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Um welche Fischart handelt es sich?

Um welche Fischart handelt es sich?


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Heute haben wir diese Art von Fisch an der Ostsee in der Nähe von Danzig (PL) gefunden. Es ist ein sehr dünner "Fisch" mit einer Art Nadel anstelle der Nase. Es war ca. 5 cm lang und sehr lebendig. Wie heißt die Art?

PS. Kinder haben es in einem Eimer gefangen, nur um ein Foto zu machen - wir haben die Kreatur gleich nach der Fotosession freigelassen :)


Das sieht aus wie ein Seenadeln, möglicherweise ein gerader Seenadeln.

Siehe auch. Aber die Größe lässt auf einen Jugendlichen schließen?


Biologie und Physiologie neotropischer Süßwasserfische

Biologie und Physiologie neotropischer Süßwasserfische ist der umfassende Führer zu Fischarten, die im neotropischen Bereich vorherrschen. Es bietet die aktuellste Systematik, Klassifikation, anatomische, verhaltensbezogene, genetische und funktionierende Systeminformationen zu neotropischen Süßwasserfischarten. Dieses Buch beginnt mit der Analyse der Unterschiede in Phylogenie, Anatomie und Verhalten neotropischer Fische. Systeme wie kardiovaskuläre, respiratorische, renale, verdauungsfördernde, reproduktive, muskuläre und endokrine Systeme werden detailliert beschrieben. Dieses Buch befasst sich auch mit den Auswirkungen von Stress auf das Immunsystem von Fischen und wie Farbe und Pigmentierung die Physiologie und Artendifferenzierung beeinflussen.

Biologie und Physiologie neotropischer Süßwasserfische ist ein Muss für Fischbiologen und Zoologen. Studenten der Zoologie, Ichthyologie und Fischzucht werden dieses Buch auch nützlich finden, da es einige der seltensten und am wenigsten bekannten Fischarten der Welt behandelt.

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Inhalt

In der Biologie ist eine Sonde ein DNA- oder RNA-Einzelstrang, der zu einer interessierenden Nukleotidsequenz komplementär ist.

RNA-Sonden können für jedes Gen oder jede beliebige Sequenz innerhalb eines Gens zur Visualisierung von mRNA, [3] [4] [5] lncRNA [6] [7] [8] und miRNA in Geweben und Zellen entworfen werden. FISH wird verwendet, indem der zelluläre Reproduktionszyklus, insbesondere die Interphase der Kerne, auf Chromosomenanomalien untersucht wird. [9] FISH ermöglicht die Analyse einer großen Reihe von Archivfällen viel einfacher, um das punktgenaue Chromosom zu identifizieren, indem eine Sonde mit einer künstlichen chromosomalen Grundlage erstellt wird, die ähnliche Chromosomen anzieht. [9] Die Hybridisierungssignale für jede Sonde, wenn eine Nukleinanomalie nachgewiesen wird. [9] Jede Sonde zum Nachweis von mRNA und lncRNA besteht aus

20–50 Oligonukleotidpaare, wobei jedes Paar einen Raum von 40–50 bp abdeckt. Die Besonderheiten hängen von der verwendeten spezifischen FISH-Technik ab. Für den miRNA-Nachweis verwenden die Sonden eine proprietäre Chemie für den spezifischen Nachweis von miRNA und decken die gesamte miRNA-Sequenz ab.

Sonden werden oft von DNA-Fragmenten abgeleitet, die zur Verwendung im Humangenomprojekt isoliert, gereinigt und amplifiziert wurden. Die Größe des menschlichen Genoms ist im Vergleich zu der Länge, die direkt sequenziert werden konnte, so groß, dass es notwendig war, das Genom in Fragmente aufzuteilen. (Bei der abschließenden Analyse wurden diese Fragmente geordnet, indem eine Kopie jedes Fragments unter Verwendung sequenzspezifischer Endonukleasen in noch kleinere Fragmente verdaut wurde, die Größe jedes kleinen Fragments unter Verwendung von Größenausschlusschromatographie gemessen wurde und diese Informationen verwendet wurden, um zu bestimmen, wo die große Fragmente überlappten sich.) Um die Fragmente mit ihren individuellen DNA-Sequenzen zu erhalten, wurden die Fragmente in ein System sich kontinuierlich replizierender Bakterienpopulationen eingefügt. Klonische Bakterienpopulationen, wobei jede Population ein einziges künstliches Chromosom besitzt, werden in verschiedenen Labors auf der ganzen Welt gelagert. Die künstlichen Chromosomen (BAC) können in jedem Labor mit einer Bibliothek gezüchtet, extrahiert und markiert werden. Genomische Bibliotheken werden oft nach der Institution benannt, in der sie entwickelt wurden. Ein Beispiel ist die RPCI-11-Bibliothek, die nach dem Roswell Park Comprehensive Cancer Center (früher bekannt als Roswell Park Cancer Institute) in Buffalo, New York, benannt ist. Diese Fragmente liegen in der Größenordnung von 100.000 Basenpaaren und sind die Basis für die meisten FISH-Sonden.

Vorbereitungs- und Hybridisierungsprozess – RNA Edit

Zellen, zirkulierende Tumorzellen (CTCs) oder formalinfixierte Paraffin-eingebettet (FFPE) oder gefrorene Gewebeschnitte werden fixiert und dann permeabilisiert, um den Zugang zum Ziel zu ermöglichen. FISH wurde auch erfolgreich an unfixierten Zellen durchgeführt. [10] Eine zielspezifische Sonde, bestehend aus 20 Oligonukleotidpaaren, hybridisiert an die Ziel-RNA(s). Separate, aber kompatible Signalverstärkungssysteme ermöglichen den Multiplex-Assay (bis zu zwei Targets pro Assay). Die Signalverstärkung wird über eine Reihe von sequentiellen Hybridisierungsschritten erreicht. Am Ende des Assays werden die Gewebeproben unter einem Fluoreszenzmikroskop sichtbar gemacht.

Vorbereitungs- und Hybridisierungsprozess – DNA Edit

Zuerst wird eine Sonde konstruiert. Die Sonde muss groß genug sein, um spezifisch mit ihrem Ziel zu hybridisieren, aber nicht so groß, dass sie den Hybridisierungsprozess behindert. Die Sonde wird direkt mit Fluorophoren, mit Targets für Antikörper oder mit Biotin markiert. Die Markierung kann auf verschiedene Weise erfolgen, wie beispielsweise durch Nick-Translation oder Polymerase-Kettenreaktion unter Verwendung von markierten Nukleotiden.

