Äußere Anatomie eines Krebses - Biologie

Wissenschaftlicher Name: Cambarus sp.
Gemeinsamen Namen: Flusskrebs

(Die Informationen auf dieser Artenseite wurden von Alicia Fitzgerald in Biology 220W, Frühjahr 2006, in Penn State New Kensington zusammengestellt.)

Krebse (mit besonderer Bezugnahme auf die Gattung Cambarus) sind extrem charakteristische Süßwasserkrebstiere. Ihre großen vordersten Beinpaare haben mächtige Klauen, die effiziente Werkzeuge für die Verteidigung, das Sammeln von Nahrung und die Manipulation von Objekten sind. Ihre vier Laufbeinpaare unterstützen sie bei der schnellen Fortbewegung über die Bodensubstrate ihrer aquatischen Lebensräume. Überraschenderweise sind sie nicht wirklich schwimmfähig, obwohl sie sich mit kräftigen Rutenstößen schnell (nach hinten) durch das Wasser treiben können. Diese letztere Bewegung ist besonders effektiv, wenn der Krebs versucht, einem Raubtier zu entkommen.

Verteilung
Krebsarten sind auf der ganzen Welt weit verbreitet und in den meisten kontinentalen Vereinigten Staaten reichlich vorhanden. Sie leben in Teichen, Bächen, Flüssen und Seen, am häufigsten unter Unterwasserfelsen und Baumstämmen. Einige Arten sind auch in der Lage, Höhlen zu graben, die häufig mit hohen, markanten „Türmchen&rdquo bedeckt sind, die sich oft in einiger Entfernung vom Wasserrand befinden. Auf unserem Naturlehrpfad sind Krebse in den fließenden Gewässern unseres Baches und in den umliegenden isolierten Feuchtgebieten zu finden.

Umwelttoleranzgrenzen
Krebse sind extrem robuste Tiere, die unterschiedliche Wassertemperaturen und Salzgehalte tolerieren können. Sie können sogar das Austrocknen und den Verlust ihrer Bäche und Teiche überleben. Sie reagieren auf diese extremen Habitatstörungen durch Ansiedeln in Bauen oder anderen Refugien oder durch Abwanderung zu noch intakten Wasserquellen. Krebse sind sehr intolerant gegenüber Umweltverschmutzung und anderen vom Menschen verursachten Verschmutzungen ihrer Umwelt. Eine reiche Krebspopulation ist also ein sehr positiver Indikator für die Lebensraumqualität. Krebse kommen häufiger in Bächen mit saurem Wasser vor. Diese Häufigkeit kann eher auf das säurebedingte Fehlen von Fischen, die Krebse erbeuten, als auf einen direkten, positiven Einfluss der Säure auf die Krebse selbst zurückzuführen sein.

Diät
Die Aktivität der Krebse dreht sich um Nahrung. Wenn die Nahrungsquellen reichlich vorhanden sind, neigt ein Krebs dazu, in einem sehr geringen Prozentsatz der Zeit nach Futter zu suchen (d. h. seinen Zufluchtsort unter einem Felsen oder Baumstamm zu verlassen). Bei Nahrungsknappheit verbringen Krebse jedoch viel Zeit mit der Nahrungssuche. Krebse verbrauchen sowohl pflanzliche als auch tierische Materialien und werden je nach saisonaler und lokaler Verfügbarkeit eine große Vielfalt an Nahrungsmitteln konsumieren. Fast alle Wasserpflanzen, Weichtiere, Insektenlarven, ausgewachsene Insekten, Kaulquappen, Amphibieneier und kleine Fische sind übliche Nahrungsmittel. Opportunistisch werden auch kleine Nagetiere und sogar kleine Vögel genommen. Junge Krebse müssen täglich 1 bis 4% ihres Körpergewichts aufnehmen und neigen dazu, sich auf tierische Nahrungsquellen zu konzentrieren. Ausgewachsene Krebse hingegen benötigen täglich nur 0,3 bis 1% ihres Körpergewichts und neigen dazu, hauptsächlich pflanzliches Material als Nahrung zu sich zu nehmen. Wenn keine lebenden Nahrungsquellen zur Verfügung stehen, verbrauchen Krebse bei Bedarf Aas. Krebse neigen dazu, nachts nach Nahrung zu suchen

Mauser
Krebse haben, wie alle Gliederfüßer, ein umhüllendes Exoskelett, das aus dem strukturellen Polysaccharid &ldquochitin besteht. Damit ein Krebs wachsen kann, muss er sein Exoskelett abwerfen und dann ein neues und größeres wachsen. Dieser Abwurf- und Neuwachstumsprozess wird als "Mausern" bezeichnet. Wenn ein Krebs sich maust, ist er sehr anfällig sowohl für Verletzungen als auch für Raubtiere und muss daher die zwei oder drei Tage damit verbringen, sein Exoskelett relativ inaktiv in seinem Refugium wieder wachsen zu lassen. Junge Krebse häuten sich während ihres ersten Lebensjahres 6 bis 10 Mal, während ältere Krebse während ihres zweiten (und typischerweise letzten) Lebensjahres 3 bis 5 Mal häuten.

Paarung und Fortpflanzung
Krebse paaren sich im zeitigen Frühjahr und die Weibchen tragen die befruchteten, sich entwickelnden Eier 4 bis 6 Wochen lang in ihrem Körper. Diese sich entwickelnden Eier werden dann auf die Außenseite des Körpers des Weibchens übertragen und mit einem Klebstoff namens &ldquoglair&rdquo an den Schwanz des Weibchens geklebt. Die Eier schlüpfen dann bis zum Ende des Frühlings. Allerdings produzieren nur 20 bis 40 % der Eier tatsächlich Junge. Das Versagen dieser Eizellen ist oft auf einen geringen Prozentsatz der anfänglichen Befruchtung und auf ein häufiges Versagen des Glair-Außenklebers zurückzuführen.

Raubtiere, Parasiten, Symbiose und Krankheiten
Krebse werden von vielen Tierarten gefressen, darunter Waschbären, Rotfüchse, Bisamratten, nördliche Wasserschlangen, östliche Schildkröten und viele Vogelarten. Krebse werden auch häufig von Parasiten und Krankheiten befallen, die ihre Kiemen, Augen, Exoskelette und den Darm befallen. Viele dieser Infektionen und Schädlinge schaden den einzelnen Krebsen kaum, es sei denn, das Tier ist in irgendeiner Weise gestresst oder geschwächt (diese Belastungen sind häufig in Form von verschmutztem oder auf andere Weise minderwertigem Wasser). Krebse scheinen auch eine wechselseitige Symbiose mit einer Wasserringelrose namens &ldquoCambarincola&rdquo einzugehen, die anscheinend dabei hilft, Schmutz aus den Kiemen der Krebse zu entfernen und so die Atmungseffizienz und Fitness der Krebse zu verbessern.

Ökologische Bedeutung
Krebse sind ein wichtiger Bestandteil unseres Bachökosystems. Sie sind wichtige Glieder in den komplexen aquatischen und terrestrischen Nahrungsnetzen in unserem Ökosystem und tragen durch ihre Nahrungs-, Grabungs- und Nahrungssuche dazu bei, dass die Wasserqualität in unserem Bach hoch bleibt, was vielen unserer Lehrpfade zugute kommt Spezies.

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Äußere Krebsanatomie

Langer Tast- und Geschmackssinn hilft auch, das Gleichgewicht kurz zu halten. Krebse gehen vorwärts, aber sie verwenden eine Rückwärtsbewegung, wenn sie schwimmen, damit sie sich schneller bewegen können.

Crayfish External Structure Biology 1106 mit V Y At

Der Körper des Krebses besteht aus einem verschmolzenen Kopf und Brustkorb.

Äußere Krebsanatomie. Äußere Anatomie eines Krebses. Aus dem Panzer erstreckt sich eine spitze Struktur, die als Podest bezeichnet wird. Suchen Sie den Cephalothorax und das Podest.

Suchen Sie den Cephalothorax und das Podest. Der Hinterleib des Krebses ist segmentiert und flexibel. Teil des Verdauungstraktes zwischen Speiseröhre und Darm.

Der Körper des Krebses besteht aus einem verschmolzenen Kopf und Brustkorb. Lerne Vokabeln und mehr mit Lernkartenspielen und anderen Lernwerkzeugen. Suchen Sie den Cephalothorax und das Podest.

Innere Anatomie eines Krebses. Jedes der vier verbleibenden Segmente enthält ein Paar Gehbeine. Im Bauch haben die ersten fünf Segmente jeweils ein Paar Schwimmwesten, die Wasserströmungen erzeugen und der Fortpflanzung dienen.

Der Hinterleib des Krebses ist segmentiert und flexibel. Essbarer Süßwasserkrebs mit Zangen an den beiden Vorderbeinen. Der Cephalothorax ist von einem dicken Panzer bedeckt, der als Panzer bezeichnet wird.

Der hintere Teil des Krebses besteht aus 6 Segmenten und einem Telson. Der Cephalothorax ist von einer dicken Panzerung bedeckt, die als Panzer bezeichnet wird. Gefunden vor dem Mund fühlen und schmecken.

Sie können die Laufbeine als eine Möglichkeit verwenden, um das Geschlecht Ihrer Krebse zu bestimmen. Der Cephalothorax ist von einer dicken Panzerung bedeckt, die als Panzer bezeichnet wird. Dies ist ein Quiz namens externe Krebsanatomie und wurde vom Mitglied edfred1244 Login erstellt.

Der vordere Teil des Krebses besteht aus Kopf und Brustkorb eine scharfe spitze Projektion des Panzers von der Vorderseite des t. 0 0000 ein Shoutout ist eine Möglichkeit, Leute über ein Spiel zu informieren, das sie spielen möchten. Krebse haben Augen auf Stielen und können sich unabhängig bewegen.

Hinter den Chelipenen befinden sich die vier Paar Gehbeine. Blutpumpendes Organ des Krebses. Die Chelipeds sind die großen Krallen, die der Krebs zur Verteidigung und zum Fangen von Beute verwendet.

Aus dem Panzer erstreckt sich eine spitze Struktur, die als Podest bezeichnet wird. Site der geistigen Funktionen eines Krebses. Suchen Sie das Basissegment jedes Paars von Gehbeinen.

Aus dem Panzer erstreckt sich eine spitze Struktur, die als Podest bezeichnet wird. Spielen Sie dieses Quiz namens externe Krebsanatomie und zeigen Sie Ihre Fähigkeiten. Beginnen Sie mit dem Studium der äußeren Anatomie von Krebsen.

Das Basissegment ist dort, wo das Bein am Körper befestigt ist. Geschlechtsdrüse eines Krebses. Der Hinterleib des Krebses ist segmentiert und flexibel.

Der Körper des Krebses besteht aus einem verschmolzenen Kopf und Brustkorb.

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Krebsverhalten

Krebse, die in Bächen und Seen häufig vorkommen, verstecken sich oft unter Felsen oder Baumstämmen. Sie sind nachts am aktivsten, wenn sie sich hauptsächlich von Schnecken, Algen, Insektenlarven, Würmern und Kaulquappen ernähren, von denen einige Vegetation (verschiedene Wasserpflanzen) fressen. Auch tote Fischwürmer, Mais und Lachseier sind die Lieblinge der Krebse. Studien zeigen, dass Erwachsene (ein Jahr alt) in der Abenddämmerung am aktivsten werden und bis zum Tagesanbruch intensiv füttern. Junge Krebse sind eher an sonnigen Tagen unterwegs, während die älteren Krebse an bewölkten Tagen und in der Nacht aktiver sind. Die allgemeine Bewegung ist immer ein langsamer Gang, aber wenn sie erschreckt sind, verwenden Krebse schnelle Schwanzschläge, um rückwärts zu schwimmen und der Gefahr zu entkommen.

