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8.4: Klassifizierung von Mikroorganismen - Biologie

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8.4: Klassifizierung von Mikroorganismen

Bedeutung der Mikrobiologie

Im Wesentlichen ist die Mikrobiologie die Untersuchung von biologischen Organismen, die zu klein sind, um mit bloßem Auge gesehen zu werden (ohne Verwendung von Hilfsmitteln wie Lupe oder Mikroskop usw.). Die Mikrobiologie widmet sich daher der Erforschung des Lebens und der Eigenschaften einer Vielzahl von Organismen, die von Bakterien und Archaeen bis hin zu parasitären Würmern in ihrer Umgebung reichen.

Hier wird die Disziplin verwendet, um alle Aspekte der Organismen kennenzulernen, um nicht nur zu bestimmen, wie sie in ihrer Umwelt leben, sondern auch, wie sie ihre jeweilige Umgebung und damit andere Organismen um sie herum (Mensch, Tier usw.) beeinflussen.

Die Mikrobiologie hat sich als eine der wichtigsten Disziplinen in der Biologie erwiesen, die es ermöglicht, zu identifizieren, wie einige dieser Organismen Krankheiten verursachen, Heilmittel für solche Krankheiten zu entdecken und sogar einige Mikroben für industrielle Zwecke zu verwenden usw.

Einige der Bereiche, auf die sich Mikrobiologen spezialisieren können, sind:

  • Immunologie
  • Bodenbiologie
  • Industrielle Mikrobiologie
  • Biotechnologie
  • Biogeochemie
  • Mikrobielle Genetik
  • Aquatische Mikrobiologie

* Obwohl die Mikrobiologie größtenteils als das Studium von Mikroorganismen beschrieben wird (die mit bloßem Auge nicht zu sehen sind), enthalten solche Gruppen wie Algen und Pilze Organismen, für deren Beobachtung nicht unbedingt spezielle Werkzeuge erforderlich sind. Daher umfasst die Mikrobiologie auch eine Reihe von Organismen, die außerhalb der traditionellen Definition liegen.


Halophile: Biologie, Anpassung und ihre Rolle bei der Dekontamination hypersaliner Umgebungen

Die einzigartige zelluläre enzymatische Maschinerie halophiler Mikroben ermöglicht es ihnen, in extremen salzhaltigen Umgebungen zu gedeihen. Dass diese Mikroorganismen in hypersalinen Umgebungen gedeihen können, wurde mit dem erhöhten Gehalt an sauren Aminosäuren in ihren Proteinen korreliert, die das negative Proteinoberflächenpotential erhöhen. Da diese Mikroorganismen Kohlenwasserstoffe effektiv als ihre einzigen Kohlenstoff- und Energiequellen verwenden, können sie sich als wertvolle Bioremediationsmittel für die Behandlung von salzhaltigen Abwässern und hypersalinen Wässern erweisen, die mit toxischen Verbindungen kontaminiert sind, die gegen Abbau resistent sind. Dieser Aufsatz hebt die verschiedenen Strategien hervor, die Halophile zum Ausgleich ihrer salzhaltigen Umgebung anwenden, und enthält Beschreibungen neuerer Studien, in denen diese Mikroorganismen zur biologischen Sanierung von Umgebungen verwendet wurden, die durch Erdölkohlenwasserstoffe kontaminiert sind. Die bekannten Halotoleranten Dehalogenase-produzierenden Mikroben, ihre Dehalogenierungsmechanismen und wie ihre Proteine ​​stabilisiert werden, werden ebenfalls besprochen. Angesichts ihrer Robustheit in salzhaltigen Umgebungen verdienen die Bemühungen, ihr volles Potenzial zur Sanierung kontaminierter hypersaliner Ökosysteme zu dokumentieren, weitere Untersuchungen.

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Pilze

Pilze sind eukaryotische Organismen, die wie Algen starre Zellwände haben und entweder einzellig oder mehrzellig sein können. Einige können mikroskopisch klein sein, während andere viel größere Strukturen bilden, wie Pilze und Pilze, die im Boden oder auf feuchten Stämmen wachsen. Pilze enthalten im Gegensatz zu Algen kein Chlorophyll und können daher keine Photosynthese betreiben. Pilze nehmen keine Nahrung auf, sondern müssen gelöste Nährstoffe aus der Umwelt aufnehmen. Von den als Mikroorganismen klassifizierten Pilzen werden solche, die vielzellig sind und filamentöse, mikroskopische Strukturen bilden, häufig als Schimmelpilze bezeichnet, während Hefen einzellige Pilze sind.

