive Merkmale, wie das Vorhandensein eines fächerartigen benetzbaren Schleims, ermöglichen es einigen Arten, sich an der Wasseroberfläche zu bewegen (Sminthurides aquaticus, Sminthurides malmgreni). Podura aquatica, ein einzigartiger Vertreter der Familie Poduridae (und einer der ersten Springschwänze, der von Carl Linnaeus beschrieben wurde), verbringt sein ganzes Leben an der Wasseroberfläche, wobei seine benetzbaren Eier ins Wasser fallen, bis das nicht benetzbare erste Stadium schlüpft und dann auftaucht . [58]

In einer bunten Landschaft, die aus einem Flickenteppich geschlossener (Wald) und offener (Wiesen, Getreidekulturen) Umgebungen besteht, sind die meisten bodenbewohnenden Arten nicht spezialisiert und können überall gefunden werden, aber die meisten epigäischen und streubewohnenden Arten werden von a . angezogen bestimmte Umgebung, entweder bewaldet oder nicht. [35] [59] Als Folge der Ausbreitungsbeschränkung kann eine zu schnelle Landnutzungsänderung das lokale Verschwinden von sich langsam bewegenden, spezialisierten Arten verursachen, [60] ein Phänomen, das als Kolonisationskredit bezeichnet wird. [61] [62]

Beziehung zu Menschen Bearbeiten

Springschwänze sind als Schädlinge einiger landwirtschaftlicher Nutzpflanzen bekannt. Sminthurus viridis, der Luzernefloh, verursacht nachweislich schwere Schäden an landwirtschaftlichen Nutzpflanzen [63] und gilt in Australien als Schädling. [64] [65] Von Onychiuridae ist auch bekannt, dass sie sich von Knollen ernähren und diese teilweise schädigen. [66] Durch ihre Fähigkeit, Sporen von Mykorrhiza-Pilzen und Mykorrhiza-Helferbakterien auf ihrem Tegument zu tragen, spielen Bodenspringschwänze jedoch eine positive Rolle bei der Etablierung von Pflanzen-Pilz-Symbiosen und sind somit für die Landwirtschaft von Vorteil. [67] Sie tragen auch durch ihren aktiven Verzehr von Myzelien und Sporen von dämpfenden und pathogenen Pilzen zur Bekämpfung von Pflanzenpilzkrankheiten bei. [68] [69] Es wurde vorgeschlagen, dass sie zur Bekämpfung von pathogenen Pilzen in Gewächshäusern und anderen Innenkulturen verwendet werden könnten. [70] [71]

Verschiedene Quellen und Veröffentlichungen haben vorgeschlagen, dass einige Springschwänze den Menschen parasitieren können, aber dies steht völlig im Widerspruch zu ihrer Biologie, und ein solches Phänomen wurde nie wissenschaftlich bestätigt, obwohl dokumentiert wurde, dass die Schuppen oder Haare von Collembolen beim Reiben Reizungen verursachen können die Haut. [72] Sie können manchmal in feuchten Räumen wie Badezimmern und Kellern reichlich vorhanden sein und zufällig am Körper gefunden werden. Häufiger können Behauptungen über eine anhaltende Infektion der menschlichen Haut durch Springschwänze auf ein neurologisches Problem wie eine wahnhafte Parasitose hindeuten, ein eher psychologisches als ein entomologisches Problem. Forscher selbst können psychischen Phänomenen ausgesetzt sein. Zum Beispiel wurde eine Veröffentlichung aus dem Jahr 2004, in der behauptet wurde, dass Springschwänze in Hautproben gefunden wurden, später als Fall von Pareidolie festgestellt, d Arthropodenköpfe, die damals als Springschwanzreste bezeichnet wurden. [72] [73] [74] [75] [76] Steve Hopkin berichtet jedoch über einen Fall eines Entomologen, der Isotoma Art und dabei versehentlich einige ihrer Eier einatmete, die in seiner Nasenhöhle schlüpften und ihn bis zur Ausspülung ziemlich krank machten. [33]