Die meisten Krebse haben ein kurzes Leben, normalerweise weniger als zwei Jahre. Daher ist eine schnelle, großvolumige Vermehrung für den Fortbestand der Art wichtig. Viele Krebse werden im Oktober oder November nach ihrer Geburt geschlechtsreif und paaren sich, aber Befruchtung und Eiablage erfolgen normalerweise im folgenden Frühjahr. Die befruchteten Eier werden an der Unterseite ihres gegliederten Hinterleibs an den Schwimmmänteln des Weibchens befestigt. Dort wechseln die 10 bis 800 Eier im Laufe ihrer Entwicklung von dunkel zu durchscheinend. Das eiertragende Weibchen wird als "Beere" bezeichnet, weil die Eimasse wie eine Beere aussieht. Weibchen werden im Mai oder Juni oft als "Beere" gesehen. Die Eier schlüpfen in 2 bis 20 Wochen, je nach Wassertemperatur. Die frisch geschlüpften Krebse bleiben bis kurz nach der zweiten Häutung an ihre Mutter gebunden.

VERFAHREN TEIL 1: Äußere Anatomie eines Krebses

1. Legen Sie die Krebse auf die Seite in die Sektionsschale. Verwenden Sie die obigen Diagramme, um den Cephalothorax und das Abdomen zu lokalisieren. Der Panzer, ein Schild aus Chitin, bedeckt die Rückenfläche des Cephalothorax. Suchen Sie auf dem Panzer die Einkerbung, die als bekannt ist zervikale Nut. Diese Einbuchtung erstreckt sich über die Mittelregion und trennt den Kopf- und Brustbereich des Cephalothorax.

2. Legen Sie die Krebse so, dass die Rückenseite nach oben zeigt. Verwenden Sie die obigen Diagramme, um die Tribüne. Unter dem Podest befinden sich die beiden Augen, die sich jeweils am Ende eines Stiels befinden. Stielaugen helfen den Krebsen, in alle Richtungen zu sehen. Dies wird ihnen helfen, Raubtiere zu lokalisieren und ihnen zu ermöglichen, in Sicherheit zu schwimmen. Die Einbuchtung entlang der Rückenfläche wird als bezeichnet Rückennaht. Dies trennt die beiden Seiten des Panzers.

3. Lokalisieren Sie die fünf Paare von Anhängseln im Kopfbereich. Lokalisieren Sie zuerst die Antennen im vordersten Segment, beobachten Sie dahinter das viel längere Antennenpaar.

4. Suchen Sie das Maul auf der ventralen Seite des Krebses. Beobachte Unterkiefer, und die beiden Paare von Oberkiefer das sind die letzten Anhängsel der Kopfregion der Krebse.

5. Beobachten Sie im thorakalen Anteil des Cephalothorax die 3 spitzen Maxillipeden.

6. Beobachten Sie als nächstes das größte und prominenteste Paar von Anhängseln, das chelipeds oder Krallen. Gelegentlich sehen Sie vielleicht einen größer als den anderen. Krebse haben die Fähigkeit, verlorene Anhängsel zu regenerieren. Der kleinere repräsentiert den, der sich noch regeneriert. Der Cheliped ist in drei unterschiedliche Teile unterteilt: Die "Klaue" wird aus dem . gebildet Propodit und der Dactylopodit. Der Dactylopodit ist der bewegliche Teil der Klaue und der Propodite ist der stabile Teil der Klaue, der sich nicht bewegt. Die untere Klaue ist am befestigt Karpodit die segmentiert ist und direkt am Cephalothorax ansetzt.

7. Hinter den Chelipenen befinden sich die vier Laufbeinpaare. Sie können die Laufbeine als eine Möglichkeit verwenden, um das Geschlecht Ihrer Krebse zu bestimmen. Suchen Sie die Basissegment jedes Paar Laufbeine. Das Basissegment ist dort, wo das Bein am Körper befestigt ist. Verwenden Sie eine Lupe, um die Innenfläche des Basissegments des DRITTEN PAARS von Gehbeinen zu untersuchen. Wenn Sie einen halbmondförmigen Schlitz beobachten, haben Sie den Genitalporen eines Weibchens. Bei einem Mann ist die Öffnungen des Samenleiters befinden sich auf dem Basissegment des VIERTEN PAARS von Gehbeinen. Diese sind möglicherweise schwer zu finden. Wenn Sie sie also nicht finden können, können Sie das Geschlecht Ihrer Krebse trotzdem bestimmen, indem Sie sich die nächste Gruppe von Anhängseln ansehen.

8. Auf der Unterseite des Bauches finden Sie die Anhängsel, die als bekannt sind Schwimmer. Diese dienen, wie bereits erwähnt, zur Erzeugung von Wasserströmungen für die Nahrungsaufnahme sowie für die Fortpflanzung. Die ERSTEN ZWEI Schwimmmännchen des Männchens sind länger und sind darunter und nach vorne gerichtet. Das Männchen verwendet diese Schwimmwesten, um Sperma auf das Weibchen zu übertragen. Die weiblichen Schwimmer sind alle eher klein und zierlich. Sie wird diese Schwimmmäntel verwenden, um die Eier unter ihrem Bauch zu halten, bis sie schlüpfen. Wenn ein Weibchen seine Eier hält, ähnelt es ein wenig einem Haufen "Beeren", so der Begriff in Beere bezieht sich auf ein Weibchen, das ihre Eier unter ihrem Bauch umklammert. Sehen Sie sich die Bilder unten an, um das Geschlecht Ihrer Krebse zu bestimmen.

Unterschiede in der Anatomie von Krebsen zwischen Männchen und Weibchen

Weiblicher Flusskrebs "In Berry"

VERFAHREN TEIL 2: Innere Anatomie eines Krebses

1. Halten Sie mit einer Hand den Krebs mit der Rückenseite nach oben in der Präparierschale und schneiden Sie mit der Schere vorsichtig die Rückseite des Panzers entlang der Schnittlinie Nr. 1 durch (siehe Abbildung unten). Schneiden Sie entlang der Einkerbungen, die den Brustbereich des Panzers in drei verschiedene Bereiche unterteilen. Machen Sie kleine und flache Schnitte, um keine der Strukturen unter dem Panzer zu stören. Beginnen Sie den Schnitt an den hinteren Rändern des Panzers und verlängern Sie ihn an beiden Seiten im Kopfbereich.

2. Heben Sie den Panzer vorsichtig mit der Pinzette ab. Versuchen Sie dabei keine der darunter liegenden Strukturen zu beschädigen. Achten Sie darauf, den Panzer nicht zu schnell wegzuziehen, da eine solche Aktion die darunter liegenden Strukturen stören würde.

3. Legen Sie die Krebse auf die Seite mit dem Kopf nach links auf Ihr Tablett, wie in der Abbildung unten gezeigt. Beginnen Sie mit der Schere an der Basis der Schnittlinie Nr. 1 zu schneiden. Schneiden Sie an der Seite des Krebses entlang, wie durch die unten gezeigte Schnittlinie Nr. 2 dargestellt. Verlängern Sie den Schnitt in Richtung des Rostrums an der Oberseite des Kopfes.

4. Verwenden Sie die Pinzette, um sorgfältig Heben Sie die restlichen Teile des Panzers ab und legen Sie die darunter liegende Substanz frei Kiemen und andere Organe. Verwenden Sie das Diagramm unten, um diese Organe zu lokalisieren.

5. Die Muskeln (vorderer Magen, Unterkiefer und Pylorus) sind Muskeln, die beim Füttern und Zerkleinern der Nahrung verwendet werden. Suchen Sie die Verdauungsdrüse. Diese Drüse produziert Verdauungsenzyme, die beim Abbau der Nahrung helfen. Die Verdauungsdrüse ist auch an der Aufnahme von Nährstoffen beteiligt.

6. Verwenden Sie das nachstehende Diagramm, um das Kiemen. Sie sind federähnliche Strukturen, die sich unter dem Panzer befinden und an den Chelipen und den Laufbeinen befestigt sind. Ein ständiger Blutfluss zu den Kiemen setzt Kohlendioxid frei und nimmt den im Wasser verfügbaren Sauerstoff auf. Die federartige Struktur wurde entwickelt, um die Oberfläche für mehr Absorptionsbereiche zu vergrößern.

7. Verwenden Sie das Diagramm unten, um die Organe des Kreislaufsystems zu lokalisieren. Suchen Sie die dorsales Röhrenherz. Es ist eine "schildartige" Struktur, die mit einigen kleinen Arterien verbunden ist. Der Krebs hat ein offenes Kreislaufsystem, in dem das Blut aus den Arterien in kleine Räume im Gewebe fließt, die als . bezeichnet werden Nebenhöhlen. Der Gasaustausch findet statt, wenn das Blut über die Kiemen fließt, bevor es zum Herzen zurückkehrt.

8. Um den Darm freizulegen, schneiden Sie vorsichtig am Bauch entlang bis zum Schwanz. Schneiden Sie nicht zu tief, sonst schneiden Sie in den Darm. Ziehen Sie das Chitin-Exoskelett vorsichtig vom Bauch ab, wie in der Abbildung unten gezeigt.

9. Ziehen Sie den unteren Teil des Exoskeletts vorsichtig vom Bauch (dem Bereich, der die Schwimmwesten enthält) ab, um die Unterseite des Bauches freizulegen.

10. Verwenden Sie das Diagramm unten, um die Lappen zu lokalisieren Herz Magen. Der Herzmagen enthält einige zahnähnliche Wucherungen. Diese Wucherungen bilden die Magenmühle die verwendet wird, um die Nahrung zu zerkleinern, um die Verdauung zu erleichtern.

11. Die Reise der Verdauung beginnt damit, dass die Mandibeln die Nahrung in kleinere Stücke zerkleinern, die in den Mund genommen werden können. Die Nahrung gelangt dann in den Magen, wo die mechanische Verdauung stattfindet, während die Magenmühle die Nahrung in noch kleinere Stücke zermahlt. Die Verdauungsdrüsen sezernieren dann die Enzyme, die die Nahrung chemisch abbauen und die Nahrung in das Blut aufnehmen, das die Nährstoffe in das Gewebe transportiert. Die unverdauten Lebensmittel wandern dann in die Darm die den unverdauten Abfall durch den Anus ausstoßen wird. Verwenden Sie das Diagramm unten, um den Darm zu lokalisieren.

12. Verwenden Sie das Diagramm unten, um das ventrales Nervenstrang. Der Nervenstrang liegt in einer Rinne an der Unterseite des Bauches (genau gegenüber dem Darm). Der ventrale Nervenstrang verläuft über die gesamte Länge des Krebses. Es ist mit dem Primitiven verbunden Gehirn das liegt im kopfbereich. Beachten Sie die Erweiterungen des Nervenstrangs an den lateralen Seiten. Diese nennt man Ganglien (Singular = Ganglion). Diese erstrecken sich auf die einzelnen Nerven, um Informationen an die verschiedenen Muskeln und Organe weiterzugeben.

Sie sind nun zum Abschluss der Krebssektion gekommen. Bitte entsorgen Sie die Krebse im Müll und reinigen Sie Ihre Sezierwerkzeuge und den Bereich.

Besorgen Sie sich und füllen Sie das Arbeitsblatt zur Überprüfung der Krebsdissektion aus.

Klicken HIER für den Crayfish Dissection Lab Companion (dieser gibt Ihnen Informationen darüber, was im Sezierquiz sein wird)

Antennen und Antenne

Zwei Paare von Antennen und Antennule ragen auf beiden Seiten der Spitze des Rostrums hervor.

Krebse verwenden lange Antennen als Tast- oder Berührungsrezeptoren, um Informationen zu sammeln, sich zu orientieren und ihre Position in der Umgebung zu koordinieren. Seine Struktur kann leicht Wasservibrationen aufnehmen, was bei der Jagd, im Kampf, bei der Paarung oder bei der Flucht sehr hilfreich sein kann.

Obwohl die kurzen Antennen auch die Rolle der taktilen Rezeptoren spielen können, besteht ihre Hauptfunktion darin, chemische Informationen (Geschmack und „Geruch“) über das, was sie berühren, bereitzustellen.

Es wurde berichtet, dass sie die Lokalisierung von entfernten Lebensmittelgerüchen, die Geschlechterdiskriminierung und das agonistische und soziale Verhalten von Zehnfußkrebsen beeinflussen.

Das Nervensystem von Krebsen

Das Nervensystem von Krebsen ist multifunktional.