Dann wird eine Interphase- oder Metaphase-Chromosomenpräparation hergestellt. Die Chromosomen sind fest mit einem Substrat, meist Glas, verbunden. Repetitive DNA-Sequenzen müssen durch Hinzufügen kurzer DNA-Fragmente zur Probe blockiert werden. Die Sonde wird dann auf die Chromosomen-DNA aufgebracht und während ungefähr 12 Stunden während der Hybridisierung inkubiert. Mehrere Waschschritte entfernen alle unhybridisierten oder teilweise hybridisierten Sonden. Die Ergebnisse werden dann mit einem Mikroskop, das den Farbstoff anregen und Bilder aufnehmen kann, visualisiert und quantifiziert.

Bei schwachem Fluoreszenzsignal kann eine Verstärkung des Signals erforderlich sein, um die Nachweisschwelle des Mikroskops zu überschreiten. Die Stärke des Fluoreszenzsignals hängt von vielen Faktoren ab, wie der Effizienz der Sondenmarkierung, dem Sondentyp und dem Farbstofftyp. An das Farbstoffmolekül sind fluoreszierend markierte Antikörper oder Streptavidin gebunden. Diese Nebenkomponenten sind so ausgewählt, dass sie ein starkes Signal haben.

FISH ist eine sehr allgemeine Technik. Die Unterschiede zwischen den verschiedenen FISH-Techniken sind normalerweise auf Variationen in der Sequenz und Markierung der Sonden und deren Kombination zurückzuführen. Sonden werden in zwei generische Kategorien unterteilt: zellulär und azellulär. Bei der Fluoreszenz-"in situ"-Hybridisierung bezieht sich die zelluläre Platzierung der Sonde

Die Sondengröße ist wichtig, da längere Sonden weniger spezifisch hybridisieren als kürzere Sonden, so dass häufig kurze DNA- oder RNA-Stränge (oft 10–25 Nukleotide), die zu einer bestimmten Zielsequenz komplementär sind, verwendet werden, um ein Ziel zu lokalisieren. Die Überlappung definiert die Auflösung der erkennbaren Merkmale. Wenn beispielsweise das Ziel eines Experiments darin besteht, den Bruchpunkt einer Translokation zu erkennen, dann definiert die Überlappung der Sonden – der Grad, in dem eine DNA-Sequenz in den benachbarten Sonden enthalten ist – das minimale Fenster, in dem der Bruchpunkt nachgewiesen werden kann .

Die Mischung von Sondensequenzen bestimmt die Art des Merkmals, das die Sonde erkennen kann. Sonden, die entlang eines ganzen Chromosoms hybridisieren, werden verwendet, um die Nummer eines bestimmten Chromosoms zu zählen, Translokationen anzuzeigen oder extrachromosomale Chromatinfragmente zu identifizieren. Dies wird oft als "Ganzchromosomenmalerei" bezeichnet. Wenn jede mögliche Sonde verwendet wird, würde jedes Chromosom (das gesamte Genom) fluoreszierend markiert, was für die Bestimmung von Merkmalen einzelner Sequenzen nicht besonders nützlich wäre. Es ist jedoch möglich, eine Mischung kleinerer Sonden zu erzeugen, die für eine bestimmte Region (Locus) der DNA spezifisch sind. Diese Mischungen werden verwendet, um Deletionsmutationen nachzuweisen. In Kombination mit einer bestimmten Farbe wird ein Locus-spezifisches Sondengemisch verwendet, um sehr spezifische Translokationen nachzuweisen. Spezielle Locus-spezifische Sondenmischungen werden oft verwendet, um Chromosomen zu zählen, indem sie an die zentromeren Regionen der Chromosomen binden, die charakteristisch genug sind, um jedes Chromosom zu identifizieren (mit Ausnahme von Chromosom 13, 14, 21, 22.)

Eine Vielzahl anderer Techniken verwendet Mischungen unterschiedlich gefärbter Sonden. Es kann eine Reihe von Farben in Mischungen von Fluoreszenzfarbstoffen nachgewiesen werden, sodass jedes menschliche Chromosom durch eine charakteristische Farbe unter Verwendung von Gesamtchromosomen-Sondenmischungen und einer Vielzahl von Farbverhältnissen identifiziert werden kann. Obwohl es mehr Chromosomen als leicht unterscheidbare Fluoreszenzfarbstoffe gibt, können Verhältnisse von Sondenmischungen verwendet werden, um sekundär Farben. Ähnlich wie bei der vergleichenden genomischen Hybridisierung wird die Sondenmischung für die Sekundärfarben durch Mischen des richtigen Verhältnisses von zwei Sätzen unterschiedlich gefärbter Sonden für dasselbe Chromosom erzeugt. Diese Technik wird manchmal als M-FISH bezeichnet.

Dieselbe Physik, die eine Vielzahl von Farben für M-FISH ermöglicht, kann für die Erkennung von Translokationen verwendet werden. Das heißt, benachbarte Farben scheinen eine Sekundärfarbe zu überlappen, wird beobachtet. Einige Assays sind so konzipiert, dass die Sekundärfarbe in interessierenden Fällen vorhanden ist oder fehlt. Ein Beispiel ist der Nachweis von BCR/ABL-Translokationen, bei denen die Sekundärfarbe eine Krankheit anzeigt. Diese Variante wird oft als Doppelfusions-FISH oder D-FISH bezeichnet. In der umgekehrten Situation – wo das Fehlen der Sekundärfarbe pathologisch ist – wird durch einen Assay veranschaulicht, der verwendet wird, um Translokationen zu untersuchen, bei denen nur einer der Bruchpunkte bekannt oder konstant ist. Locus-spezifische Sonden werden für eine Seite des Breakpoints und das andere intakte Chromosom hergestellt. In normalen Zellen wird die Sekundärfarbe beobachtet, aber nur die Primärfarben werden beobachtet, wenn die Translokation auftritt. Diese Technik wird manchmal als "Break-Apart-FISH" bezeichnet.