Im Jahr 1952 beschuldigte China das US-Militär, während des Koreakrieges mit Bakterien beladene Insekten und andere Objekte verbreitet zu haben, indem es sie von P-51-Kämpfern über Rebellendörfern über Nordkorea abgeworfen hatte. Insgesamt wurde den USA vorgeworfen, im Rahmen einer biologischen Kriegsführung Ameisen, Käfer, Grillen, Flöhe, Fliegen, Heuschrecken, Läuse, Springschwänze und Steinfliegen abgeworfen zu haben. Zu den angeblichen Begleiterkrankungen gehörten Milzbrand, Cholera, Ruhr, Geflügelseptikämie, Paratyphus, Pest, Buschtyphus, Pocken und Typhus. China schuf eine internationale wissenschaftliche Kommission zur Untersuchung einer möglichen bakteriellen Kriegsführung und entschied schließlich, dass die Vereinigten Staaten wahrscheinlich eine begrenzte biologische Kriegsführung in Korea betrieben. Die US-Regierung wies alle Vorwürfe zurück und schlug stattdessen vor, dass die Vereinten Nationen einen formellen Untersuchungsausschuss nach China und Korea entsenden, aber China und Korea weigerten sich, zusammenzuarbeiten. US-amerikanische und kanadische Entomologen behaupteten weiter, die Anschuldigungen seien lächerlich und argumentierten, dass anomale Erscheinungen von Insekten durch natürliche Phänomene erklärt werden könnten. [77] Springschwanzarten, die in Anschuldigungen der biologischen Kriegsführung im Koreakrieg zitiert wurden, waren Isotoma (Desoria) negishina (eine lokale Art) und der "weiße Rattenspringschwanz" Folsomia Candida. [78]

In Gefangenschaft gehaltene Springschwänze werden oft als Teil einer Aufräummannschaft in einem Terrarium gehalten. [79]

Ökotoxikologie Labortiere Bearbeiten

Springschwänze werden derzeit in Laborversuchen zur Früherkennung von Bodenverschmutzungen eingesetzt. Akute und chronische Toxizitätstests wurden von Forschern durchgeführt, meist mit dem parthenogenetischen Isotomid Folsomia Candida. [80] Diese Tests wurden standardisiert. [81] Details zu einem Ringtest, zur Biologie und Ökotoxikologie von Folsomia Candida und Vergleich mit den sexuell nahen Spezies Folsomia fimetaria (manchmal lieber Folsomia Candida) sind in einem von Paul Henning Krogh verfassten Dokument enthalten. [82] Es sollte darauf geachtet werden, dass verschiedene Stämme derselben Spezies zu unterschiedlichen Ergebnissen führen können. Es wurden auch Vermeidungstests durchgeführt. [83] Sie wurden ebenfalls standardisiert. [84] Vermeidungstests sind eine Ergänzung zu Toxizitätstests, bieten aber auch mehrere Vorteile: Sie sind schneller (also billiger), empfindlicher und umweltverträglicher, da sich Collembolen in der realen Welt aktiv weit von Verschmutzungspunkten entfernen. [85] Es kann die Hypothese aufgestellt werden, dass der Boden bei Tieren lokal verarmt (und somit für den normalen Gebrauch ungeeignet ist), während er unterhalb der Toxizitätsschwellenwerte liegt. Im Gegensatz zu Regenwürmern und wie viele Insekten und Weichtiere reagieren Collembola sehr empfindlich auf Herbizide und sind daher in der Direktsaat, die Herbizide intensiver als in der konventionellen Landwirtschaft verwendet, bedroht. [86] Der Springschwanz Folsomia Candida wird auch zu einem genomischen Modellorganismus für die Bodentoxikologie. [87] [88] Mit der Microarray-Technologie kann die Expression von Tausenden von Genen parallel gemessen werden. Die Genexpressionsprofile von Folsomia Candida Umweltgiften ausgesetzt sind, ermöglichen einen schnellen und empfindlichen Nachweis von Schadstoffen und klärt zusätzlich molekulare Mechanismen, die zur Toxikologie führen.