In Schimmelpilzen haben die Zellen eine zylindrische Form und sind Ende an Ende befestigt, um fadenförmige Filamente (Hyphen) zu bilden, die Sporen tragen können. Individuell sind Hyphen mikroskopisch klein. Wenn sich jedoch viele Hyphen ansammeln – zum Beispiel auf einer Scheibe Brot oder Fruchtgelee – bilden sie eine flockige Masse, die als Myzel bezeichnet wird und mit bloßem Auge sichtbar ist.

Die einzelligen Hefen haben viele Formen, von kugelförmig über eiförmig bis fadenförmig. Hefen sind bekannt für ihre Fähigkeit, Kohlenhydrate zu fermentieren und in Produkten wie Wein und Brot Alkohol und Kohlendioxid zu produzieren.


Mikrobielle Funktion bezieht sich auf mikrobielle Aktivität, da nur die aktiven Mikroorganismen biogeochemische Prozesse antreiben. Trotz der Bedeutung von aktiv Mikroorganismen, konzentrieren sich die meisten Methoden auf die Schätzung gesamt mikrobielle Biomasse und bewerten ihre aktive Fraktion nicht. Zunächst haben wir die Unterschiede zwischen den aktiv, potenziell aktiv, und ruhend mikrobielle Zustände im Boden und vorgeschlagene Schwellenwerte von Parametern zu ihrer Identifizierung. Zweitens haben wir die Fähigkeit eines breiten Spektrums von Ansätzen zur Abschätzung und Charakterisierung der aktiven und potenziell aktiven Mikroorganismen im Boden kritisch überprüft. Folgende Ansätze wurden evaluiert: Plattenzählung und mikrobielle Kulturen Direktmikroskopie kombiniert mit Zellfärbung ATP-, PLFA-, DNA- und RNA-Gehalt Microarray-Analysen PCR-basierte Ansätze Stabile Isotopensondierung Bodenproteomik, Enzymaktivität und verschiedene Ansätze basierend auf Atmung und Substratnutzung. Die „statischen“ Ansätze, die hauptsächlich auf der einstufigen Bestimmung von Zellbestandteilen (ATP, DNA, RNA und molekulare Biomarker) basieren, erkennen das Vorhandensein von Mikroorganismen und die Gesamtbiomasse gut, aber sie bewerten den aktiven Teil und damit die Funktionen. Im Gegensatz dazu helfen die dynamischen Ansätze, die Veränderungen dieser Parameter während des mikrobiellen Wachstums abschätzen und basierend auf Prozessraten: Substratnutzung und Produktbildung, z. Basierend auf einem Vergleich aller Ansätze auf ihre Universalität (Möglichkeit zur Analyse aktiver, potenziell aktiver und ruhender Mikroorganismen) kamen wir zu dem Schluss, dass 1) direkte Mikroskopie mit komplementären Färbungen, 2) eine Kombination von RNA-basierter FISH mit Färbung der gesamten mikrobiellen Biomasse, und 3) Ansätze, die auf mikrobiellem Wachstum basieren, waren die vorteilhaftesten und ermöglichten eine gleichzeitige quantitative Schätzung von aktiv, potenziell aktiv, und ruhend Mikroorganismen im Boden.

Die aktiv Mikroorganismen machen nur etwa 0,1–2% der gesamt mikrobielle Biomasse und in Böden ohne Zufuhr leicht verfügbarer Substrate sehr selten über 5 %. Trotzdem ist der Anteil von potenziell aktiv Mikroorganismen (bereite Nutzung der verfügbaren Substrate innerhalb weniger Stunden) ist viel höher und trägt zwischen 10 und 40 % (bis zu 60 %) der gesamten mikrobiellen Biomasse bei. Daher betonen wir die Rolle von potenziell aktiv Mikroorganismen mit schneller Reaktion auf schwankenden Substrateintrag in Bodenmikrohabitaten und Hotspots.