Einzelmolekül-RNA FISH Bearbeiten

Einzelmolekül-RNA-FISH, auch bekannt als Stellaris® RNA-FISH, [11] ist eine Methode zum Nachweis und zur Quantifizierung von mRNA und anderen langen RNA-Molekülen in einer dünnen Schicht einer Gewebeprobe. Durch die Anwendung mehrerer kurzer, einzeln markierter Oligonukleotidsonden können Targets zuverlässig abgebildet werden. [12] Die Bindung von bis zu 48 fluoreszenzmarkierten Oligos an ein einzelnes mRNA-Molekül liefert eine ausreichende Fluoreszenz, um jede Ziel-mRNA in einem Weitfeld-Fluoreszenzmikroskopiebild genau nachzuweisen und zu lokalisieren. Sonden, die nicht an die beabsichtigte Sequenz binden, erreichen keine ausreichende lokalisierte Fluoreszenz, um vom Hintergrund unterschieden zu werden. [13]

Einzelmolekül-RNA-FISH-Assays können im Simplex- oder Multiplex-Verfahren durchgeführt werden und können als Folgeexperiment zur quantitativen PCR verwendet oder gleichzeitig mit einem Fluoreszenz-Antikörper-Assay abgebildet werden. Die Technologie hat potenzielle Anwendungen in der Krebsdiagnose, [14] Neurowissenschaften, Genexpressionsanalyse [15] und Begleitdiagnostik.

Faser FISH Bearbeiten

In einer alternativen Technik zu Interphase- oder Metaphase-Präparaten, Faser-FISH, werden Interphase-Chromosomen so auf einem Objektträger befestigt, dass sie in einer geraden Linie gestreckt sind, anstatt wie beim herkömmlichen FISH eng gewickelt zu sein oder ein Chromosomengebiet einzunehmen Konformation, wie beim Interphase-FISH. Dies wird erreicht, indem entlang der Länge des Objektträgers eine mechanische Scherung angewendet wird, entweder auf Zellen, die auf dem Objektträger fixiert und dann lysiert wurden, oder auf eine Lösung gereinigter DNA. Zu diesem Zweck wird zunehmend eine Technik verwendet, die als Chromosomenkämmen bekannt ist. Die erweiterte Konformation der Chromosomen ermöglicht eine dramatisch höhere Auflösung – sogar bis hinunter zu einigen Kilobasen. Die Herstellung von Faser-FISH-Proben ist, obwohl konzeptionell einfach, eine ziemlich erfahrene Kunst, und nur spezialisierte Labors verwenden diese Technik routinemäßig. [16]

Q-FISH Bearbeiten

Q-FISH kombiniert FISH mit PNAs und Computersoftware, um die Fluoreszenzintensität zu quantifizieren. Diese Technik wird routinemäßig in der Telomerlängenforschung eingesetzt.

Flow-FISH Bearbeiten

Flow-FISH verwendet Durchflusszytometrie zur automatischen Durchführung von FISH unter Verwendung von Fluoreszenzmessungen pro Zelle.

MA-FISH Bearbeiten

Microfluidics-assisted FISH (MA-FISH) verwendet einen mikrofluidischen Fluss, um die Effizienz der DNA-Hybridisierung zu erhöhen, den teuren FISH-Sondenverbrauch zu senken und die Hybridisierungszeit zu verkürzen. MA-FISH wird zur Erkennung der HER2 Gen im Brustkrebsgewebe. [17]

MAR-FISH Bearbeiten

Mikroautoradiographie FISH ist eine Technik, um radioaktiv markierte Substrate mit konventionellem FISH zu kombinieren, um gleichzeitig phylogenetische Gruppen und metabolische Aktivitäten zu erkennen. [18]

Hybrid Fusion-FISH Bearbeiten

Hybrid Fusion FISH (HF-FISH) verwendet eine primäre additive Anregungs-/Emissionskombination von Fluorophoren, um zusätzliche Spektren durch einen Markierungsprozess zu erzeugen, der als dynamische optische Transmission (DOT) bekannt ist. Drei primäre Fluorophore sind in der Lage, durch kombinatorische Markierung mit DOT insgesamt 7 gut nachweisbare Emissionsspektren zu erzeugen. Hybrid Fusion FISH ermöglicht hoch gemultiplexte FISH-Anwendungen, die auf klinische Onkologie-Panels ausgerichtet sind. Die Technologie bietet eine schnellere Bewertung mit effizienten Sondensätzen, die mit herkömmlichen Fluoreszenzmikroskopen leicht nachgewiesen werden können.

Oft möchten Eltern von Kindern mit einer Entwicklungsstörung mehr über die Situation ihres Kindes wissen, bevor sie sich für ein weiteres Kind entscheiden. Diesen Bedenken kann durch eine Analyse der DNA der Eltern und des Kindes Rechnung getragen werden. In Fällen, in denen die Entwicklungsstörung des Kindes nicht verstanden wird, kann die Ursache möglicherweise mithilfe von FISH und zytogenetischen Techniken bestimmt werden. Beispiele für Krankheiten, die mit FISH diagnostiziert werden, sind das Prader-Willi-Syndrom, das Angelman-Syndrom, das 22q13-Deletionssyndrom, die chronische myeloische Leukämie, die akute lymphatische Leukämie, Cri-du-chat, das Velokardiofaziale Syndrom und das Down-Syndrom. FISH auf Samenzellen ist für Männer mit einem abnormalen somatischen oder meiotischen Karyotyp sowie für solche mit Oligozoospermie indiziert, da etwa 50 % der oligozoospermischen Männer eine erhöhte Rate an Chromosomenanomalien der Spermien aufweisen. [19] Die Analyse der Chromosomen 21, X und Y reicht aus, um gefährdete oligozoospermische Individuen zu identifizieren. [19]

In der Medizin kann FISH verwendet werden, um eine Diagnose zu stellen, die Prognose zu bewerten oder die Remission einer Krankheit wie Krebs zu beurteilen. Die Behandlung kann dann gezielt angepasst werden. Eine traditionelle Untersuchung mit Metaphase-Chromosomenanalyse ist oft nicht in der Lage, Merkmale zu identifizieren, die eine Krankheit von einer anderen unterscheiden, da FISH diese Unterschiede aufklären kann. FISH kann auch verwendet werden, um erkrankte Zellen leichter zu erkennen als zytogenetische Standardmethoden, die sich teilende Zellen erfordern und eine arbeits- und zeitintensive manuelle Vorbereitung und Analyse der Objektträger durch einen Techniker erfordern. FISH hingegen benötigt keine lebenden Zellen und kann automatisch quantifiziert werden, ein Computer zählt die vorhandenen fluoreszierenden Punkte. Es ist jedoch ein geschulter Technologe erforderlich, um feine Unterschiede in den Streifenmustern auf gebogenen und verdrehten Metaphasechromosomen zu unterscheiden. FISH kann in ein mikrofluidisches Lab-on-a-Chip-Gerät integriert werden. Diese Technologie befindet sich noch in der Entwicklungsphase, kann aber wie andere Lab-on-a-Chip-Methoden zu tragbareren Diagnosetechniken führen. [20] [21]