1. Es ist verantwortlich für die Kontrolle aller Muskeln im Körper (Muskelmuskulatur, Bauchmuskulatur, Bauchmuskulatur, )
2. Es steuert auch die Produktion aller. Zum Beispiel wird die Häutung bei Krebstieren durch Ecdysteroide (Häutungshormon) reguliert. Es spielt auch eine wichtige Rolle bei der Paarung und Fortpflanzung der Krebse.
3. Alle Sinneswahrnehmungen von Antennen und Antennen werden im Nervensystem verarbeitet.

Trotzdem ist das Nervensystem von Krebsen im Vergleich zu vielen anderen Tieren auch ziemlich einfach.

Das Gehirn befindet sich auf der hinteren oder dorsalen Seite des Kopfes des Krebses (direkt hinter und zwischen den Augen). Eigentlich kann ihr Gehirn nur bedingt als Gehirn bezeichnet werden, da es sehr klein ist und nur aus 3 Nervenzellverbänden (Hirnganglion oder Ganglien) besteht.

Diese drei verschmolzenen Nervenknoten heißen:

• Protocerebrum (Verantwortlich für das Sehen und für die Orientierung des Tieres verbindet es die Augen mit dem Zentralnervensystem).
• deutocerebro (Verantwortlich für Fortbewegung und Ernährung).
• tritocerebro Verantwortlich für die Nahrungserkennung und die Kaufunktion. Es verbindet Antennennerven mit dem Zentralnervensystem).

Der ventrale Nervenstrang erstreckt sich entlang des Bauches des Krebses und verläuft zum hinteren Ende des Körpers (zum Telson). Es hat auch kleine Nervenbündel am Ende jedes Segments (Gehbeine, Schwimmmäntel usw.).

Jedes Segment ist wie halb unabhängig und versorgt die Anhängsel mit motorischen Nerven. Grundsätzlich ist das Nervensystem der Krebse nicht vollständig zentralisiert. Dies bedeutet, dass selbst bei einer Behinderung der Hirnganglien einige Teile der Krebse sich bewegen und zielgerichtet auf äußere Reize reagieren würden.

Anatomie der äußeren Struktur von Krebsen

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Labor 8: Arthropoden

Labor-8 01

Obwohl alle ausgestorben sind, waren Trilobiten Meeresbodenbewohner, die vom Kambrium (vor 600 Millionen Jahren) bis zum Karbon (vor 345 Millionen Jahren) blühten. Der Körper eines Trilobiten war oval, abgeflacht und in drei Tagmata unterteilt. Hinweis: Der Trilobit ist das State Fossil of Wisconsin!

Labor-9 02

Pfeilschwanzkrebse sind chelicerate Arthropoden, die sich seit der Trias vor über 200 Millionen Jahren kaum verändert haben! Alle fünf bekannten Arten sind marine. Pfeilschwanzkrebse haben keinen Kiefer, haben aber spezielle zahnähnliche Vorsprünge an den proximalen Enden der ersten vier Paar von Laufbeinen, die Gnathobasen genannt werden, die Nahrung zerkauen und zum Maul weiterleiten.

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Spinnen (Subphylum Chelicerata) unterscheiden sich von anderen Spinnentieren dadurch, dass sie vier Paar Gehbeine und ein vorderes Paar von Anhängseln, die Cheliceren genannt werden, haben, die endständige Giftzähne tragen. Obwohl alle der rund 35.000 Spinnenarten zum Teil giftig sind, sind weltweit nur etwa 80 in der Lage, ihr Gift dem Menschen zu injizieren. Von diesen stellen nur zwei Formen in den Vereinigten Staaten eine wirkliche Gefahr für den Menschen dar, die Schwarze Witwe (Latrodectus spp.) und die brauner Einsiedler (Loxosceles reclusa).

Schwarze Witwe

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Dieses Foto einer südlichen Schwarzen Witwe (Latrodectus mactans) zeigt deutlich die charakteristische rote Sanduhr am Bauch des Weibchens (die einzige, die einen schweren Biss verursachen kann).

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Hier ist ein weiteres Foto einer weiblichen Schwarzen Witwe (das einzige Geschlecht, das einen ernsthaften Biss verursachen kann), das die charakteristischen roten sanduhrförmigen Flecken auf dem Bauch zeigt.

Brauner Einsiedler

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Dieses Foto einer braunen Einsiedlerin (Loxosceles reclusa) zeigt deutlich den markanten geigenförmigen Rückenstreifen (mit dem Geigenhals zum Bauch zeigend), an dem die Spinne am leichtesten zu erkennen ist. Der Bauch ist einheitlich gefärbt, kann aber von hellbraun bis dunkelbraun reichen.

Labor-8 07

Die meisten der rund 1.200 Skorpionarten sind auf trockene, warme Regionen der Welt beschränkt. Beachten Sie den Stachel, der das letzte Segment des Abdomens ist. Skorpione verwenden dieses Gift, um Beute zu töten und sich zu verteidigen. Während alle Arten potenziell schmerzhafte Stiche abgeben können, sind weniger als 50 Arten als gefährlich für den Menschen bekannt, und nur eine davon kommt in den Vereinigten Staaten vor.

Labor-8 08

Zecken sind Ektoparasiten, die vom Blut von Säugetieren, Vögeln und sogar einigen Reptilien und Amphibien leben. Obwohl ihre Bisse manchmal eine lokale Reaktion hervorrufen können, ist das schwerwiegendere Problem, dass sie Überträger einer Reihe schwerwiegender Krankheiten sind, einschließlich der Borreliose, die von der kleinen Hirschzecke (Ixodes) übertragen wird.

Labor-8 09

Diese Folie zeigt die Hausstaubmilbe (Dermatophagoides). Obwohl sie in ihrer äußeren Morphologie den Zecken ähneln, sind Milben in der Regel weniger als 1 mm lang, und viele der etwa 30.000 genannten Arten sind so klein, dass sie mit Hilfe eines Rasterelektronenmikroskops identifiziert werden müssen! Während viele Milbenarten frei leben, verursachen andere durch das Absaugen des Inhalts von Pflanzenzellen umfangreiche Schäden an landwirtschaftlichen Nutzpflanzen. Follikelmilben leben als Kommensalen in den Haarfollikeln im menschlichen Gesicht (verursachen keinen Schaden), aber andere Arten verursachen Räude bei Hunden oder andere Hautprobleme bei Rindern, Pferden und Schweinen. Der Kot und andere Produkte von Hausstaubmilben wurden als Hauptursache für Allergien und Asthma bei Kindern identifiziert.

Labor-8 10

Diese Folie zeigt einen Pseudoskorpion, der so genannt wird, weil seine hervorstehenden Zangen (Chelae) denen von Skorpionen ähneln. Pseudoskorpione hingegen sind harmlose Bewohner im Boden, Laubstreu, unter Steinen und in Tiernestern. Ihnen fehlen der langgestreckte, schlanke Hinterleib und der Stachel von Skorpionen und sind normalerweise weniger als einige Millimeter lang.

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Diese Klasse von Krebstieren enthält viele bekannte Formen sowie die Asseln und Flohkrebse. Die größte Untergruppe (die Dekapoden mit fünf Paaren von Laufbeinen, von denen das erste zu einer Zange modifiziert ist) enthalten wirtschaftlich wichtige Lebensmittel wie Krabben, Hummer, Garnelen, Krebse usw. Das Bild oben zeigt mehrere blaue Krabben, eine essbare Art entlang der Atlantik- und Golfküste der USA gefunden.

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Seepocken sind sessile Organismen, die von zwei Kalkplatten umgeben sind, die einen Panzer bilden. Sie können direkt auf den Untergrund zementiert werden (wie die oben gezeigten Eichelmuscheln) oder über Stiele befestigt werden (die Gänsemuscheln). Seepocken sind Filtrierer, die sich mit gefiederten, modifizierten Beinen, den Cirri, ernähren. Aus wirtschaftlicher Sicht können Seepocken Probleme verursachen, indem sie die Rümpfe oder Schiffe und Boote verschmutzen.

Hinweis: Einige Behörden betrachten die Klasse Maxillopoda als eine nicht monophyletische und daher technisch ungültige Gruppe, die auch Formen wie Ostrakoden und Copepoden umfasst, von denen jede in eine eigene separate Klasse eingeordnet wird. Aus dieser Sicht würden Seepocken in die Klasse Cirripedia eingeordnet werden. Bis das Problem jedoch gelöst ist, betrachtet diese Website Seepocken weiterhin als Mitglieder der Klasse Maxillopoda.

Lebende Gänsemuscheln (Lepas)

Labor-8 13

Dieses Bild zeigt eine Reihe von Exemplaren lebender Gänsemuscheln (Lepas). Beachten Sie die vielen gefiederten, gegliederten Anhängsel, die Cirri genannt werden, die verwendet werden, um Nahrung aus dem Wasser zu filtern. Obwohl diese Seepocken auch in Kalkplatten eingeschlossen sind, werden sie nicht direkt zementiert, sondern mit einem flexiblen Stiel am Substrat befestigt.

Labor-8 14

Diese Folie zeigt mehrere gefärbte Exemplare des Wasserflohs Daphnia. Diese Krebstiere werden wegen ihrer sprunghaften Bewegungen als Wasserflöhe bezeichnet und verwenden ihr blattartiges zweites Antennenpaar zur Atmung, Fortbewegung und zum Filtern von Partikeln aus der Wassersäule (die meisten Arten sind Filtrierer, obwohl einige Fleischfresser sind). Die Körper der meisten Wasserflöhe sind von einem zweischaligen Panzer umgeben.

Foto eines lebenden Wasserflohs

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Dieses Phasenkontrastmikroskop-Bild zeigt einen lebenden Wasserfloh (Daphnien). Beachten Sie die Eier, die in diesem Weibchen enthalten sind.

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Tausendfüßler haben dorsoventral abgeflachte Körper mit vielen Segmenten, von denen jedes ein Paar Anhängsel trägt. Von den etwa 3.000 Arten sind die meisten aktive Räuber mit einer Vorliebe für feuchte Orte wie unter Steinen, Baumstämmen, in der Laubstreu usw. Alle Tausendfüßler sind bis zu einem gewissen Grad giftig, wobei ihr erstes Paar Anhängsel zu hohlen Reißzähnen modifiziert ist. jeder mit einer Giftdrüse an seiner Basis. Beute wird ergriffen und mit den Reißzähnen gehalten, während der Tausendfüßler frisst. Größere Formen (einige bis 30 cm) können kleine Vögel, Säugetiere, Eidechsen, Schlangen und Frösche sowie andere Gliederfüßer töten und ernähren. Tausendfüßlerbisse erzeugen einen brennenden Schmerz, wobei diejenigen von großen Arten Übelkeit und vorübergehende Lähmung verursachen. Es sind Todesfälle aufgetreten. Krallenkratzer einiger Arten können auch Schmerzen aufgrund von Giftstoffen verursachen, die von Drüsen in den Gehbeinen produziert werden.

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Tausendfüßler (Subphylum Myriapoda) zeichnen sich durch ihre länglichen Körper aus, die aus vielen ähnlichen, miteinander verschmolzenen Doppelsegmenten bestehen, von denen jedes zwei Paar Anhängsel trägt. Die meisten der etwa 8.000 Tausendfüßlerarten spielen eine nützliche Rolle bei der Zersetzung von Boden und Laub. Durch das Zerkleinern dieses Materials machen sie es anfälliger für Angriffe durch mikrobielle Zersetzer, die den Prozess beenden. Tausendfüßer verteidigen sich, indem sie Giftstoffe aus Drüsen entweder an den Seiten des Körpers oder in der Mitte des Rückens oder beidem absondern.

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Die Klasse Insecta (Subphylum Hexapoda) enthält über drei Viertel Millionen benannte Arten, die in 26 Ordnungen angeordnet sind und fast 1.000 Familien umfassen. Damit sind die Insekten die größte Tiergruppe mit mehr Arten als alle anderen Tiergruppen zusammen!