Der Übergang vom potenziell aktiven in den aktiven Zustand erfolgt in Minuten bis Stunden, der Übergang vom Ruhezustand in den aktiven Zustand dauert jedoch Stunden bis Tage. Der umgekehrte Prozess – das Übergehen in das potenziell aktive und ruhende Stadium – dauert trotz sehr schneller Aktivierung viel länger und ist für einzelne Kriterien sehr unterschiedlich: ATP, DNA, RNA, Enzymproduktion, Atemfrequenz. Dies führt zu weiteren Schwierigkeiten bei der Schätzung des aktiven Teils der mikrobiellen Gemeinschaft durch Methoden, die auf diesen Parametern basieren. Daher ist die Standardisierung, Weiterentwicklung und breite Anwendung von Ansätzen, die sich auf den Anteil aktiver Mikroorganismen im Boden und deren Funktionen konzentrieren, dringend erforderlich. Wir kommen zu dem Schluss, dass, da aktive Mikroorganismen die alleinigen mikrobiellen Treiber der biogeochemischen Hauptprozesse sind, Analysen der aktiven und potenziell aktiven Fraktionen in Studien mit Fokus auf Bodenfunktionen erforderlich sind.


Identifizierung von Mikroorganismen durch moderne Analysetechniken

Der schnelle Nachweis und die Identifizierung von Mikroorganismen ist ein herausfordernder und wichtiger Aspekt in einer Vielzahl von Bereichen, von der Medizin bis zur Industrie, die das Leben von Menschen beeinflussen. Leider basieren klassische Methoden zur Identifizierung von Mikroorganismen auf zeit- und arbeitsintensiven Ansätzen. Screening-Techniken erfordern die schnelle und kostengünstige Gruppierung von Bakterienisolaten, die moderne Bioanalytik erfordert jedoch umfassende Bakterienstudien auf molekularer Ebene. Moderne Ansätze zur schnellen Identifizierung von Bakterien verwenden molekulare Techniken, wie 16S ribosomale RNA-Gensequenzierung basierend auf Polymerase-Kettenreaktion oder Elektromigration, insbesondere Kapillarzonenelektrophorese und kapillare isoelektrische Fokussierung. Bei der Analyse mikrobieller Komplexe mittels Elektromigrationstechnologie gibt es jedoch noch einige Herausforderungen, wie etwa unkontrollierte Aggregation und/oder Adhäsion an der Kapillaroberfläche. Daher wird ein Ansatz vorgestellt, der Kapillarelektrophorese von mikrobiellen Aggregaten mit UV- und Matrix-unterstützter Laserdesorptions-Ionisations-Flugzeit-MS-Detektion verwendet.


Einstufung unterhalb und oberhalb der Artenebene

Unterhalb der Artenebene

Insbesondere für epidemiologische Zwecke müssen klinische Mikrobiologen Stämme mit bestimmten Merkmalen von anderen Stämmen derselben Art unterscheiden. Zum Beispiel Serotyp O157:H7 E coli werden in Stuhlproben aufgrund ihres Zusammenhangs mit blutigem Durchfall und anschließendem hämolytisch-urämischen Syndrom identifiziert.

Unterhalb der Speziesebene werden Stämme auf der Grundlage üblicher serologischer oder biochemischer Reaktionen, Phagen- oder Bakteriocinempfindlichkeit, Pathogenität oder anderer Merkmale als Gruppen oder Typen bezeichnet. Viele dieser Merkmale werden bereits verwendet und akzeptiert: Serotyp, Phagentyp, Colicintyp, Biotyp, Bioserotyp (eine Gruppe von Stämmen derselben Spezies mit gemeinsamen biochemischen und serologischen Merkmalen, die sie von anderen Mitgliedern der Spezies unterscheiden) und Pathotyp (z. B. toxigene Clostridium difficile, angreifend E coli, und toxigen Corynebacterium diphtheriae).

Oberhalb der Artenebene

Neben Art- und Unterartbezeichnungen müssen klinische Mikrobiologen mit Gattungen und Familien vertraut sein. Eine Gattung ist eine Gruppe verwandter Arten und eine Familie ist eine Gruppe verwandter Gattungen.