Artenidentifikation Bearbeiten

FISH wurde als diagnostisches Verfahren zur Identifizierung von Krankheitserregern im Bereich der medizinischen Mikrobiologie umfassend untersucht. [22] Obwohl es sich als nützliches und anwendbares Verfahren erwiesen hat, wird es in diagnostischen Labors noch nicht weit verbreitet eingesetzt. Die kurze Zeit bis zur Diagnose (weniger als 2 Stunden) war ein großer Vorteil im Vergleich zur biochemischen Differenzierung, aber dieser Vorteil wird durch MALDI-TOF-MS, die die Identifizierung eines breiteren Spektrums von Krankheitserregern im Vergleich zu biochemischen Differenzierungstechniken ermöglicht, in Frage gestellt. Der Einsatz von FISH zu diagnostischen Zwecken hat seinen Zweck gefunden, wenn eine sofortige Speziesidentifikation erforderlich ist, insbesondere für die Untersuchung von Blutkulturen, für die FISH eine kostengünstige und einfache Technik zur vorläufigen Schnelldiagnose ist. [22]

FISH kann auch verwendet werden, um die Genome zweier biologischer Arten zu vergleichen, um evolutionäre Beziehungen abzuleiten. Eine ähnliche Hybridisierungstechnik wird Zoo-Blot genannt. Bakterielle FISH-Sonden sind oft Primer für die 16s-rRNA-Region.

FISH ist im Bereich der mikrobiellen Ökologie weit verbreitet, um Mikroorganismen zu identifizieren. Biofilme zum Beispiel bestehen aus komplexen (oft) Multispezies-Bakterienorganisationen. Die Herstellung von DNA-Sonden für eine Spezies und die Durchführung von FISH mit dieser Sonde ermöglicht es, die Verteilung dieser spezifischen Spezies innerhalb des Biofilms zu visualisieren. Die Vorbereitung von Sonden (in zwei verschiedenen Farben) für zwei Arten ermöglicht es den Forschern, die Co-Lokalisierung dieser beiden Arten im Biofilm zu visualisieren/zu untersuchen und kann bei der Bestimmung der feinen Architektur des Biofilms nützlich sein.

Vergleichende genomische Hybridisierung Bearbeiten

Die vergleichende genomische Hybridisierung kann als eine Methode beschrieben werden, die FISH parallel zum Vergleich der Hybridisierungsstärke verwendet, um an größere Störungen im Duplikationsprozess der DNA-Sequenzen im Genom des Zellkerns zu erinnern. [23]

Virtueller Karyotyp Bearbeiten

Die virtuelle Karyotypisierung ist eine weitere kostengünstige, klinisch verfügbare Alternative zu FISH-Panels, bei der Tausende bis Millionen von Sonden auf einem einzigen Array verwendet werden, um genomweite Kopienzahländerungen mit beispielloser Auflösung zu erkennen. Gegenwärtig erkennt diese Art der Analyse nur Zuwächse und Verluste von chromosomalem Material und erkennt keine ausgewogenen Neuanordnungen, wie Translokationen und Inversionen, die charakteristische Aberrationen sind, die bei vielen Arten von Leukämie und Lymphomen auftreten.

Spektraler Karyotyp Bearbeiten

Die spektrale Karyotypisierung ist ein Bild von farbigen Chromosomen. Die spektrale Karyotypisierung beinhaltet FISH unter Verwendung mehrerer Formen vieler Arten von Sonden mit dem Ergebnis, dass jedes Chromosom durch sein Metaphasenstadium markiert wird. Diese Art der Karyotypisierung wird speziell bei der Suche nach Chromosomenanordnungen verwendet.


Poecilia latipinna

Segelflosse Molly. Bild © Noel Burkhead

Diese kleinen, länglichen Fische sind im Allgemeinen grau mit Reihen von Flecken, die fast wie Streifen aussehen. Männchen haben eine vergrößerte Rückenflosse, aber ansonsten haben sie im Allgemeinen kleine Flossen, einschließlich einer abgeschnittenen Schwanzflosse (Schwanzflosse). Ihre nach oben gerichteten Gesichter helfen ihnen, aus der oberen Schicht des sauerstoffreichen Wassers zu schöpfen, sodass sie in Wasser von schlechter Qualität gedeihen können. Sie können in Teichen, Sümpfen und sogar in Straßengräben gefunden werden und sind bei Aquarianern beliebt, die mit diesem toleranten Fisch eine Vielzahl von Farben gezüchtet haben.

– Cyprinodontiformes . bestellen Familie – Poeciliidae Gattung – Poecilia Spezies – latipinna

Gebräuchliche Namen

Segelflossenmolly, Breitflossenkärpfling (Deutsch), Bubuntis (Tagalog), Molinezja szerokopletwa (Polnisch), molliénésie á voilure (Französisch) und Tabai (Hawaiianisch).

Bedeutung für den Menschen

Süßwassersümpfe bieten Lebensraum für Segelflossenmollies. Bild © Florida Museum of Natural History

Der Sailfin Molly ist in seinen vielen Farbvarianten von großem Interesse und Wert für Aquarianer und viele künstlich selektierte Sorten werden produziert und in Zoohandlungen verkauft. Natürlich vorkommende Populationen von Segelflossenmollies können helfen, Mückenpopulationen zu kontrollieren, indem sie sich von den Larven und Puppen dieser Schädlinge ernähren.

Erhaltung

Diese Art wird von der World Conservation Union (IUCN) nicht als bedroht oder gefährdet eingestuft. Die IUCN ist ein globaler Zusammenschluss von Staaten, Regierungsbehörden und Nichtregierungsorganisationen in einer Partnerschaft, die den Erhaltungszustand von Arten bewertet.

Geografische Verteilung

Weltverbreitungskarte für den Sailfin Molly

Der Sailfin Molly kommt in Süß-, Brack- und Küstensalzwasser in küstennahen Tieflandhabitaten von North Carolina bis Texas und der mexikanischen Halbinsel Yucatan vor. Der Segelflossenmolly bevorzugt Sümpfe, Tieflandbäche, Sümpfe und Flussmündungen und ist auf der Halbinsel Florida sehr verbreitet. Im Westen der USA und auf Hawaii sind nicht-indigene Bevölkerungsgruppen angesiedelt. Nach Kalifornien eingeführte Segelflossenmollies haben zu einem Rückgang der Populationen des vom Aussterben bedrohten Wüstenwelpenfischs (Cyprinodon macularius).

Lebensraum

Segelflossenmollys werden am häufigsten in flachen Oberflächengewässern entlang der Ränder von Sümpfen, Tieflandbächen, Teichen, Sümpfen, Flussmündungen und sogar ephemeren Gewässern wie Straßengräben beobachtet. Kleine bis große Ansammlungen der Art werden am häufigsten unter schwimmender Vegetation oder in der Nähe von Strukturen im Wasser gefunden, was ihre Chancen minimiert, von potenziellen Räubern beobachtet zu werden.