Collembolen haben sich als nützliche Bioindikatoren für die Bodenqualität erwiesen. Es wurden Laborstudien durchgeführt, die bestätigten, dass die Sprungfähigkeit von Springschwänzen zur Bewertung der Bodenqualität von Cu- und Ni-belasteten Standorten verwendet werden kann. [89]

In Polarregionen, von denen erwartet wird, dass sie eine der schnellsten Auswirkungen der Klimaerwärmung erfahren, haben Springschwänze in experimentellen Erwärmungsstudien gegensätzliche Reaktionen auf die Erwärmung gezeigt. [90] Es werden negative, [91] [92] positive [93] [94] und neutrale Reaktionen berichtet. [92] [95] Neutrale Reaktionen auf experimentelle Erwärmung wurden auch in Studien in unpolaren Regionen beschrieben. [96] Die Bedeutung der Bodenfeuchte wurde in Experimenten mit Infrarotheizung auf einer Almwiese gezeigt, die sich in trockeneren Teilen negativ auf die Biomasse und Diversität der Mesofauna und in feuchten Teilbereichen positiv auswirkte. [97] Darüber hinaus ergab eine Studie mit 20 Jahren experimenteller Erwärmung in drei gegensätzlichen Pflanzengemeinschaften, dass eine kleinräumige Heterogenität Springschwänze gegen eine potenzielle Klimaerwärmung puffern kann. [95]

Die sexuelle Fortpflanzung erfolgt durch die gehäufte oder verstreute Ablagerung von Spermatophoren durch männliche Erwachsene. Die Stimulation der Spermatophorablagerung durch weibliche Pheromone wurde in Sinella curviseta. [98] Paarungsverhalten kann bei Symphypleona beobachtet werden. [99] Bei den Symphypleona verwenden die Männchen einiger Sminthuridae ein Greiforgan, das sich an ihrer Antenne befindet. [31] Viele Collembolen-Arten, meist solche, die in tieferen Bodenhorizonten leben, sind parthenogenetisch, was die Reproduktion auf Kosten der genetischen Vielfalt und damit der Toleranz der Population gegenüber Umweltgefahren begünstigt. [100] Die Parthenogenese (auch Thelytoky genannt) steht unter der Kontrolle von symbiotischen Bakterien der Gattung Wolbachia, die in weiblichen Fortpflanzungsorganen und Eiern von Collembola leben, sich fortpflanzen und getragen werden. [101] Feminisieren Wolbachia Arten sind bei Arthropoden [102] und Nematoden [103] weit verbreitet, wo sie sich mit den meisten ihrer Abstammungslinien gemeinsam entwickelt haben.


Honigbienen halten ihr Zuhause sauber

Honigbienen arbeiten hart, um ihre Wohnräume sauber zu halten. Eine einzelne Arbeiterbiene hält ihren Kot zurück, bis sie weit vom Bienenstock entfernt ist. Die Fäkalien der Königin, der Larven und der Drohnen werden von den Arbeitern gereinigt und das Ergebnis ist ein erstaunlich sauberes Gebiet, wenn man bedenkt, wie viele Individuen auf so kleinem und engem Raum leben.

Winterarbeiter halten ihren Kot viele Wochen zurück, bis die Luft warm genug für einen kurzen Reinigungsflug ist. Sie können Fäkalienspuren im Schnee nicht weit vom Bienenstock oder manchmal sogar auf dem Dach des Bienenstocks sehen. Auch das ist normal und kein Grund zur Sorge. Aber viel Kot am Eingang oder an den Rahmen ist ein Zeichen dafür, dass etwas schief gelaufen ist.