Eine ideale Gattung würde sich aus Arten mit ähnlichen phänotypischen und phylogenetischen Merkmalen zusammensetzen. Einige phänotypisch homogene Gattungen nähern sich diesem Kriterium (Citrobacter, Yersinien, und Serratia). Häufiger ist jedoch die phänotypische Ähnlichkeit vorhanden, die genetische Verwandtschaft jedoch nicht. Bazillus, Clostridium, und Legionellen sind Beispiele für akzeptierte phänotypische Gattungen, bei denen die genetische Verwandtschaft zwischen den Arten nicht 50 bis 65 Prozent, sondern 0 bis 65 Prozent beträgt. Wenn keine phänotypische und genetische Ähnlichkeit vorhanden sind, sollte der phänotypischen Ähnlichkeit bei der Etablierung von Gattungen im Allgemeinen Vorrang eingeräumt werden. Die Identifizierungspraktiken werden vereinfacht, indem die phänotypisch ähnlichsten Arten derselben Gattung verwendet werden. Die Hauptüberlegung für eine Gattung ist, dass sie biochemisch ähnliche Arten enthält, die bequem oder wichtig als eine von anderen Organismengruppen getrennte Gruppe zu betrachten sind.

Die Sequenzierung von Genen der ribosomalen RNA (rRNA), die durch die Evolution hochkonserviert wurden, ermöglicht phylogenetische Vergleiche zwischen Arten, deren Gesamt-DNA im Wesentlichen nicht verwandt ist. Es ermöglicht auch eine phylogenetische Klassifizierung auf der Gattungs-, Familien- und höheren taxonomischen Ebene. Die rRNA-Sequenzdaten werden normalerweise nicht verwendet, um Gattungen oder Familien zu bezeichnen, es sei denn, sie werden durch Ähnlichkeiten in phänotypischen Tests gestützt.


Hyphen- und Hefe-Morphogenese

Das Hyphenwachstum erfolgt durch Extension an den Spitzen. Diese Polarisation wird zumindest teilweise durch gerichtete Bewegung und Ansammlung von Vesikeln bestimmt, die Wandvorläufer und Wandsynthetasen zur Exozytosestelle an der apikalen Kuppel der Hyphe tragen (Abb. 73-3). Trotz der scheinbaren Einfachheit der Hyphenmorphogenese haben ultrastrukturelle Untersuchungen eine ausgeklügelte Organisation von spitzenwachstumsbezogenen Organellen und Zytoskelettelementen gezeigt. Es gibt Hinweise darauf, dass die Invagination und Polymerisation von Chitin-Mikrofibrillen an der apikalen Kuppel der Hyphen stattfindet und dass die Biosynthese dieses Hauptprodukts der Zellwand durch die Aktivität der membrangebundenen Chitin-Synthetase gesteuert wird. Die zymogene Form der Chitinsynthetase wurde in Mikrovesikeln, den sogenannten Chitosomen, nachgewiesen, die dieses Enzym zur Hyphenspitze zu transportieren scheinen. Die Chitosomen können aus Golgi-ähnlichen Körpern oder durch einen Prozess der Selbstorganisation von Untereinheiten frei im Zytoplasma oder in größeren vesikulären Körpern entstehen. Die Aktivierung der Chitinsynthetase erfolgt bei der Fusion des Chitosoms mit dem Plasmalemma und kann auf die Wechselwirkung einer membrangebundenen Protease und des Zymogens zurückzuführen sein. An diesen Fusionsstellen wird die Chitin-Mikrofibrillogenese initiiert.

Abbildung 73-3

Polarisiertes Wachstum von Hyphen.

Es wurden auch Beweise vorgelegt, hauptsächlich aus Studien der Hefe Saccharomyces cerevisiae, dass die Biosynthese von Skelettpolysacchariden durch Polysaccharidsynthetasen (z. B. Chitinsynthetase und 㬡-3-Glucansynthetase) katalysiert wird, die gleichmäßig im Plasmalemma verteilt sind. Diese wandsynthetisierenden, zellmembrangebundenen Enzyme kommen entweder in Zymogen oder in aktiver Form vor. Das Modell der Hefemorphogenese (Abb. 73-4) legt nahe, dass die Synthetase an Stellen aktiv ist, an denen die Wand wächst, und inaktiv, wo sie ruht. Eine Möglichkeit besteht darin, dass Mikrovesikel an bestimmten Stellen der Wandbiosynthese (Zonen des Knospenauftretens und der Septumbildung) aktivierende Faktoren (z. B. Proteasen, ATP und GTP) zum Plasmalemma transportieren. Diese beiden Konzepte der Regulation der Wandbiosynthese in Pilzhyphen und Hefen wurden durch beträchtliche Beweise gestützt, und es ist wahrscheinlich, dass beide richtig sind.

Abbildung 73-4

Stadien (A bis F) des Knospenaufgangs und des Hefezellzyklus.