Der Segelflossenmolly ist eine tolerante Art. Durch die Nutzung des dünnen Films aus sauerstoffreichem Oberflächenwasser mit ihren nach oben gerichteten Mündern sind Segelflossenmollys in der Lage, sauerstoffarme Lebensräume zu überleben. Der Segelflossenmolly ist eine euryhaline Art und kann in einer Vielzahl von salzhaltigen Umgebungen gefunden werden und brütet in brackigen Gewässern.

Biologie

Männchen (rechts) und Weibchen (links) Segelflossenmolly. Bilder © George Burgess

Unterscheidungsmerkmale
Der Körper des Segelflossenmollys ist im Wesentlichen länglich. Der Kopf ist klein und vom Rücken abgeflacht, mit einem kleinen, nach oben gerichteten Mund. Der Schwanzstiel ist breit und die Schwanzflosse ist groß, abgerundet und manchmal schwarz gekippt. Die Bauchflossen entspringen an einem Punkt vor der Rückenflosse. Die Rückenflosse ist bei ausgewachsenen Männchen stark vergrößert und bei Weibchen etwas vergrößert. Es ist dieses auffällige und attraktive Merkmal, das der Art ihren vorherrschenden gebräuchlichen Namen verleiht.

Segelflosse molly. Bild mit freundlicher Genehmigung des U.S. Geological Survey

Färbung
Der Körper ist im Allgemeinen hellgrau, obwohl brütende Männchen grünlich-blau sein können. Entlang der Seiten, des Rückens und der Rückenflosse treten mehrere Reihen von Flecken auf. Oftmals vermischen sich diese Flecken oder liegen sehr nahe beieinander, wodurch ein Streifenbild entsteht. Aquarianer haben bei dieser Art viele Farbvariationen entwickelt, und tatsächlich treten viele Variationen in freier Wildbahn auf, wobei melanistische und gesprenkelte Formen bekannt sind.

Dentition
Segelflossenmollies besitzen viele Reihen sehr kleiner Zähne, von denen die äußere Reihe die größte ist.

Größe, Alter und Wachstum
Die natürliche Lebensdauer von Segelflossenmollys ist wie bei anderen kleinen Poeciliiden kurz, insbesondere im Fall der Männchen, die nach Erreichen der Geschlechtsreife weniger als ein Jahr leben können. Abhängig von den Umweltbedingungen können sich Segelflossenmollies in weniger als einem Jahr fortpflanzen. Segelflossenmollies sind kleine Fische. Im Alter von einem Jahr haben Männchen typischerweise eine Größe von 15-51 mm SL, während ausgewachsene Weibchen wahrscheinlich ungefähr 19-53 mm SL haben. Die Größe der erwachsenen Männchen korreliert direkt mit der Bevölkerungsdichte. Je größer die Population, desto kleiner ist die durchschnittliche Größe der Männer. Die maximale aufgezeichnete Größe für diese Art beträgt 150 mm TL.

Segelflossenmollies ernähren sich von Wasserinsekten, einschließlich Mückenlarven. Bild mit freundlicher Genehmigung des Zentrums für Seuchenkontrolle

Essgewohnheiten
Segelflossenmollys ernähren sich hauptsächlich von Algen und anderen Pflanzenmaterialien, obwohl sie eine Reihe von wirbellosen Wassertieren einschließlich der Larven von Mücken verzehren.

Reproduktion
Weibliche Segelflossenmollies sind in der Regel größer als die Männchen, eine für die Poeciliidae typische Ungleichheit. Männchen zeigen neben einer bunten Schwanzflosse große und bunte Rückenflossen und diese auffälligen sekundären Geschlechtsmerkmale spielen eine Rolle bei der weiblichen Partnerwahl. Die Befruchtung erfolgt intern und wird durch stark modifizierte Flossenelemente in der Afterflosse der Männchen erreicht, die eine Struktur bilden, die als Gonopodium bekannt ist. Segelflossenmollies produzieren je nach Reife und Größe Bruten von 10-140 lebenden Jungen, und Weibchen können Sperma noch lange nach dem Tod ihrer relativ kurzlebigen Partner speichern. Die Tragzeit für diese Art beträgt je nach Temperatur etwa 3-4 Wochen, und ein einzelnes Weibchen kann das ganze Jahr über mehrmals gebären. Obwohl das Geschlechterverhältnis der Bruten ausgeglichen ist, sind die erwachsenen Populationen in der Regel überwiegend weiblich, da die Sterblichkeitsraten der Männchen aufgrund ihrer auffälligen Zuchtkleidung und eines weitgehend in Raserei verbrachten Lebens eine höhere Sterblichkeitsrate zu erleiden scheinen der Zucht. Es gibt keine elterliche Fürsorge, die von dieser Art gezeigt wird.

Forellenbarsche gehören zu den zahlreichen Raubtieren, die sich von Segelflossenmollies ernähren. Bild © US-Landwirtschaftsministerium.

Raubtiere
Segelflossenmollys sind kleine, zahlreiche Mitglieder des unteren Endes der Nahrungskette. Als solche sind sie Beute für zahlreiche Tiere, darunter Wasserinsekten, andere Fische, Reptilien und Amphibien, Vögel und Säugetiere. Spezifische Beispiele für solche Kreaturen sind riesige Wasserwanzen (Belostomatidae), Forellenbarsch (Micropterus salmoides), amerikanischer Alligator (Alligator Mississippiensis), Ochsenfrosch (Rana catesbeiana), Schneereiher (Egretta Thula) und Waschbär (Procyon Lotor).Parasiten
Der haploploride Trematode, Saccocoelioides sogandaresi ist ein bekannter Parasit der Segelflossenmolly.

Taxonomie

Der Segelflossenmolly wurde ursprünglich 1821 beschrieben als Mollienesia latipinna von dem Naturforscher Charles Alexandre Lesueur, der oft als einer von mehreren Personen erwähnt wird, die an der Gründung einer bekannten Versuchssiedlung in New Harmony, Indiana in den 1820er Jahren beteiligt waren. Lesueur stützte seine Beschreibung des Segelflossenmollys auf Exemplare aus Süßwasserteichen in der Nähe von New Orleans, Louisiana. Lesueur beschrieb jedoch andere Sammlungen des Segelflossenmollys als Mollienesia multilineata 1821, im selben Jahr, in dem er M. latipinna. Dieser Konflikt führte zu Verwirrung und machte schließlich eine Entscheidung der Internationalen Kommission für Zoologische Nomenklatur (ICZN) erforderlich. 1959 hat das ICZN dem Namen Vorrang gegeben Mollienesia latipinna Leser 1821.