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Diese Folie zeigt einen gefärbten Querschnitt eines Insektenauges. Das Facettenauge von Insekten (und anderen Arthropoden) besteht aus vielen (bis zu Tausenden) einzelner Photorezeptoreinheiten, die Ommatidien genannt werden. Jedes Auge ist von einem transparenten Teil der Nagelhaut bedeckt, der Hornhaut genannt wird (auf die der blaue Pfeil zeigt). Ein Insekt wie eine Honigbiene kann in fast alle Richtungen gleichzeitig sehen, aber die Akkommodation ist begrenzt und nur weiter entfernte Objekte werden klar fokussiert.

Nahaufnahme des Facettenauges

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Dieses Bild zeigt die Rückenfläche eines kleinen erhaltenen Exemplars der Pfeilschwanzkrebse Limulus polyphemus. Diese Mitglieder der Klasse Merostomata sind vollständig marin und werden häufig in den flachen Gewässern des östlichen Nordamerikas von Kanada bis Mexiko gefunden. Beachten Sie, dass der Körper in zwei Tagmata unterteilt ist, einen vorderen Cephalothorax (1), der von einem harten, ledrigen Panzer bedeckt ist, und einen hinteren Bauch (2), der in einem stachelartigen Telson endet (4). Zu den sensorischen Strukturen gehören ein Paar Facettenaugen (4) sowie ein Paar einfache Augen auf beiden Seiten der Oberseite ihres Panzers (auf dem Bild nicht leicht zu erkennen), die ihnen helfen können, Nahrung zu finden. Die frühesten Fossilien von Pfeilschwanzkrebsen wurden in Schichten aus dem späten Ordovizium vor etwa 450 Millionen Jahren gefunden. Pfeilschwanzkrebse der Gattung Limulus sind "lebende Fossilien", die sich in den letzten 200 Millionen Jahren seit der Trias der Erdgeschichte kaum verändert haben!

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Dieses Bild zeigt die äußere Anatomie der anterior-ventralen Oberfläche eines kleinen, konservierten Pfeilschwanzkrebses. Das erste Paar von Anhängseln, die sich vor dem Mund befinden, werden Cheliceren (1) genannt, die in allen Mitgliedern des Unterstamms Chelicerata vorkommen, zu denen diese Organismen gehören. Pfeilschwanzkrebse haben auch fünf Paar Chelat-Wanderbeine, die mit kleinen Zangen ausgestattet sind, mit denen Nahrung aufgenommen werden kann.Das erste Paar Gehbeine wird als Pedipalpen (2) bezeichnet, während die restlichen vier Paare (3) einfach als Gehbeine bezeichnet werden. Die ersten Segmente der Gehbeine werden Coxa genannt, die in den ersten vier Beinpaaren in viele borstige Stacheln umgewandelt werden, die dazu dienen, Nahrung zu zerkleinern und in Richtung des zentral gelegenen Mundes zu schieben (5). Die Coxa des fünften Beinpaares trägt ein kurzes spachtelförmiges Paddel, das zum Reinigen der Kiemen dient. Diese Beine enthalten auch mehrere blattartige Fortsätze, die der Pfeilschwanzkrebs verwendet, um Schlamm und Schlamm zu schieben und zu entfernen, wenn er sich gräbt. Hinter und medial des fünften Gehbeinpaares befindet sich ein Paar kleiner, stacheliger Gebilde namens Chiliria (4), deren Ursprung und Funktion noch umstritten sind. Andere beschriftete Strukturen, die auf dem Bild zu sehen sind, umfassen die hinteren Enden des Panzers (8), das Genitaloperculum (6) und drei Paare von Kiemenopercula (6), die die Buchkiemen bedecken.

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Dieses Bild zeigt die äußere Anatomie der posterior-ventralen Oberfläche eines kleinen, erhaltenen Pfeilschwanzkrebses. Beachten Sie die fünf Paare flacher Platten auf dem Bauch. Das erste Plattenpaar bildet das Genitaloperculum (1), das die Genitalporen durch die Gameten abgeworfen werden. Der Rest dieser Platten sind die Kiemenopercula (2), die stark vaskularisierte Gewebefalten, sogenannte Buchkiemen, bedecken, die die Atmungsorgane von Pfeilschwanzkrebsen sind. Beim Eintauchen schlagen diese Falten fast ständig, um einen kontinuierlichen Wasserfluss über die Atmungsflächen der Buchkiemen zu gewährleisten. Andere markierte Strukturen umfassen die hinteren Enden des Panzers (3), das proximale Ende des Telsons (4) und den Anus (5).

Genitaloperculum & Poren

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Dieses vergrößerte Bild zeigt das genitale Operculum (1) eines konservierten Pfeilschwanzkrebses, das abgelenkt wurde, um die daran befestigten Genitalporen (2) freizulegen, durch die Gameten freigesetzt werden. Bei der Paarung schaufeln die Weibchen kleine Vertiefungen im Sand aus und legen 200-300 große Eier ab, die dann vom Männchen befruchtet werden. Die restlichen markierten Strukturen sind drei der Kiemenopercula (3), die die Buchkiemen bedecken, die die Atmungsorgane der Merostomen sind.

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Dieses Bild zeigt den vorderen Teil einer kommerziell präparierten Präparationshalterung eines Krebses. Zu den markierten Strukturen gehören die paarigen Antennen (1), die Antennen (2), das erste Paar Gehbeine, Chelipeds genannt (3), die verbleibenden vier Paare von Gehbeinen (4) und die Facettenaugen (5). Ebenfalls beschriftet ist ein Teil des Magens (6).

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Dieses Bild zeigt den hinteren Teil einer kommerziell präparierten Präparationshalterung eines Krebses. Zu den markierten Strukturen gehören die Kiemen (1), die Verdauungsdrüse (2), die dorsale Bauchschlagader (3), der Darm (4) und das Herz (5). Beachten Sie, dass die Kiemen, das Herz und die dorsale Baucharterie mit rotem Latex injiziert wurden, während der Darm mit blauem Latex injiziert wurde, um sie besser sichtbar zu machen.

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Das obige Bild stammt von einem Plastikmodell eines weiblichen Krebses. Auf den Bildern sind die wichtigsten inneren Organe dargestellt. Für Nahaufnahmen verschiedener Regionen des Krebses klicken Sie auf den entsprechenden Link unten.

Nahaufnahme des vorderen Bereichs

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Das obige Bild zeigt einige der Organe und Strukturen der vorderen Hälfte eines weiblichen Krebses. Rot markierte Strukturen sind: das Podest (1), eine Antenne (2), die Antennules (3), ein Facettenauge (4), ein Cheliped (5), das supraösophageale Ganglion (6), der ventrale Nervenstrang (7 ), der Magen (8), die "Zähne" der Magenmühle im Magen (9), der Darm (10), die Verdauungsdrüse (11), die grüne Drüse (12), das Herz (13) und die Bauchbeugemuskel (14).

Nahansicht der mittleren Region

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Das obige Bild zeigt einige der Organe und Strukturen der mittleren Region eines weiblichen Krebses. Rot markierte Strukturen sind: der Magen (1), die "Zähne der Magenmühle (2), der Darm (3), die Verdauungsdrüse (4), ein Segmentganglion am ventralen Nervenstrang (5), das Herz (6), die ventrale Bauchschlagader (7), der Bauchbeugemuskel (8), der Eierstock (9) und der Eileiter (10).

Nahaufnahme der hinteren Region

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Das obige Bild zeigt einige der Organe und Strukturen der hinteren Hälfte eines weiblichen Krebses. Rot markierte Strukturen sind: die dorsale Bauchschlagader (1), die ventrale Bauchschlagader (2), das ventrale Nervenstrang (3), ein segmentales Ganglion am ventralen Nervenstrang (4), der Darm (5), der Anus (6), der Bauchstrecker-Muskel (7), der Bauch-Beuge-Muskel (8), der Uropod (9), das Telson (10), das Ovar (11) und der Eileiter (12).

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Dieses Bild, das jeweils eines der 19 Paar Anhängsel eines Krebses zeigt, das in einen Plastikblock eingebettet ist, veranschaulicht schön das Konzept der seriellen Homologie, bei der eine Reihe von anfänglich ähnlichen, homologen Körperteilen modifiziert wurden, um unterschiedliche Aufgaben zu erfüllen. Die ersten beiden Anhängselpaare, Antennule (1) und Antennen (2) genannt, sind hauptsächlich am Tast- und Geschmackssinn beteiligt. Die Mandibeln (3) dienen zum Beißen und Zerkleinern von Nahrung. Die Mandibeln sind von dünnen, lebensmittelverarbeitenden Strukturen bedeckt, die als erster Oberkiefer (4) und zweiter Oberkiefer (5) bezeichnet werden. Als nächstes kommen drei Maxillipedenpaare (6-8), die an Berührung, Geschmack und Umgang mit Lebensmitteln beteiligt sind.

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Nach den Maxillipeds kommen fünf Paar Laufbeine, von denen die ersten, die Chelipeds (9) genannt werden, mit kräftigen Zangen ausgestattet sind, die zum Fangen und Handhaben von Beute sowie zur Verteidigung verwendet werden können. Die restlichen Gehbeine (10-13) dienen der Fortbewegung und dem Greifen.

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Nach den Gehbeinen kommen gepaarte Anhängsel, die Schwimmer genannt werden. Je nach Geschlecht des Individuums können die Schwimmmäntel unterschiedlich modifiziert werden. Bei den Männchen wird das erste Schwimmerpaar (14) Gonopoden genannt, weil sie für die Spermienübertragung modifiziert wurden. Bei den Weibchen wird das erste Paar Schwimmmäntel (die rudimentär sind) zum Tragen der Eier und Jungen verwendet. Die verbleibenden Schwimmmännchen (15-18) bei Männchen und Weibchen können verwendet werden, um Strömungen für die Wasserzirkulation über den Kiemen zu erzeugen. Die letzten paarigen Anhängsel werden als Uropoden (19) bezeichnet, die zusammen mit dem endständigen, ungepaarten Telson (20) den Schwanzfächer bilden, der der Fortbewegung und dem Eischutz dient.

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Dieses Bild zeigt eine ventrale Ansicht eines männlichen konservierten Krebses. Das Männchen ist leicht vom Weibchen zu unterscheiden durch das Vorhandensein eines Paars modifizierter erster Schwimmer, die Gonopoden (1) genannt werden, steife Strukturen, die vergrößert und nach vorne gerichtet sind. Die Gonopoden werden vom Männchen verwendet, um Sperma auf das Weibchen zu übertragen. Beachten Sie auch die kleinen Öffnungen (die erweitert wurden, um sie besser sichtbar zu machen) zu jedem Samenleiter (2) an der Basis des fünften Gehbeinpaares. Die Vasa deferentia leitet Spermien von den Hoden zur Außenseite des Krebses. Obwohl Teile des dritten (3), vierten (4) und fünften (5) Gehbeins zu sehen sind, wurden die verbleibenden Schwimmer und die meisten Bauchsegmente aus Gründen der Übersichtlichkeit entfernt.

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Dieses Bild zeigt eine ventrale Ansicht eines weiblichen konservierten Krebses. Anders als bei Männchen, bei denen das erste und das zweite Schwimmerpaar kräftige, nach vorne gerichtete Strukturen sind, sind alle Schwimmmännchen (1) des Weibchens weich und etwas durchscheinend. Beobachten Sie beim Weibchen die Öffnung zum Samenbehälter (2), der die Spermien vom Männchen aufnimmt, sowie die Öffnungen zu den Eileitern (3), die sich an der Basis des dritten Gehbeinpaares (4) befinden. . Hinweis: Diese Öffnungen wurden erweitert, um sie besser sichtbar zu machen.