Apfel

Apfel, Malus Domestica, ist ein Laubbaum aus der Familie der Rosaceae, der wegen seiner Früchte, bekannt als Äpfel, angebaut wird. Apfelfrüchte gehören zu den am häufigsten angebauten Früchten der Welt, sind rund (Kernkern) geformt und haben eine Farbe von grün bis rot. Aus einem Samen gepflanzt, kann ein Apfelbaum sechs bis zehn Jahre brauchen, um zu reifen und eigene Früchte zu produzieren. Apfelbäume sind kleine bis mittelgroße Bäume, die eine Höhe von 5 bis 10 m erreichen und einen zentralen Stamm haben, der sich in mehrere Äste teilt. Die Blätter des Baumes sind oval und können bis zu 13 cm (5,1 Zoll) lang und 7 cm (2,8 Zoll) breit werden. Apfel kann auch als Mela oder Apfel bezeichnet werden, und es wird angenommen, dass der heimische Baum aus Westasien und dem Mittelmeerraum von mehreren wilden Vorfahren stammt.






Äpfel werden am häufigsten frisch gegessen, können aber auch zum Backen und Kochen verwendet werden. Äpfel können auch zu Apfelmus, Apfelwein, Essig, Saft oder Butter verarbeitet werden, während Scheiben für den späteren Verzehr getrocknet werden können. Äpfel können auch zur Extraktion nützlicher Verbindungen wie Fructose und Pektin verwendet werden

Vermehrung

Apfelbäume wachsen am besten in den Tropen und in höheren Breiten benötigen sie eine milde Vegetationsperiode und einen kalten Winter, um ihre Ruhe zu durchbrechen. In diesen Breitengraden blüht der Baum im Frühjahr und die Früchte reifen im Herbst. In den Tropen bleiben die Blätter länger am Baum, so dass er im Wesentlichen immergrün ist und die Blüte und Fruchtbildung das ganze Jahr über sporadisch erfolgt, es sei denn, der Baum schafft es, einen gleichmäßigen Zyklus über den gesamten Baum zu erzwingen, indem die Triebe gebogen werden, um einen breiten Baum zu bilden . Die Standardmethode zur Vermehrung von Äpfeln ist das Knospen. Bei der Anpflanzung einer Apfelgärtnerei oder eines Obstgartens ist es sehr ratsam, aus Wurzelstöcken geknospte Setzlinge zu pflanzen, um eine Zunahme der Keimruhe der Knospen zu verhindern. Knospenbäume sollten im ersten Jahr beschnitten werden, um das Wachstum neuer Triebe zu fördern. In den Tropen erfordern Apfelbäume eine sorgfältige Bewirtschaftung, um die hohen Erntemengen nachhaltig zu gestalten. Dazu gehört das Biegen von Trieben, das Beschneiden der Spitzen und auch das Entlauben der Bäume. Bis zur ersten Fruchtbildung, in der Regel nach 2 Jahren, werden auch Blüten entfernt, um das Wachstum zu fördern. Apfelbäume können auch durch Pfropfung und Hügelschichtung vermehrt werden. Beim Pfropfen wird der untere Teil einer Pflanze (Wurzelstock) mit dem oberen Teil (Spross) einer anderen verbunden. Das Pfropfen wird normalerweise während der Ruhezeit durchgeführt und muss auf ruhendem Spross und Stockholz durchgeführt werden. Mound Layering wird verwendet, um klonische Wurzelstöcke von Äpfeln zu vermehren. Die Erde wird um die zurückgeschnittenen Triebe aufgeschüttet, wodurch das Wurzelwachstum an der Basis der Triebe angeregt wird. Ein Jahr vor Beginn der Vermehrung werden Stockpflanzen mit einem Durchmesser von 8–10 mm (0,3–0,4 Zoll) in Reihen gepflanzt und dann auf 45–60 cm (17,7–23,6 Zoll) zurückgeschnitten. Anschließend werden sie ein Jahr lang angebaut. Im Frühjahr werden die Pflanzen erneut zurückgeschnitten, diesmal auf 2,5 cm über dem Boden. Nach und nach bilden sich neue Triebe und mehr Erde und Rinde werden in Hügeln um die Pflanzen hinzugefügt. Dieser Zyklus kann sich während der Vegetationsperiode fortsetzen. Dann werden die Triebe geerntet, indem man nahe an der Basis abschneidet. Die mütterlichen Stuhlbetten werden dann freigelegt, bis das weitere Wachstum der neuen Triebe erfolgt ist und ein weiterer Hügelzyklus beginnt.