Es gibt eine Reihe anderer Synonyme, von denen die meisten auf Exemplaren aus anderen Gebieten des ziemlich großen Verbreitungsgebiets der Sailfin Molly basieren. Diese beinhalten Limia poeciloides Girard 1858, Poecilia lineolata Girard 1858 und Limia matamorensisGirard 1859. Donn Rosen und Reeve Bailey (1959) stellten in einer wegweisenden Arbeit über Poeciliidenfische die Priorität von PoeciliaBloch und Schneider 1801 bezüglich Mollienesien Lesueur 1821, dadurch Absteiger Mollienesien zur Synonymie von Poecilia. Folglich ist das richtige Binomial für den Segelflossenmolly Poecilia latipinna (Lesueur, 1821).


Auswirkungen auf das Fischereimanagement

Etelis Boweni (oberes Foto) sieht fast identisch mit einer anderen Art aus, Etelis Karbunculus (Foto unten). (Bildnachweis: Wakefield et al. 2014)

John (Jack) Randall, ein weltbekannter Fischtaxonom aus Hawaii, der im April 2020 verstorben ist, war Teil des Forschungsteams, das die Entdeckung machte. Dieser neue Zeitschriftenartikel hätte zu mehr als 900 Veröffentlichungen von Randall im Laufe seines Lebens hinzugefügt. Das Team wurde geleitet von Kim Andrews von der University of Idaho und ebenfalls enthalten Iria Fernandez-Silva von der Universität Vigo in Spanien, beide ehemalige UH-Postdoktoranden, die bei Bowen studiert haben, und dem Fischtaxonom Hans Ho vom National Museum of Marine Biology and Aquarium in Taiwan. Der ursprüngliche Vorschlag für den Artnamen stammte von einem ehemaligen UH Mānoa-Doktoranden von Bowen, Michelle Gaither, der jetzt an der University of Central Florida ist.

&bdquoDie Entdeckung der neuen Art hat wichtige Auswirkungen auf das Fischereimanagement, insbesondere in Gebieten, in denen beide Arten gemeinsam vorkommen, da es wichtig ist, dass unterschiedliche Arten getrennt bewirtschaftet werden„, so Andrews.


Gnathostomes: Kieferfische

Gnathostome, Kieferwirbeltiere, können in zwei Arten von Fischen unterteilt werden: Chondrichthyes (Knorpelfische) oder Osteichthyes (Knochenfische).

Lernziele

Unterscheiden Sie zwischen den Arten von Kieferfischen

Die zentralen Thesen

Wichtige Punkte

  • Frühe Kieferfische (Gnathostomen) konnten aufgrund ihres Kiefers und der paarigen Flossen neue Nährstoffquellen erschließen.
  • Chondrichthyes umfasst alle Kieferfische mit Knorpelskeletten, wie Haie, Rochen, Rochen und Chimären.
  • Osteichthyes umfasst alle Kieferfische mit verknöcherten (knöchernen) Skeletten, darunter die Mehrheit der modernen Fische.
  • Osteichthyes können weiter in Actinopterygii (die Strahlenflosser) und Sarcopterygii (Lappenflossenfische) unterteilt werden.
  • Die Mehrheit der modernen Fischarten sind Actinopterygii, von der Forelle bis zum Clownfisch.
  • Frühe Sarcopterygii (Lappenflossenfische) entwickelten sich zu modernen Tetrapoden, darunter Reptilien, Amphibien, Vögel und Säugetiere.

Schlüsselbegriffe

  • verknöchert: besteht aus Knochen, einer Kalziumphosphatmatrix, die von speziellen Zellen, den Osteoblasten, gebildet wird
  • Operkulum: eine Abdeckklappe oder deckelartige Struktur bei Pflanzen und Tieren, wie z. B. Kiemendeckel
  • Chondrichthyes: eine taxonomische Klasse innerhalb des Unterstamms Wirbeltiere: der Knorpelfisch
  • Osteichthyes: eine taxonomische Klasse innerhalb des Unterstamms der Wirbeltiere: der Knochenfisch

Gnathostomes: Kieferfische

Gnathostome oder “Kiefermünder” sind Wirbeltiere, die Kiefer besitzen. Eine der bedeutendsten Entwicklungen in der frühen Evolution der Wirbeltiere war die Entwicklung des Kiefers, einer am Schädel befestigten Scharnierstruktur, die es einem Tier ermöglicht, seine Nahrung zu greifen und zu zerreißen. Die Entwicklung der Kiefer ermöglichte es frühen Gnathostomen, Nahrungsressourcen zu nutzen, die den kieferlosen Tieren nicht zur Verfügung standen. In der frühen Evolutionsgeschichte gab es Gnathostome (Kieferfische) und Agnathans (Kieferfische). Gnathostome entwickelten sich später zu allen Tetrapoden (Tiere mit vier Gliedmaßen), einschließlich Amphibien, Vögeln und Säugetieren.

Frühe Gnathostome waren Kieferfische, die zwei Paar Flossenpaare besaßen, was ihre Fähigkeit, präzise zu manövrieren, erhöhte. Diese gepaarten Flossen waren Brustflossen, die sich am vorderen Körper befanden, und Beckenflossen am hinteren Körper. Die Entwicklung des Kiefers in Kombination mit gepaarten Flossen ermöglichte es Gnathostomen, sich von der sesshaften Suspensionsfütterung kieferloser Fische auszubreiten und zu mobilen Räubern zu werden. Die Fähigkeit der Gnathostomen, neue Nährstoffquellen zu erschließen, führte zu ihrem evolutionären Erfolg während der Devon-Zeit. Zwei frühe Gruppen von Gnathostomen waren die Akanthodien und Placodermen, die in der späten Silurzeit entstanden und heute ausgestorben sind. Die meisten modernen Gnathostomen gehören zu den Kladen Chondrichthyes und Osteichthyes.

Placoderms: Dunkleosteous war ein riesiges Placoderm aus der Devon-Zeit, vor 380–360 Millionen Jahren. Er maß bis zu 10 Meter lang und wog bis zu 3,6 Tonnen. Als Gnathostomen waren sie mobiler und konnten mehr Nahrungsressourcen ausbeuten als die Agnathostomen.