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Das obige Bild zeigt eine Rückenansicht eines konservierten Krebses. Beachten Sie, dass der Cephalothorax dieses Zehnfußkrebses von einem harten Panzer (5) bedeckt ist, der anterior in einem spitzen Rostrum (4) endet. Hinter dem Cephalothorax befindet sich das segmentierte Abdomen (6), das in einer ungepaarten Struktur, dem Telson (13), endet. Das Telson bildet zusammen mit den paarigen Uropoden (12) den Schwanzfächer der Krebse. Beobachten Sie auch die ersten beiden Anhängselpaare, die Antennen (1) und Antennen (2), die an sensorischen Funktionen wie Tasten und Schmecken beteiligt sind, und das große Facettenauge (3). Wie der Name schon sagt, haben alle Dekapoden fünf Paar Laufbeine, von denen das erste Cheliped (7) genannt wird, die zur Nahrungsaufnahme und Verteidigung dienen. Das zweite (8), dritte (9), vierte (10) und fünfte (11) Laufbein sind ebenfalls sichtbar. Für Nahaufnahmen der vorderen und hinteren Hälfte des Krebses siehe unten:

Anteriore Nahaufnahme

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Das obige Bild zeigt eine Dorsalansicht der vorderen Hälfte eines konservierten Krebses. Beachten Sie noch einmal, dass der Cephalothorax dieses Zehnfußkrebses von einem harten Panzer (9) bedeckt ist, der anterior in einem spitzen Rostrum endet (8). Ebenfalls auf dem Bild zu sehen sind die Antennen (1), Antennen (2), Facettenauge (3) sowie das erste Paar Laufbeine, Chelipeds genannt (4) sowie das zweite (5), dritte (6) und vierte (7) Paar Gehbeine.

Posterior-Nahaufnahme

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Das obige Bild zeigt eine Dorsalansicht der hinteren Hälfte eines konservierten Krebses. Hinter dem Cephalothorax, der aus einem zähen Chitinpanzer (1) besteht, befindet sich der segmentierte Hinterleib (2), der in einem ungepaarten Telson (7) endet, das zusammen mit den gepaarten Uropoden (6) den Schwanzfächer der Krebse bildet. Auf dem Bild sind auch Teile des dritten (3), vierten (4) und fünften (5) Gehbeinpaares zu sehen.

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Das obige Bild zeigt eine ventrale Ansicht der Mundregion von konservierten Krebsen. Gepaarte Anhängsel, die zu sehen sind, umfassen die Fühler (1), Fühler (2), Unterkiefer (3), die zum Kauen und Zerkleinern von Nahrung verwendet werden, einer der zweiten Oberkiefer (4), der zusammen mit dem ersten Oberkiefer (von diesen Strukturen bedeckt) ) am Umgang mit Lebensmitteln beteiligt sind, die geißelnartigen Spitzen der ersten Oberfüßer (5), die größtenteils vom Panzer bedeckt sind, eines der zweiten Oberfüßer (6), der dritten Oberfüßer (7) und des ersten Paars gehen Beine, die Chelipeden genannt werden (8). Auf dem Bild sind auch die Öffnungen zu den grünen Drüsen (9) zu sehen, die mit einer Sonde geöffnet wurden, um sie besser sichtbar zu machen.

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Diese dorsale Ansicht eines konservierten Krebses zeigt die Anordnung der Bauchmuskeln. Beachten Sie die Bauchbeugemuskeln (1), die den größten Teil des Bauches ausfüllen. Diese kräftigen Muskeln dienen dazu, den Bauch zu beugen (beugen) und liefern die Kraft für den schnellen Rückwärtsstoß des Schwanzes, wenn der Krebs alarmiert ist. Beachten Sie auch die beiden Längsbänder der Bauchstrecker-Muskeln (2), die zur besseren Sichtbarkeit nach hinten ausgelenkt wurden. Diese Muskeln, die an der dorsalen Seite des Thorax und des Abdomens verlaufen, werden beim schwachen Erholungshub verwendet, nachdem der Schwanz von den Bauchbeugemuskeln gebeugt wurde. Es sind diese beiden Muskelgruppen, die den größten Teil des "Fleisches" liefern, das in Krebsschwänzen (oder Hummerschwänzen) gegessen wird! Auf der Dissektion sind auch der Darm (3), eines der fünften Laufbeine (4), der Panzer (7), die Uropoden (5) und das Telson (7) sichtbar.

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Diese Seitenansicht der linken Seite eines konservierten Krebses mit entferntem Panzer zeigt einige Merkmale der inneren Anatomie dieses Krebstieres. Zu den markierten Strukturen gehören eine der beiden grünen Drüsen (1), die bei der Osmoregulation und Ausscheidung wirken, eines der Facettenaugen (2), die Verdauungsdrüse (3), eine der beiden Unterkiefermuskelgruppen (4), die die Mandibeln kontrollieren , den Kiemen (5), einem Teil des Bauchstreckermuskels (6), einem Teil des fünften Gehbeins (7) und einem der dritten Maxillipeden (8). Um eine vergrößerte Ansicht des vorderen Teils des Krebses zu sehen, die einige der gleichen Strukturen zeigt, siehe unten.

Innere Anatomie des Flusskrebses (vorderer Bereich)

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Das obige Bild zeigt einige der Organe und Strukturen der vorderen linken Seite eines konservierten Krebses. Zu den markierten Strukturen gehören die Kiemen (1), die Verdauungsdrüse (2), die grüne Drüse (3), das Facettenauge (4) und das Cheliped (5).

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Dieses Bild zeigt eine Dorsalansicht der vorderen Hälfte eines konservierten Krebses mit entferntem Panzer. Zu den markierten Strukturen gehören der Magen (1), die Verdauungsdrüsen (2), die vordere Magenmuskulatur (3), eine der hinteren Magenmuskulatur (4), eine der beiden Unterkiefermuskelgruppen (5), das Herz (6) und Kiemen (7), die zu den Seiten abgelenkt wurden, um die anderen Strukturen besser sichtbar zu machen.

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Das obige Bild stammt von einem Modell einer weiblichen Heuschrecke. Gezeigt werden die Hauptstrukturen und inneren Organe sowie die verschiedenen Strukturen, aus denen das Heuschreckenmaul besteht. Für beschriftete Nahaufnahmen klicken Sie auf die Links unten.

Nahaufnahme des vorderen Bereichs

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Das obige Bild zeigt einige der Organe und Strukturen der vorderen Hälfte einer weiblichen Heuschrecke. Rot markierte Strukturen sind die Antennen (1), Facettenauge (2), Hirnganglion (3), ventraler Nervenstrang (4), Speiseröhre (5), Kropf (6), Proventriculus (7), Luftsack (8) und Eierstöcke (9). Rot markierte Teile der gegliederten Beine sind Coxa (10), Trochanter (11), Femur (12), Tarsus (13) und Klaue (14). Ebenfalls dargestellt sind die Vorderkanten des Vorderflügels (15) und des Hinterflügels (16).

Nahaufnahme der hinteren Region

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Das obige Bild zeigt einige der inneren Organe und Strukturen der hinteren Hälfte einer weiblichen Heuschrecke. Rot markierte Strukturen sind Vorderflügel (1) und Hinterflügel (2) sowie Trochanter (3), Femur (4), Tibia (5) und Tarsus (6) des Hinterbeins. Andere beschriftete Strukturen sind der Proventriculus (7), Darm (8), Rektum (9), Anus (10), Eierstöcke (11), Vagina (12), Luftsäcke (13), Stigmen (14), Malpighische Tubuli (15 ) und ventraler Nervenstrang.

Mundwerkzeuge Einsatz Nahaufnahme

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Das obige Bild zeigt die verschiedenen Strukturen, aus denen die Nahrungshandhabungs- und Kauteile des Heuschreckenmauls bestehen, sowie die drei einfachen Augen namens Ocelli (7) und zwei Facettenaugen (8). Zu den gekennzeichneten Mundwerkzeugen gehören das Labrum (1), die Mandibeln (2), die Schamlippen (3), die Schamlippen (4), die Oberkieferpalpen (5) und die Maxillae (6).

Cherax quadricarinatus (Rotkrallenkrebs)

C. quadricarinatus ist ein Wasserkrebs, der in seinem natürlichen Verbreitungsgebiet (Queensland und Northern Territory in Australien und südöstliches Papua-Neuguinea) in einer Vielzahl von Lebensräumen natürlich verbreitet ist. Aufgrund der harten Physik.

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Bilder

Identität

Bevorzugter wissenschaftlicher Name

Bevorzugter allgemeiner Name

Andere wissenschaftliche Namen

• Astacus quadricarinatus von Martens, 1868
• Chaeraps quadricarinatus (von Martens, 1868)
• Cheraps quadricarinatus (von Martens, 1868)

Internationale gebräuchliche Namen

• Deutsch: Australische Langusten Australische Rote Krallenkrebse Süßwasser-Blaukrallenkrebse Süßwasserkrebse Nord-Queensland yabby Queensland-Rote Krallenkrebse Rote Krallenkrebse Rotkralle tropische Blaue Krebse

Lokale gebräuchliche Namen

• Australien: beekodl elparra juin-ju junju laamballay mintoola ndaag piccool Queensland marron red claw krebse red claw marron ruja yandurrer
• Frankreich: ecrevisse Australienne ecrevisse redclaw du Queensland
• Niederlande: Australische kreeft roodschaarkreeft
• USA: Australische Langusten

Zusammenfassung der Invasivität

C. quadricarinatus ist ein Wasserkrebs, der in seinem natürlichen Verbreitungsgebiet (Queensland und Northern Territory in Australien und südöstliches Papua-Neuguinea) in einer Vielzahl von Lebensräumen natürlich verbreitet ist. Aufgrund der rauen physikalischen Bedingungen, an die es sich in seinem natürlichen Verbreitungsgebiet angepasst hat, C. quadricarinatus hat eine robuste Natur mit breiten Toleranzen gegenüber Umweltextremen. Diese Umweltverträglichkeit, kombiniert mit ihrer schnellen Wachstumsrate und relativ großen Abmessungen, macht sie zu einer idealen Art für Aquakultur und Aquarienhandel.

In Australien begann das kommerzielle Interesse an dieser Art Ende der 1980er Jahre, als sie in Westaustralien und New South Wales eingeführt wurde. Ab den 1990er Jahren erhielten viele Länder in Südasien (einschließlich China), Nord- und Südamerika, Neukaledonien, Afrika, Israel und Teilen Europas Genehmigungen für die Einfuhr von Brut- und Jungtieren. Etablierte, verwilderte Populationen werden in Ecuador, Israel, Mexiko, Jamaika, Paraguay, Puerto Rico, Singapur, Südafrika, Thailand und Sambia gemeldet.

Keine Studien haben das invasive Potenzial von C. quadricarinatus und die negativen Auswirkungen, die es auf die eingedrungenen Ökosysteme haben kann. Es werden Bedenken hinsichtlich seines Potenzials geäußert, einheimische Krebstiere und andere Bestandteile der eingedrungenen Gemeinschaften zu verdrängen. Es kann auch ein Vektor von Parasiten und Krankheiten sein.

Taxonomischer Baum

• Domäne: Eukaryota
• Königreich: Metazoa
• Stamm: Arthropoden
• Unterstamm: Krebstiere
• Klasse: Malacostraca
• Unterklasse: Eumalacostraca
• Bestellen: Decapoda
• Unterauftrag: Reptantia
• Unbekannt: Parastacoidea
• Familie: Parastacidae
• Gattung: Cherax
• Spezies: Cherax quadricarinatus

Hinweise zur Taxonomie und Nomenklatur

Der taxonomische Status von Cherax quadricarinatus ist akzeptiert. Es wurden keine Unterarten vorgeschlagen, aber verschiedene „Stämme“ wurden unterschieden.

Macaranas et al. (1995) analysierten die genetische Struktur von 12 Populationen aus dem Northern Territory und North Queensland unter Verwendung von Allozymen und RAPD-Markern (randomly amplified polymorphic DNA). Die elektrophoretische Analyse von 28 Enzymloci ergab im Allgemeinen niedrige Schätzungen der Heterozygotie innerhalb jeder Population und niedrige Schätzungen der genetischen Differenzierung zwischen den Populationen mit Ausnahme eines festen allelischen Unterschieds am Carboanhydrase-Locus zwischen den Populationen der beiden Gebiete. Die Autoren erklärten die geringe genetische Variabilität unter den Populationen aus Nord-Queensland als Spiegel ihrer jüngsten Strahlung über den Golf von Carpentaria nach seiner Überschwemmung zwischen 18000 und 6000 BP. Im Gegenteil, die RAPD-Analyse von 7 Populationen hat jede von ihnen unterschieden und sogar nach geografischer Nähe gruppiert. RAPD-Analysen zeigten auch eine signifikante genetische Variabilität sowohl innerhalb der Art als auch innerhalb einzelner Populationen. Die Autoren schließen mit der Feststellung, dass RAPD-Fragmente für die Unterscheidung von Rotkrallenstämmen nützlich sind und ein Markierungssystem darstellen, das in Programmen zur genetischen Verbesserung von Krebsen verwendet werden könnte.