Das Ausdehnungswachstum von Hyphenspitzen und Hefeknospen erfordert logischerweise ein Gleichgewicht zwischen den Prozessen der Einfügung von neu synthetisiertem Polymermaterial und der Modifikation der bestehenden mikrofibrillären Matrix, um die Ausdehnung und weitere Invagination von Wandpolymeren zu ermöglichen. Mit anderen Worten, ein Gleichgewicht zwischen Wandsynthese und Wandlyse oder Plastifizierung ist für die Aufrechterhaltung der geordneten Prozesse der Verlängerung der Hyphenspitze und des Auftauchens der Knospen unerlässlich. Es wurde über das Vorhandensein lytischer Enzyme in der Pilzwand berichtet, darunter 㬡-3-Glucanase, N-Acetyl-β-D-Glucosaminadase und Chitinase. Die Lokalisierung einer solchen Aktivität kann durch Makrovesikel vermittelt werden. Diese Organellen, wie Mikrovesikel, stammen wahrscheinlich von Golg-ähnlichen Körpern und werden zur Hyphenspitze oder Hefeknospe geleitet und verschmelzen mit dem Plasmalemma, wodurch ihr Inhalt an die Stelle der Wandsynthese abgegeben wird.


Ursprung und Evolution von MERS-CoV

Während das Auftreten von SARS Palmzibets betraf, hatten die meisten der frühen MERS-Indexfälle Kontakt mit Dromedaren. Tatsächlich waren MERS-CoV-Stämme, die aus Kamelen isoliert wurden, fast identisch mit denen, die aus Menschen isoliert wurden 90,91,92,93,94,95 . Darüber hinaus waren MERS-CoV-spezifische Antikörper bei Kamelen aus dem Nahen Osten, Afrika und Asien stark verbreitet 13,14,96,97,98,99,100,101,102,103 . MERS-CoV-Infektionen wurden 1983 in Kamelserumproben nachgewiesen (Ref. 100), was darauf hindeutet, dass MERS-CoV vor mindestens 30 Jahren in Kamelen vorhanden war. Genomsequenzanalysen zeigten, dass MERS-CoV, Tylonykterie Fledermaus-Coronavirus HKU4 und Zwergfledermaus Fledermaus-Coronavirus HKU5 sind phylogenetisch verwandt (als Betacoronavirus-Linie C bezeichnet) 21 . Die Viren dieser Linie haben identische genomische Strukturen und sind in ihren Polyproteinen und den meisten Strukturproteinen hoch konserviert, aber ihre S-Proteine ​​und akzessorischen Proteine ​​sind sehr variabel. MERSr-CoVs wurden in mindestens 14 Fledermausarten aus zwei Fledermausfamilien, Vespertilionidae und Nycteridae, gefunden. Keines dieser MERSr-CoVs ist jedoch ein direkter Vorläufer von MERS-CoV, da sich ihre S-Proteine ​​wesentlich von denen von MERS-CoV unterscheiden 98,104,105,106 .

Um die evolutionären Beziehungen zwischen MERS-CoV und MERSr-CoVs zu verstehen, konstruierten wir einen phylogenetischen Baum auf der Grundlage des Alignments aller kodierenden Regionen (Abb. 4b Ergänzende Abb. S1b). Der phylogenetische Baum enthält zwei Hauptcluster und mehrere kleine Kladen oder Stämme. Insgesamt ist die genetische Vielfalt innerhalb der L1- und L2-Viruslinien gering, was darauf hindeutet, dass Menschen und Kamele innerhalb kurzer Zeit mit Viren aus derselben Quelle infiziert wurden. Zu den L1-Viren gehören menschliche und Kamel-MERS-CoVs hauptsächlich aus dem Nahen Osten (die Vereinigten Arabischen Emirate, dem Königreich Saudi-Arabien, Oman und Jordanien) und zwei asiatischen Ländern (Südkorea und Thailand), die Ausbrüche in der menschlichen Bevölkerung verursacht hatten. Es ist erwähnenswert, dass die in Südkorea und Thailand gemeldeten Fälle mit denen im Nahen Osten zusammenhängen. Zu den L2-Viren gehören Kamel-MERS-CoVs aus Afrika (Nigeria, Burkina Faso und Äthiopien) und einem Land des Nahen Ostens (Marokko). Diese Viren haben keine menschliche Infektion verursacht. Diese beiden Viruslinien haben eindeutig einen gemeinsamen Vorfahren, unterscheiden sich jedoch in ihrem Potenzial, Infektionen beim Menschen zu verursachen. Der in Südafrika isolierte MERSr-CoV-Stamm Neoromicia/5038 (GenBank Nr. MF593268) war im phylogenetischen Stammbaum am nächsten mit MERS-CoVs verwandt. Insgesamt stützen alle von Fledermäusen isolierten MERSr-CoVs die Hypothese, dass MERS-CoV von Fledermäusen stammt. Angesichts der phylogenetischen Kluft zwischen den MERS-CoVs der Fledermaus und den MERS-CoVs von Menschen und Kamelen sollte es jedoch andere noch zu identifizierende Viren geben, die in der Natur zirkulieren und direkt zur Entstehung von MERS-CoV beim Menschen beigetragen haben und Kamele. Hoffentlich werden solche Viren in Zukunft bei Fledermäusen gefunden.