Chondrichthyes: Knorpelfische

Die Clade Chondrichthyes besteht aus Haien, Rochen und Rochen, zusammen mit Sägefischen und einigen Dutzend Fischarten, die Chimären oder “Ghost” Haie genannt werden. Chondrichthyes sind Kieferfische, die paarige Flossen und ein Knorpelskelett besitzen. Diese Klade entstand vor etwa 370 Millionen Jahren im frühen oder mittleren Devon.

Hammerhai: Hammerhaie gehen tagsüber zur Schule und jagen nachts Beute. Als Mitglieder der Chondrichthyes bestehen ihre Skelette aus Knorpel.

Die meisten Knorpelfische leben in marinen Lebensräumen, obwohl einige Arten einen Teil oder ihr ganzes Leben im Süßwasser leben. Most sharks are carnivores that feed on live prey, either swallowing it whole or using their jaws and teeth to tear it into smaller pieces. Shark teeth probably evolved from the jagged scales that cover their skin called placoid scales. Some species of sharks and rays are suspension feeders that feed on plankton.

Sharks have well-developed sense organs that aid them in locating prey, including a keen sense of smell and electroreception. Organs called ampullae of Lorenzini enable sharks to detect the electromagnetic fields that are produced by all living things, including their prey. Only aquatic or amphibious animals possess electroreception. Sharks, together with most fishes and aquatic and larval amphibians, also have a sense organ called the lateral line, which is used to detect movement and vibration in the surrounding water. It is often considered homologous to “hearing” in terrestrial vertebrates. The lateral line is visible as a darker stripe that runs along the length of a fish’s body.

Rays and skates comprise more than 500 species and are closely related to sharks. They can be distinguished from sharks by their flattened bodies, pectoral fins that are enlarged and fused to the head, and gill slits on their ventral surface. Like sharks, rays and skates have a cartilaginous skeleton. Most species are marine and live on the sea floor, with nearly a worldwide distribution.

Osteichthyes: Bony Fishes

Members of the clade Osteichthyes, also called bony fish, are characterized by a bony skeleton. The vast majority of present-day fish belong to this group, which consists of approximately 30,000 species, making it the largest class of vertebrates in existence today.

Nearly all bony fish have an ossified skeleton with specialized bone cells (osteocytes) that produce and maintain a calcium phosphate matrix. A few groups of Osteichthyes, such as sturgeons and paddlefish, have primarily cartilaginous skeletons, but retain some bony elements. The skin of bony fish is often covered by overlapping scales. Skin glands secrete mucus that reduces drag when swimming and aids the fish in osmoregulation. Like sharks, bony fish have a lateral line system that detects vibrations in water. All bony fish use gills for gas exchange. Water is drawn over gills that are located in chambers covered and ventilated by a protective, muscular flap called the operculum. Many bony fish also have a swim bladder, a gas-filled organ that helps to control the buoyancy of the fish.

Bony fish are further divided into two extant clades: Actinopterygii (ray-finned fish) and Sarcopterygii (lobe-finned fish). Actinopterygii, the ray-finned fish include many familiar fish, such as tuna, bass, trout, and salmon, among others. Ray-finned fish are named for their fins that are webs of skin supported by bony spines called rays. In contrast, the fins of Sarcopterygii are fleshy and lobed, supported by bone. Although most members of this clade are extinct, living members include the less-familiar lungfishes and coelacanths. Early Sarcopterygii evolved into modern tetrapods, including reptiles, amphibians, birds, and mammals.

Actinopterygii and Sarcopterygii: The (a) sockeye salmon (Actinopterygii) and (b) coelacanth (Sarcopterygii) are both bony fishes of the Osteichthyes clade. The coelacanth, sometimes called a lobe-finned fish, was thought to have gone extinct in the Late Cretaceous period, 100 million years ago, until one was discovered in 1938 near the Comoros Islands between Africa and Madagascar.


Classifying Fish Species Within Ecosystems

The NIRS analysis distinguished individual species, groups of species from individual ecosystems, and groups from combined ecosystems. It had an overall accuracy of 92 percent, 98 percent, and 100 percent, respectively.

Species Identification and Environmental Influences

The accuracy of species predictions varied depending on where they came from. Most misclassifications happened between:

  • Same species from different geographic areas (for example, red snapper in the Gulf of Mexico versus North Atlantic)
  • Different species from the same area (walleye pollock, Pacific cod, and yellowfin sole in the Bering Sea)

“These results suggest that habitat, diet, and environmental conditions such as temperature may influence the spectral signature of otoliths,” said Benson. “That suggests that NIRS may prove useful in answering ecological questions. For example, it could help us understand how ocean warming affects food webs.”

3D view of otolith NIR spectral analyses by species. GOM – U.S. Gulf of Mexico, NAO – North Atlantic Ocean, E GOM – East U.S. Gulf of Mexico, W GOM – West U.S. Gulf of Mexico. Image: NOAA Fisheries.

Ecosystems and Oceanography

NIRS discriminated otoliths of all species analyzed from the eastern Bering Sea and North Pacific Ocean large marine ecosystems with 100 percent accuracy. North Atlantic Ocean (97 percent) and Gulf of Mexico (93 percent) ecosystems were slightly more difficult to discriminate.

These results may reflect the oceanography and ecology of each region.

North Pacific Ocean currents split along the U.S. West coast and support different large marine ecosystems in the North Pacific and eastern Bering Sea. Differences between fish otoliths from the two regions may be explained in part by annual sea ice. It has a strong impact on marine chemistry and biology in the eastern Bering Sea, but not on the North Pacific Ocean.

Gulf of Mexico water is transported north along the Atlantic coast of the United States by the Gulf Stream. Around Cape Hatteras, the Gulf Stream swings away from the coast. There it creates a boundary between the Gulf of Mexico and North Atlantic Ocean ecosystems. Fish and fauna are known to move across in both directions.

3D view of otolith NIR spectral analyses by regions. EBS – Eastern Bering Sea, GOM – U.S. Gulf of Mexico, NAO – North Atlantic Ocean, NPO – North Pacific Ocean. Image: NOAA Fisheries.


Classification of Fish

There are about 28,000 existing species of fish, and they are placed in five different classes. The classes are commonly referred to as hagfish, lampreys, cartilaginous fish, ray-finned fish, and lobe-finned fish (see the table in the previous lesson).

Hagfish

Hagfish are very primitive fish. They retain their notochord throughout life rather than developing a backbone, and they lack scales and fins. They are classified as vertebrates mainly because they have a cranium. Hagfish are noted for secreting large amounts of thick, slimy mucus. The mucus makes them slippery, so they can slip out of the jaws of predators.