Der generische Name Cherax Es wird angenommen, dass es sich um eine falsche Schreibweise des griechischen Wortes ' . handeltcharax', was einen spitzen Pfahl bedeutet, d. h. ein Ding, das kratzt.

Beschreibung

Eine genaue Beschreibung von C. quadricarinatus wird von Souty-Grosset et al. (2006), wie folgt:

Körper: Panzer glatt mit einem Paar langer postorbitaler Kämme, die zwei Kiele an den vorderen Panzerstacheln an der Schulter des Panzers hinter der Halsrille bilden - einer vorstehend.Dorsale Oberfläche des Telsons ohne Stacheln, häutig über der hinteren Hälfte.

Rostrum: lang mit prominenten Apex proximalen Rändern mehr oder weniger parallel, erhaben und posterior wie zwei Kiele verlängert drei Paare kurzer seitlicher Dornen Mittelkarina fehlend.

Anhängsel: Chelipeds können bei erwachsenen Männchen sehr lang werden.

Chelae glatt, gerade mit schmalen Schneidkanten innerer Rand von Chelae propodus länger als Dactylus distaler oberer Rand von Propodus bei ausgewachsenen Männchen nicht verkalkt und bildet einen leuchtend rot-orange Fleck (daher gebräuchlicher englischer Name) Matte von Setae entlang der proximalen Schneiden der Chela fehlt. Deutlicher Sporn am unteren Rand der Cheliped Coxa. Antennenfuß mit deutlich hervortretendem Dorn. Die Antennen können bei erwachsenen Männern länger als die gesamte Körperlänge sein.

Länge: bis 35 cm Gesamtlänge, selten länger.

Farbe: blau, beige und rot gesprenkelt an Gelenken und Körper, rote Flecken seitlich an den Bauchsegmenten.

Eine morphometrische Analyse wurde von Gu et al. (1994). Bei Männchen mit einer Panzerlänge von 43 bzw. 45 mm wurde eine rasche Zunahme des relativen Wachstums der Chelabreite und der Chelipenlänge festgestellt. Männchen, die größer als diese Größe waren, hatten breitere Chelae und längere Chelipeds als Weibchen mit einer ähnlichen Panzerlänge. Bei Männern mit einer kürzeren Panzerlänge von <42 mm nahm das Verhältnis von Bauchbreite zu Panzerbreite mit der Panzerlänge zu, während es bei denen mit einer Panzerlänge ≥42 mm abnahm. Bei Weibchen mit einer Panzerlänge von < 49 mm nahm das Verhältnis mit der Panzerlänge zu, während es bei denen mit einer Panzerlänge ≥ 49 mm konstant blieb. Der Muskelanteil am Körpergewicht variierte mit der Panzerlänge und war bei Krebsen mit einer Panzerlänge von 74 mm am höchsten (34%).

Der rote Fleck auf dem Propodus von C. quadricarinatus Männchen hat viel Aufmerksamkeit auf sich gezogen, da es sich um eine sexuell dimorphe Struktur handelt. Nach Karplus et al. (2003) ist dieses Pflaster rätselhaft, weil es weich und unverkalkt ist und aus einer dünnen roten bis weiß-orangefarbenen Membran besteht. Es stellt eine Beeinträchtigung der Kampffähigkeit der Männchen dar, die wie viele andere Krallenkrebse diese Anhängsel in intra- und interspezifischen aggressiven Interaktionen nutzen. Eine Hypothese ist, dass der rote Fleck Informationen über das Geschlecht, die Größe und die Qualität seines Besitzers übermittelt.

Verteilung

Die Verbreitung dieser Art ist auf tropische und subtropische Klimazonen beschränkt (Semple et al., 1995). C. quadricarinatus ist in den Flüssen im Nordwesten von Queensland und in den nördlichen und östlichen Teilen des Northern Territory in Australien heimisch (Riek, 1969 Curtis und Jones, 1995) und in den Einzugsgebieten des südöstlichen Papua-Neuguineas (Holthuis, 1986). Die Art blieb dem Rest Australiens bis in die späten 1980er Jahre unbekannt, als das Interesse an ihrer Aquakultur begann (Lawrence und Jones, 2002). In dieser Zeit ungeachtet dessen C. quadricarinatus als eingeschränkte Art für den Import nach Westaustralien eingestuft wurde (Anonym, 1997), durfte das Potenzial für die Aquakultur des 'Walkamin'-Stamms im Ord Valley in East Kimberley unter Quarantäne bewertet werden (Doupé et al ., 2004). Anschließend wurde eine begrenzte Anzahl von Aquakulturlizenzen ausgestellt, aber kurz nachdem wilde Populationen von Rotklauen gefunden wurden, etablierten sich im Lake Kununurra, einem Ramsar-Feuchtgebiet, das durch Aufstau des Ord River innerhalb der Kimberley-Entwässerungsabteilung von Westaustralien gebildet wurde (Morgan et al., 2004 .). ). Die in der Aquakultur des Ord River verwendete Rotkralle ist jedoch eine genetisch andere Sorte als die, die heute im Kununurra-See gefunden wird, was auf eine andere Quelle der Einführung hinweist. Wie von Doupé et al. (2004) können die verwilderten Populationen das Ergebnis illegaler Umsiedlungen durch Freizeitfischer sein. Die Rotkralle hat sich anschließend stromabwärts vom Kununurra-See in den unteren Ord-Fluss ausgebreitet, wo lokale Freizeitangler von Rotkralle in den Mägen von Barramundi berichtet haben (Lates calcarifer) und Wels (Arius spp.). Eingeführt verwilderte Populationen von C. quadricarinatus sind auch in Seensystemen im Norden und Südosten von Queensland zu finden (Lynas et al., 2007). Vor kurzem wurden in New South Wales Individuen in freier Wildbahn gefunden, was eine Diskussion darüber auslöste, ob sie eine Bedrohung für einheimische Krebsarten darstellen (Lynas et al., 2007).

Aus Australien wurde die Art in viele andere Länder mit subtropischem bis tropischem Klima exportiert, in denen eine kommerzielle Produktion versucht wurde. Viele Länder in Südasien (einschließlich China), Nord- und Südamerika, Neukaledonien, Afrika, Israel und Teilen Europas haben erhalten C. quadricarinatus Bestand in den 1990er Jahren. Ein Antrag auf Einfuhr nach Norwegen für Aquakulturzwecke wurde abgelehnt. In einigen Einführungsländern, zum Beispiel in den USA, gibt es keine Wildpopulationen von C. quadricarinatus wurden bisher berichtet (Lodge et al., 2000). In anderen Ländern, beispielsweise der Volksrepublik China, liegen keine Informationen vor. Im Gegenteil, es gibt Berichte über etablierte Wildpopulationen in Ecuador, Israel, Mexiko, Jamaika, Paraguay, Puerto Rico, Singapur, Südafrika, Thailand und Sambia (Romero, 1997, 2002 Williams et al., 2001 Moor, 2002 Zimmerman , 2003 Ahyong und Yeo, 2007 Bortolini et al., 2007 Garcia Vazquez, 2009). Details von C. quadricarinatus“ Einführung in Israel, Mexiko und Singapur werden in „History of Introduction and Spread“ berichtet.

Verteilungstabelle

Die Verteilung in dieser Übersichtstabelle basiert auf allen verfügbaren Informationen. Wenn mehrere Referenzen zitiert werden, können diese widersprüchliche Informationen zum Status enthalten. Weitere Details können für einzelne Referenzen im Abschnitt Verteilungstabellendetails verfügbar sein, der unter Bericht erstellen ausgewählt werden kann.

Afrika

Europa

Nordamerika

Ozeanien

Südamerika

Geschichte der Einführung und Verbreitung

C. quadricarinatus wurde Anfang der 1990er Jahre vom Ministerium für Fischerei des Landwirtschaftsministeriums aus den USA für Aquakulturzwecke nach Israel eingeführt (FAO-DIAS, 2011). Experimentelle Besatz- und Wachstumsstudien wurden bei der Agricultural Research Organization in Bet Dagan und der Aquacultural Research Station, Ministry of Agriculture, Dor durchgeführt (Karplus et al., 1995, 1998 Sagi et al., 1998). An letzterer Stelle wurde 1994 entdeckt, dass Individuen in offenen Erdteichen überwintert haben. Darüber hinaus wurde festgestellt, dass Individuen „in Abwesenheit von Zäunen“ in angrenzende Teiche und Entwässerungskanäle wanderten. Karpluset al. (1998) vertraten die Meinung, dass die Art in Israel überleben, sich ausbreiten und etablieren kann. Er war der Ansicht, dass die „Einführung von C. quadricarinatus in den südlichen Teil Israels, wo die Einführungsstellen durch die Wüste von natürlichen Wasserquellen isoliert sind, scheint sicherer zu sein“ und warnte vor der Einführung in die gemäßigten Gebiete. Wie von Snovsky und Galil (2011) angemerkt, blieb der Rat von Karplus unbeachtet, die Art wird jetzt in Kfar Monash in der zentralen Küstenebene aufgezogen, wo intensive Landwirtschaft in der Lage ist, Händlern und Zierladenketten in Israel bis zu 100.000.000 Jungtiere zu liefern und Europa (http://www.aquology.com). Im Januar 2011 wurde ein großes Exemplar in seichtem Wasser (2-3 m Tiefe) am See Genezareth (See Tiberias), gegenüber der Promenade und dem Badestrand von Tiberias gefangen (Snovsky und Galil, 2011).

In Mexiko wurden die Rotkrallenkrebse mehrmals eingeführt, um kommerzielle Kulturen zu etablieren, und mehrere Unternehmen haben zumindest in den Bundesstaaten Colima, Distrito Federal, Morelos, Jalisco, Tamaulipas und Yucatan moderate Mengen für die lokalen Märkte produziert (Bortolini et al., 2007). Der erste Import von Rotkrallenkrebsen nach Mexiko erfolgte 1995, als die experimentelle Aquakulturanlage der Universidad Autónoma Metropolitana in Mexiko-Stadt einen kleinen Bestand aufbrachte, um ein Forschungsprogramm zu starten, um seine Eignung für die Kultivierung in Mexiko zu bestimmen (Ponce-Palafox et al., 1999). 1998 wurden Organismen in mehrere Forschungszentren in Ensenada, Baja California La Paz, Baja California Sur und Mérida, Yucatan, sowie in ein Aquakulturzentrum im Bundesstaat Morelos transferiert, seitdem haben mehrere andere Forschungszentren und Universitäten in ganz Mexiko begonnen Forschungsprojekte mit dieser Art. Wilde etablierte Populationen von C. quadricarinatus wurden 2005 in den Bundesstaaten Morelos und Tamaulipas gemeldet. C. quadricarinatus befindet sich anscheinend in einem Wasserpark, der eine sehr hohe Dichte erreicht und wahrscheinlich die von Parkbesuchern hinterlassenen Nahrungsreste und eine kontrollierte Umgebung ausnutzt, in der kein Fischen erlaubt ist (Bortolini et al., 2007). In Tamaulipas ist die Bevölkerung über ein 65 km langes Gebiet innerhalb eines Netzes von Bewässerungskanälen, die mit den Flüssen Guayalejo und Sabinas verbunden sind, weit verbreitet (Bortolini et al., 2007).

In Singapur haben seit 2000 Probenahmen und Beobachtungen in mehreren Wassereinzugsbecken das Vorhandensein von C. quadricarinatus. Krebse wurden aus mindestens drei der wichtigsten Stauseen Singapurs erfasst, nämlich Kranji, Lower Peirce und Upper Seletar (Ahyong und Yeo, 2007). C. quadricarinatus ist wahrscheinlich eine neue Einführung, die wahrscheinlich irgendwann zwischen Ende der 1990er und Anfang der 2000er Jahre verwildert wird. Es wird derzeit nicht für den menschlichen Verzehr gezüchtet, aber in den letzten zehn Jahren wurde es im Aquarienhandel populär. Als solche stammen die Wildpopulationen wahrscheinlich von versehentlichen oder absichtlichen Freisetzungen ab. Mehrere unabhängige Freigaben oder Fluchten von C. quadricarinatus sind wohl aufgetreten.