Es überrascht nicht, dass bei der Evolution und Entstehung von MERS-CoV 94,105,107,108,109 Rekombinationsereignisse stattgefunden haben. Phylogenetische Bäume, die unter Verwendung von Genen konstruiert wurden, die für kodieren orf1ab und S waren inkongruent mit der Baumtopologie des vollständigen Genoms, was auf eine mögliche Rekombination in diesen Genen hindeutet 108 . Zahlreiche Rekombinationen deuten darauf hin, dass MERS-CoV aus dem Austausch genetischer Elemente zwischen verschiedenen viralen Vorfahren stammt, einschließlich derer, die aus Kamelen und den angenommenen natürlichen Wirtsfledermäusen isoliert wurden 94,105,107,110,111 .


Cellulasen

Joana L.A. Brás, . Carlos M.G.A. Fontes , in Methoden der Enzymologie , 2012

6 Zusammenfassung

Anaerobe Mikroben produzieren eine bemerkenswert effiziente Nanomaschine zum Abbau pflanzlicher Zellwandpolysaccharide, die vor mehr als 20 Jahren als Zellulosom bezeichnet wurde. Cellulasen und Hemicellulasen werden durch eine hochaffine Wechselwirkung zwischen Typ I Dockerin-Domänen der modularen Enzyme und Typ I Cohesinmodulen eines nichtkatalytischen Gerüsts zu Multienzymkomplexen aufgebaut (Abb. 21.4). Es wird angenommen, dass die Integration der mikrobiellen Biokatalysatoren in Zellulosomen die Katalyse durch die Maximierung des Enzymsynergismus durch Enzymnähe und effizientes Substrat-Targeting potenziert. Es gibt erhebliche strukturelle und funktionelle Beweise, die darauf hindeuten, dass cellulosomale Dockerins eine duale Cohesin-Bindungsschnittstelle aufweisen. Der duale Bindungsmodus, der von Cohesin-Dockerin-Komplexen exprimiert wird, kann eine erhöhte Flexibilität in die quartäre Organisation des Multienzymkomplexes einführen und so die Hydrolyse eines überwiegend unlöslichen Substrats verstärken. Kürzlich hat sich gezeigt, dass die Cohesin-Dockerin-Interaktion in der Natur recht weit verbreitet ist und eine Vielzahl von, meist noch unbekannten, Funktionen erfüllen kann, die noch beschrieben werden müssen.

Abbildung 21.4. Der duale Bindungsmodus von Cohesin-Dockerin-Komplexen. Banddarstellung der Überlagerung der Dockerin-Module des nativen Cohesin-Dockerin-Komplexes vom Typ I (hellgrau) mit dem mutierten S45A-T46A-Komplex (dunkelgrau) in C. thermocellum. Zur Vereinfachung ist nur ein Kohäsin-Modul dargestellt. Der Einschub zeigt eine detailliertere Ansicht der Cohesin-Dockerin-Kontakte und der nahezu perfekten Überlagerung der Helices 1 und 3 beider Komplexe. Im mutierten Komplex dominiert Helix-1 (enthält Ser-11 und Thr-12) die Bindung, während im nativen Komplex Helix-3 (enthält Ser-45 und Thr-46) eine Schlüsselrolle bei der Ligandenerkennung spielt. Ser-11, Thr-12, Ser-45 und Thr-46, die mit dem Cohesin-Modul interagieren, werden als Kugel-Stab-Modelle dargestellt.


Schau das Video: Bakterien (Juni 2022).


Bemerkungen:

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