Neunaugen

Like hagfish, lampreys also lack scales, but they have fins and a partial backbone. The most striking feature of lampreys is a large round sucker, lined with teeth, that surrounds the mouth (see Abbildung unter). Lampreys use their sucker to feed on the blood of other fish species.

Sucker Mouth of a Lamprey. The mouth of a lamprey is surrounded by a tooth-lined sucker.

Cartilaginous Fish

Cartilaginous fish include sharks, rays, and ratfish (see Abbildung unter). In addition to an endoskeleton composed of cartilage, these fish have a complete backbone. They also have a relatively large brain. They can solve problems and interact with other members of their species. They are generally predators with keen senses. Cartilaginous fish lack a swim bladder. Instead, they stay afloat by using a pair of muscular fins to push down against the water and create lift.

Cartilaginous Fish. All of these fish belong to the class of cartilaginous fish with jaws. (a) Oceanic whitetip shark (b) Ray (c) Ratfish

One of the most important traits of cartilaginous fish is their jaws. Jaws allow them to bite food and break it into smaller pieces. This is a big adaptive advantage because it greatly expands the range of food sources they can consume. Jaws also make cartilaginous fish excellent predators. It you&rsquove ever seen the film Jaws, then you know that jaws make sharks very fierce predators (see also Abbildung unter).

Jaws of a Shark. Sharks have powerful jaws with multiple rows of sharp, saw-like teeth. Most other fish are no match for these powerful predators.

Ray-Finned Fish

Ray-finned fish include the majority of living fish species, including goldfish, tuna, salmon, perch, and cod. They have a bony endoskeleton and a swim bladder. Their thin fins consist of webs of skin over flexible bony rays, or spines. The fins lack muscle, so their movements are controlled by muscles in the body wall. You can compare their ray fins with the fleshy fins of lobe-finned fish in Abbildung unter.

Fins of Bony Fish. The fins of ray-finned and lobe-finned fish are quite different. How is the form of the fins related to their different functions in the two classes of fish? Ray Fin (left), Lobe Fin (right)

Lobe-Finned Fish

Lobe-finned fish are currently far fewer in number than ray-finned fish. Their fins, like the one shown in Abbildung above, contain a stump-like appendage of bone and muscle. There are two groups of lobe-finned fish still alive today: coelacanths and lungfish.


Fish Reproduction and Development

Nearly all fish reproduce sexually, and most species have separate sexes. Those without separate sexes avoid self-fertilization by producing sperm and eggs at different times. Each fish typically produces a large number of gametes. In most fish species, fertilization takes place externally. These fish are ovipar. Eggs are laid and embryos develop outside the mother&rsquos body. In a minority of fish, including sharks, eggs develop inside the mother&rsquos body but without nourishment from the mother. These fish are ovovivipar.

Spawning

In many species of fish, a large group of adults come together to release their gametes into the water at the same time. Das nennt man spawning. It increases the chances that fertilization will take place. It also means that many embryos will form at once, which helps ensure that at least some of them will be able to escape predators.

With spawning, there is no way for fish parents to know which embryos are their own. Therefore, fish generally don&rsquot provide any care to their eggs or offspring. There are some exceptions, however, including the fish described in Abbildung below, which is performing mouth brooding.

Mouth Brooding. Some species of fish carry their fertilized eggs in their mouth until they hatch. This is called mouth brooding. If you look closely, you can see the eggs inside the mouth of the cardinalfish pictured here.

Fish Larvae

Fish eggs hatch into larvae that are different from the adult form of the species (see Abbildung unter). A larva swims attached to a large yolk sac, which provides the larva with food. The larva eventually goes through Metamorphose and changes into the adult form. However, it still needs to mature before it can reproduce.

Salmon Larva. This newly hatched salmon larva doesn&rsquot look very fish-like. The structure hanging from the larva is the yolk sac.


Interesting Insights from the Oscar Fish!

While the oscar is a commonly kept aquarium fish, many owners are not aware of the amazing biological concepts their fish displays. In fact, the oscar is a perfect example of the following concepts!

Suction Feeding

Oscar fish – like many other predatory fish – use the viscosity of water to their advantage. Unlike air, which moves freely around objects, water is much denser. Plus, water molecules pull on each other through the process of cohesion. So, when the oscar opens its mouth quickly, a massive wall of water is sucked in.

Smaller fish unlucky enough to be caught in the wave are pulled into the oscar’s mouth, with no hope of escaping. Besides fish, many other aquatic organisms use suction feeding to their advantage. Notable suction feeders include some species of shark, newts, catfish, and many others. Suction feeders are typically “ambush predators” – waiting carefully for their prey to come close enough to be caught in the suction vortex!

Invasive Aquarium Fish

The oscar fish is not the only fish that has expanded its range since it has been commonly kept as an aquarium species. Unfortunately, the aquarium industry has introduced many invasive species into natural environments around the world. While the environmental impact of oscar fish releases has not been well studied, other aquarium species that have been released are wreaking havoc on natural environments.

For example, the Zebrafish is a commonly kept saltwater aquarium species. The fish is beautiful, colorful, and very interesting to watch in captivity. For this reason, the fish was imported to the United States from its native range in the Indian Ocean. However, a few Zebrafish were accidentally released into the Gulf of Mexico. Only a few decades later, the Zebrafish has become a massively destructive species along many reefs in the Gulf.

Since the Zebrafish is a voracious predator and has a number of protective spines, it can eat almost everything and has no natural predators in the Gulf of Mexico. As such, Zebrafish populations have exploded and are rapidly depleting many fish species important to the health of the coral reef. In fact, this invasive species is so destructive that is has been partially blamed for the loss of corals from South America to Florida.

Brood Care

Though the oscar is a voracious predator, these fish can also make very protective parents. Oscar fish naturally defend their territory, chasing off all other fish that come too close and eating anything small enough to fit in their large mouths!

However, when it comes to their babies, oscars are very careful. In fact, the oscar fish will protect its babies and is very careful not to suck them up. This is known as “brood care” and is a type of parental care seen in several fish species. While most fish simply release their eggs into the environment, the oscar will protect its offspring until they are large enough to leave and established their own territory.



Bemerkungen:

  1. Renne

    Haben Sie sich schnell einen so unvergleichlichen Satz ausgedacht?

  2. Boreas

    Meiner Meinung nach machen Sie einen Fehler. Lassen Sie uns dies diskutieren.Maile mir eine PM, wir reden.

  3. Cecilio

    Dieses Thema ist einfach unvergleichlich :), es ist angenehm für mich.

  4. Cecilio

    Es abstrakte Menschen

  5. Tolrajas

    Dieser bemerkenswerte Gedanke fällt übrigens einfach nur



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