In Europa wurde allgemein angenommen, dass sich diese tropische Art nicht etablieren würde, wenn sie in die Wildnis entkommen würde. Aus diesem Grund ist er der einzige Krebs aus dem außereuropäischen Raum, der lebend nach Großbritannien importiert werden kann (Holdich et al., 1999). Im Gegenteil, da es das Potenzial hat, niedrige Wintertemperaturen zu überstehen, besteht die Gefahr, dass es sich vor allem in südeuropäischen Ländern durchsetzt. Seine Einführung und seine Kultur in England und Spanien dienen hauptsächlich dem Aquarianerhandel. Derzeit ist nur Italien an der Kultivierung von Rotkrallen für Lebensmittel beteiligt. Vor kurzem haben Koutrakis et al. (2007) berichtete über die Anwesenheit von C. quadricarinatus in Restaurantaquarien in der Stadt Igoumenitsa, Epirus, Griechenland, und die Verfügbarkeit der Art für Aquarienliebhaber (Perdikaris et al., 2005).

C. quadricarinatus wurde von der IUCN (2010) als am wenigsten besorgniserregend bewertet. Es gibt keine größeren Bedrohungen, die sich auf diese Art oder ihren Lebensraum auswirken, und es ist unwahrscheinlich, dass sie einen signifikanten Bestandsrückgang erfährt.

Einführungen

Gefahr der Einführung

C. quadricarinatus hat ein erhebliches Potenzial für die Wirtschaftskultur. Hohe Wachstumsraten und Toleranz gegenüber großen Schwankungen der Wasserqualität machen die Art für den Anbau geeignet (Anson und Rouse, 1994), obwohl sich die Industrie in Australien und anderswo auf der Welt relativ langsam entwickelt hat (Lawrence und Jones, 2002). Außerdem hat die Widerstandsfähigkeit und auffällige Färbung dieser Art sie auch im Aquarienhandel weltweit beliebt gemacht (Ahyong und Yeo, 2007). Es gibt auch den Glauben, dass es sich um eine tropische Art handelt, C. quadricarinatus würde sich in gemäßigten Ländern nicht etablieren, wenn er in die Wildnis entkommen würde. Im Gegenteil, da es das Potenzial hat, niedrige Wintertemperaturen zu überstehen, besteht die Gefahr, dass es sich vor allem in Mittelmeerländern (z zu seinem Anbau. Das Risiko steigt mit der Aussicht auf eine globale Erwärmung.

Lebensraum

C. quadricarinatus ist eine nicht grabende Art, die eine Vielzahl von Lebensräumen toleriert, von schnell fließenden Flüssen und Küstenbächen bis hin zu langsameren Oberläufen von Flüssen, Seen, Lagunen und Billabongs (Wingfield, 2002). Rotkralle scheint jedoch felsige Lebensräume mit vielen Höhlen zum Erkunden und zur Nahrungssuche sowie zum Schutz während der Mauser zu bevorzugen (Souty-Grosset et al., 2006). Billabongs sind häufig stark eutroph mit schlechter Wasserqualität und verkleinern sich zunehmend, wenn das Wasser verdunstet. Krebse werden daher in wenigen verbleibenden Wasserbecken eingesperrt, in denen sie bis zur Regenzeit koexistieren und eine für Krebsarten ungewöhnliche gesellige Lebensweise zeigen.

Habitatliste

Biologie und Ökologie

Neben der Studie von Macaranas et al. (1995) über die genetische Struktur einiger Populationen konzentrierte sich eine neuere Studie auf die genetische Grundlage intergeschlechtlicher Individuen.

Parneset al. (2003) testete ein Geschlechtsbestimmungsmodell für C. quadricarinatus bei denen intergeschlechtliche Individuen (funktionell männlich) aus genetischer Sicht als weiblich angenommen wurden (WZ). Einzelne Kreuzungen wurden zwischen intergeschlechtlichen und weiblichen Krebsen durchgeführt, während Kontrollkreuzungen zwischen normalen Männchen und Weibchen durchgeführt wurden. Die Kontrollkreuzungen ergaben in den meisten Fällen das erwartete 1:1-Geschlechtsverhältnis bei den F1-Nachkommen. Kreuzungen zwischen intergeschlechtlichen Individuen und Weibchen ergaben bei den meisten Kreuzungen ein Geschlechterverhältnis von 1:3 (männlich: weiblich). Nach der Hypothese sollten ein Drittel der Weibchen, die bei einer Kreuzung eines Weibchens mit einem intergeschlechtlichen Tier hervorgebracht werden, WW-Weibchen sein. Die Hypothese wurde getestet, indem normale Männchen mit F1-Weibchen gekreuzt wurden, die Nachkommen von intersexuellen Vätern waren. Diese Kreuzungen ergaben fast 100 % Weibchen, ein Ergebnis, das dem oben vorgeschlagenen Modell der Geschlechtsbestimmung für . entspricht C. quadricarinatus und der weibliche WZ-Genotyp von intergeschlechtlichen Individuen.

Die molekulare Vielfalt in Wildbeständen dieser Art in Australien und Papua-Neuguinea wurde von Baker et al. (2008).

Reproduktionsbiologie

Die verfügbaren Studien auf C. quadricarinatus“ Reproduktionsbiologie wurden hauptsächlich dazu bestimmt, die Produktion von Zuchtkrebsen zu optimieren. King (1993) zeigte beispielsweise, dass geschlechtsreife C. quadricarinatus gehalten bei 25°C mit einer 12L:12D Photoperiode, die das ganze Jahr über erzeugt wird. Weibchen konnten zwischen den jährlichen Häutungen zweimal und möglicherweise dreimal laichen, obwohl sich nicht alle Weibchen paaren oder mehrfach laichen.

Yeh und Rouse (1995) untersuchten die Auswirkungen der Wassertemperatur auf C. quadricarinatus’ Laichrate, die ihren Anstieg mit der Temperatur zeigt, wobei 30°C die höchste Laichrate bieten. Zwischen Besatzdichten von 10, 15 und 20 m -2 oder Geschlechterverhältnissen von 1:1, 1:3 und 1:5 M:F wurde hingegen kein Unterschied festgestellt. Eine Kombination aus Dichte von 20 m -2 , Geschlechterverhältnis von 1:5 M:F, hoher Temperatur und langer Tageslänge (14L:10D) waren wirksam, um die Laichraten zu erhöhen, aber diese Bedingungen können nicht länger als 3 Monate aufrechterhalten werden.

Barkiet al. (1997) verglichen das jährliche Laichen und die Häutung in Laborkrebsgruppen bei einem Geschlechterverhältnis von 1:4 M:F bei konstanter Temperatur (26–28°C) und entweder einer Umgebungs- oder einer kontrollierten (14L:10D) Photoperiode. Ein ähnliches jährliches Muster von Laichen und Häutung war unter den beiden Photoperioden-Regimen offensichtlich. Die Weibchen laichen dreimal und häuten sich im Durchschnitt zweimal im Jahr. Die meisten Laichvorgänge fanden im Frühjahr und Sommer statt, und die Mauser fand hauptsächlich nach der Brutzeit, aber auch zwischen den Laichen statt.

Informationen, die auch auf verwilderte Populationen angewendet werden können, sind wie folgt:

Männliche und weibliche Rotkralle können leicht durch das Vorhandensein des roten Flecks auf den Chela der Männchen unterschieden werden. Die Lebensdauer beträgt 4-5 Jahre, basierend auf einer maximalen Größe von etwa 650 g. Die Geschlechtsreife wird mit 6-12 Monaten bei einem Körpergewicht von ca. 110-120 g erreicht. Männliche Exemplare sind mit zwei Jahren ausgewachsen, wenn sie ein Gewicht von etwa 400 g erreichen. In Queensland reifen Rotkrallen normalerweise im Alter von etwa 6 Monaten (45-50 g), aber in Farmen ist es möglich, Tiere für später reifende Tiere auszuwählen (http://www.nt.gov.au/dpifm). Da die Weibchen bei der Reife aufhören zu wachsen, ist die Wahrscheinlichkeit, dass größere Weibchen laichen, daher geringer: Die Auswahl der größten Weibchen als Brutbestand kann die Selektion für spät reifende Individuen beeinflussen.

Das männliche Fortpflanzungssystem besteht aus paarigen Hoden, vasa deferentia, und Genitalanhangsgebilde Spermatogenese tritt hauptsächlich in den Samenazini der Hoden auf. Spermatiden, die nach der Meiose gebildet werden, durchlaufen eine komplizierte Metamorphose, bis die aflagellaten Spermatozoen gebildet werden (An et al., 2011).

Die Physiologie der Eierstöcke, die Entwicklung der Eizellen und die Vitellogenese wurden in vielen Studien beschrieben (Sagi et al., 1996b Abdu et al., 2000, 2001, 2002 Soroka et al., 2000 Serrano-Pinto et al., 2003 Khalaila et al., 2004). Zum Beispiel die Entwicklung der Eierstöcke von C. quadricarinatus Weibchen und die Beziehungen zwischen Gonadenreifung, Oozytenentwicklung und der Reihenfolge des Auftretens spezifischer Polypeptide im Eierstock und der Hämolymphe wurden von Abdu et al. (2000).Es wurden zwei anatomisch unterschiedliche Typen von primär-vitellogenen Ovarien gezeigt, einer mit milchig-weißen Eizellen und der andere mit zwei verschieden gefärbten Eizellenpopulationen. Sekundär-vitellogene Ovarien sind durch das Vorhandensein einer synchron wachsenden großen Eizellengruppe zusammen mit Eizellen aller ersten vier, primär-vitellogenen Stadien gekennzeichnet. Polypeptide mit relativ niedrigen Molekulargewichten (65-95 kDa) und relativ höheren Molekulargewichten <100 kDa) wurden im primär-vitellogenen Ovar bzw. im sekundär-vitellogenen Ovar (und neu gelegten Eiern) gefunden.

Die Paarung besteht darin, dass das Männchen auf der Unterseite des Weibchens eine Spermatophore ablegt, aus der die Spermien innerhalb von 24 Stunden Eier befruchten. Die Eier werden unter dem Bauch des Weibchens gehalten, bis sie zum Schlüpfen bereit sind – normalerweise 6 bis 8 Wochen. Die Larven entwickeln sich in den Eiern. Die embryonale Entwicklung, die 42 Tage bei 26°C andauert, besteht aus 10 Stadien vor dem Schlüpfen und drei Phasen nach dem Schlüpfen (Garcé237a-Guerrero et al., 2003). Während der Embryonalentwicklung verfärben sich die Eier von grün zu braun und orange. Schließlich schlüpfen die Eier und die 12 mm langen Jungtiere bleiben 1 bis 2 Tage am Weibchen hängen, bevor sie sich als völlig unabhängige Miniatur-Erwachsene fortbewegen. Die Synchronität und der Grad der Paarungsaktivität, die Inkubationszeit und die juvenile Wachstumsphase werden hauptsächlich von der Wassertemperatur beeinflusst (Lawrence und Jones, 2002).

In Bezug auf andere Krebse, wie z Cherax-ZerstörerDie weibliche Fruchtbarkeit ist mit 300-1.000 Eiern pro Laich relativ gering. Es wurde gezeigt, dass die Anzahl sowohl der pleopodalen Eier als auch der Jungtiere (jedoch nicht das Gewicht der Jungtiere) positiv mit der weiblichen Größe korreliert (King, 1993, Barki et al., 1997).

Unter optimalen Teichbedingungen kann Rotkralle vom Schlüpfen bis zur kleinsten marktfähigen Größe (

30 g) innerhalb von 4 Monaten. Wenn in landwirtschaftlichen Betrieben Best-Practice-Techniken angewendet werden, erreicht die Mehrheit der Männchen innerhalb von 12 Monaten 100 g und die Weibchen 70 g (http://www.nt.gov.au/dpifm).