Verweise

CABI Pflanzenschutz-Kompendium. (2013). Malus Domestica Datenblatt. Verfügbar unter: http://www.cabi.org/cpc/datasheet/31964. [Zugriff am 05. November 14]. Bezahltes Abonnement erforderlich

Peck, G.M. &. Merwin, I.A. (Hrsg.) (2009). Ein Leitfaden für Erzeuger zu Bio-Äpfeln. Cornell Genossenschaftserweiterung. Verfügbar unter: nysipm.cornell.edu/organic_guide/apples.pdf. [Zugriff am 05. November 14, Link defekt 02. November 2018]. Freier Zugang

Polomski, B. & Reighand, G. (2007). Informationszentrum für Haus und Garten: Apple. Clemson-Erweiterung. Verfügbar unter: http://web.archive.org/web/20060907110823/http://hgic.clemson.edu/PDF/HGIC1350.pdf. [Zugriff am 05. November 14]. Freier Zugang

Sutton, T.B., Aldwinckle, H.S., Agnello, A.M. & Walgenbach, J.F. (Hrsg.) (2014). Kompendium der Apfel- und Birnenkrankheiten und Schädlinge. 2. Auflage.


Die Bedrohung ist echt

Allium-Miniermotten sind Schädlinge, die für hochwertige Pflanzen wie Zwiebeln, Frühlingszwiebeln, Schnittlauch, Knoblauch und Lauch sehr zerstörerisch sind.

Diese Insekten sind in der Mitte des Atlantiks verschanzt und haben sich nach Norden bis nach Massachusetts und Connecticut ausgebreitet.

Auch wenn Sie nicht an diesen Orten leben, sollten Sie sich der möglichen Verbreitung dieses Insekts in Ihrer Gegend bewusst sein und Vorkehrungen zum Schutz Ihrer Pflanzen treffen.

Haben Sie gegen Allium-Miniermotten gekämpft? Teilen Sie uns mit, wie sich Ihre Ernte entwickelt hat, und teilen Sie Ihre Tipps im Kommentarbereich unten mit!

Und für weitere Informationen über wachsende Allium in Ihrem Garten, sehen Sie sich als nächstes diese Anleitungen an:

&kopieren Fragen Sie die Experten, LLC. ALLE RECHTE VORBEHALTEN. Weitere Informationen finden Sie in unseren AGB. Produktfotos über Abamectin, Arbico Organics, Gowan und Monterey. Fotos ohne Abspann: Shutterstock. Mit zusätzlichem Schreiben und Bearbeiten von Clare Groom.

Über Helga George, PhD

Eine der größten Freuden der Kindheit von Helga George war es, über seltene Gewächshauspflanzen zu lesen, die in Delaware nicht wachsen würden. Jetzt, wo sie in der Nähe von Santa Barbara, Kalifornien lebt, freut sie sich, dass viele davon direkt vor der Tür wachsen! Fasziniert von der Entdeckung in der Kindheit, dass Pflanzen Chemikalien herstellen, um sich selbst zu verteidigen, begann Helga ein weiteres akademisches Studium und erwarb zwei Abschlüsse mit Pflanzenkrankheiten im Hauptfach Pflanzenpathologie. Sie hat einen BS in Landwirtschaft von der Cornell University und einen MS von der University of Massachusetts Amherst. Helga kehrte dann nach Cornell zurück, um zu promovieren und eines der Modellsysteme der Pflanzenabwehr zu studieren. 2009 wechselte sie zum Vollzeitschreiben.


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