Schließlich ein herausragendes Merkmal von C. quadricarinatus, was diese Art zu einem idealen Studienmodell für sexuelle Determination und Plastizität macht, ist das Vorkommen von intergeschlechtlichen Individuen in Populationen mit einer Häufigkeit von 2-14% (Medley und Rouse, 1993 Sagi et al., 1996a). Intergeschlechtliche Individuen besitzen eine männliche Öffnung an einem der fünften Pereopoden und eine weibliche Öffnung am gegenüberliegenden dritten Pereopoden, sie besitzen auch eine androgene Drüse und einen aktiven Hoden auf der Seite der männlichen Öffnung und einen Eierstock auf der gegenüberliegenden Seite. Sie haben männliche sekundäre Geschlechtsmerkmale und fungieren als Männchen mit einem Eierstock in einem dauerhaft gehemmten, prävitellogenen Zustand. Es wurde festgestellt, dass die Entfernung der androgenen Drüse bei intergeschlechtlichen Krebsen die Verschiebung des Fortpflanzungssystems von einem permanent aktiven männlichen Zustand in einen weiblichen Zustand induziert. Dies beinhaltete Veränderungen in der Morphologie, Beendigung der Spermatogenese und Beginn der sekundären Vitellogenese, begleitet von der Induktion des Vitellogenin-Gens im Hepatopankreas (Sagi et al., 1996a).

Physiologie und Phänologie

Physiologische Studien haben sich hauptsächlich auf die Reproduktion und ihre endokrine Regulation konzentriert (z. B. Khalaila et al., 2001, 2002 Shechter et al., 2005). Beispielsweise wurde die Rolle der androgenen Drüse bei der Entwicklung der Geschlechtsmerkmale und der Physiologie des Fortpflanzungssystems untersucht, indem hypertrophierte androgene Drüsen (AG) in unreife weibliche Tiere implantiert wurden (Khalaila et al., 2001). Die große Mehrheit der Weibchen mit AG-Implantaten entwickelte männliche Propodi, einschließlich des für Männchen dieser Art charakteristischen roten Flecks. Die Entwicklung weiblicher sekundärer Geschlechtsmerkmale wie breiterer Bauch, breitere Endopoden und einfache Setzung wurden gehemmt. Am Ende des Experiments enthielten die Eierstöcke der AG-implantierten Weibchen hauptsächlich Eizellen im Lipidstadium, mit einer kleinen Anzahl von Eizellen im frühen Dotterstadium, was zeigt, dass sekundäre Geschlechtsmerkmale unter dem Einfluss der implantierten androgenen Drüse maskulinisiert wurden , wurde der Prozess der Vitellogenese unterdrückt, aber nicht vollständig eliminiert.

Physiologische Studien untersuchten die Dynamik des Calciumtransports zu vorübergehenden Calciumdepots (Gastrolithen) und zur Kutikula im Verlauf des Mauserzyklus (Shechter et al., 2008) sowie die Aktivität von Verdauungsenzymen (Proteasen, Carbohydrasen und Lipase) ( Figueiredo et al., 2001) und von insulinähnlichen Wachstumsfaktoren (Richardson et al., 1997).

C. quadricarinatus ist Allesfresser, wächst aber in Kultur gut auf Diäten mit einem hohen Anteil an billigem Pflanzenmaterial (Lawrence und Jones, 2002). Die optimale Nahrung für Jungtiere ist Zooplankton. Sie besitzen eine Reihe von Verdauungsenzymen, die die Verdauung einer breiten Palette organischer Materialien tierischen und pflanzlichen Ursprungs ermöglichen (Figueiredo et al., 2001). Es gibt Hinweise auf eine endogene Produktion von Cellulasen, die es Redclaw ermöglichen, Cellulose und ähnliche Zucker zu verdauen (Xue et al., 1999).

Umweltanforderungen

Die harten physikalischen Extreme seiner Verbreitung im tropischen Australien haben gegeben C. quadricarinatus eine robuste Natur mit breiten Toleranzen, insbesondere im Fall von Queensland-Stämmen. Über 70 % des Wachstums von Erwachsenen findet im Bereich von 23-31 °C statt. Die maximale Wachstumsrate der Schlüpflinge tritt auf, wenn die Temperatur etwa 30 °C beträgt und das Wachstum stoppt, wenn die Temperatur auf 15°C sinkt oder auf 35°C ansteigt, ihr thermischer Toleranzbereich zwischen 22°C und 32°C (King, 1994). Die tödlichen Grenzen liegen bei 9-10 °C und 34-35°C. Die Reproduktion findet nur statt, solange die Wassertemperatur über 23°C bleibt.

Das Überleben von C. quadricarinatus in Erdteichen bei winterlichen Umgebungstemperaturen wurde von Karplus et al. in der gemäßigten Zone in der zentralen Küstenebene Israels untersucht. (1998) . Obwohl an 6 Tagen minimale Tagestemperaturen von unter 10 °C gemessen wurden, betrug das Gesamtüberleben 60 % und die Gewichtsveränderung war minimal. Es kann kurze Zeiträume bei niedrigen Temperaturen (5°C) überstehen.

Für diese Art wurde auch eine Toleranz gegenüber Salzgehalten von bis zu 12 ppt über längere Zeiträume festgestellt. Dies ist für die Aquakultur von Vorteil. Erstens kann eine Aquakultur in leichtem Brackwasser möglich sein, und zweitens kann eine abschließende Spülung in Salzwasser vor der Vermarktung durchgeführt werden, wenn die Märkte dies verlangen. Im Allgemeinen wird Krebs als erstklassiges Meeresfrüchteprodukt mit einem feinen Geschmack vermarktet.

Redclaw ist in der Lage, unter Bedingungen mit sehr niedrigem gelöstem Sauerstoff (1 ppm) zu überleben. Wenn der gelöste Sauerstoff im Teichwasser unter 1 ppm sinkt, wandert die Rotkralle an den Rand des Teiches, wo der Sauerstoffgehalt im Allgemeinen höher ist, und wandert im Extremfall aus dem Teich über Land.

Meade und Watts (1995) untersuchten die Überlebensraten juveniler Rotkralle unter Exposition gegenüber unterschiedlichen Konzentrationen von Ammoniak, Nitrit und Nitrat. Die relativen Toleranzen von Krebsen gegenüber diesen Substanzen sind denen anderer Krebstierarten ähnlich. Bei Krebsen, die bis zu 25 mg L -1 Gesamt-Ammoniak-Konzentration, bis zu 10 mg L -1 Nitrit-Konzentration und bis zu 1000 mg L -1 Nitrat-Konzentration exponiert wurden, wurden keine Mortalitäten beobachtet. Krebse, die 50, 100 und 200 mg L -1 Gesamt-Ammoniakkonzentrationen ausgesetzt waren, überlebten durchschnittlich 40, 36 bzw. 14 h. Krebse, die 25, 50 und 100 mg L -1 Nitritkonzentrationen ausgesetzt waren, überlebten durchschnittlich 96, 22 bzw. 5 h.

Saker und Eaglesham (1999) zeigten, dass Rotkralle aus einem von einer Blüte des Cyanobakteriums befallenen Aquakulturteich geerntet wurde Zylindrospermopsis raciborskii Es wurde gezeigt, dass sich das giftige Alkaloid Cylindrospermopsin anreichert. Während der Blüte gesammelte Teichwasserproben enthielten 589 µg l -1 des Toxins und Krebse aus dem Teich enthielten Cylindrospermopsin in Konzentrationen von 4,3 µg pro g getrocknetem Hepatopankreasgewebe und 0,9 µg pro g getrocknetem Muskelgewebe. Trichome von C. raciborskii wurden im Darminhalt von Krebsen beobachtet, die während der Cyanobakterienblüte geerntet wurden, was darauf hindeutet, dass der wahrscheinlichste Mechanismus für die Akkumulation des Toxins die Aufnahme von Cyanobakterienzellen war.

Äußere Anatomie eines Krebses - Biologie

Vorbereitung:
In diesem Abschnitt werden die Schritte erläutert, die erforderlich sind, um Ihre Krebse für den Seziervorgang vorzubereiten.

1. Sie benötigen die folgenden Werkzeuge:

2. Flusskrebse in die Pfanne geben
Spülen Sie die Krebse mit Wasser ab und legen Sie sie in die Sektionspfanne. Der Krebs sollte mit dem Rücken nach oben auf seiner Bauchseite liegen.

1. Legen Sie die konservierten Krebse in ein Präpariertablett.

2. Beachten Sie, dass der Körper des Krebses in drei Teile unterteilt ist, den Kopf, den Cephalothorax und den Bauch.

3. Kopf – Identifizieren Sie die Facettenaugen auf dem Podestteil des Kopfes.

4. Cephalothorax – Finden Sie den Carapax, die Abdeckung der Cephalothorax-Region.

5. Beachten Sie die größeren Antennen und kleineren Antennen, die aus dem Rostrum herausragen.

6. Lokalisieren Sie auf der ventralen Seite den Mund mit den Mandibeln oder echten Kiefern. Die Mandibeln zerreißen das Futter und die anderen Gliedmaßen erkennen und halten Nahrung während der Nahrungsaufnahme.

7. Es gibt fünf Paar Gehbeine, die ventral mit der Panzerregion verbunden sind. Das erste Gehbein hat vergrößerte Zangen, die Chelipeds genannt werden, und wird verwendet, um Gegenstände zu manipulieren und Nahrung zu fangen und zu zerkleinern.

8. Abdomen – Dieser Abschnitt ist ein segmentierter Schwanz. Auf der Bauchseite befinden sich zahlreiche Schwimmer. Das erste Paar ist für die Übertragung von Spermien in paarungsbereite Paare modifiziert. Identifizieren Sie den Uropod und das Telson am hinteren Ende des Abdomens.

1. Die Kiemen befinden sich an der Außenseite der Körperhöhle in einem Raum zwischen der Körperwand und dem Panzer. Entfernen Sie ein Segment des Panzers auf einer Seite der Krebse, um sie freizulegen.

2. Nehmen Sie eines der Laufbeine ab und achten Sie auf die kleine Kieme, die am Bein befestigt ist.

1. Beachten Sie die Streckmuskeln, die den Schwanz strecken, und die Beugemuskeln, die den Schwanz einrollen und den Bauch des Krebses füllen.

1. Lokalisieren Sie ein Nervenpaar, das vom ventralen Nervenstrang um die Speiseröhre zum großen Ganglion oder Gehirn im Kopf führt. Kurze Nerven verbinden die Augen, Antennen und Antennen mit dem Gehirn.

1. Suchen Sie das rautenförmige Herz des offenen Kreislaufsystems. Das Herz schickt Blut durch mehrere Arterien in die Räume um die Organe. Nach dem Passieren der Kiemen fließt das Blut durch die Öffnungen (Ostien) darin zurück in das Herz.

VI.) Verdauungs- und Ausscheidungssysteme

1. Verfolgen Sie das Verdauungssystem vom Mund durch die Speiseröhre bis zum Herzmagen, wo die Nahrung zermahlen wird.

2. Vom Magen gelangt die Nahrung in den Darm, wo sie in den Blutkreislauf aufgenommen wird.

3. Als nächstes werden Lebensmittelabfälle durch den Anus ausgestoßen.

4. Finden Sie die grüne Drüse, die sich intern direkt hinter jeder Antenne und direkt unter dem Gehirn befindet. Diese Strukturen filtern flüssige Abfälle aus dem Blut.

1. Entfernen Sie das Herz, um die Gonaden (Fortpflanzungsorgane beim Männchen, die Hoden) zu sehen. Lokalisieren Sie die Hoden bei den männlichen Krebsen. Seien Sie vorsichtig, wenn Sie versuchen, sie zu finden, da sie extrem klein sind.

1. Lokalisieren Sie die cremig-gelben Eierstöcke bei den Weibchen.

1. Entsorgen Sie alle Krebsteile ordnungsgemäß in den mit Tierabfällen gekennzeichneten Behälter. Lassen Sie keine Teile in den Mülleimern oder im Waschbecken.

Schau das Video: Anatomy Insights #6 Anatomie der Krebstiere Crustacea (Kann 2022).